实验亲和层析纯化IgG

生物分离与纯化实验共34学时持续改进协作实验报告：1.信息栏填全，遗漏项：同组人员；2.结果计算：过程完整3.讨论分析不可缺项，内容丰满，见解细致。上次实验总结实验（三）血清中抗体纯化（16学时）配基 特异性ProteinA 许多IgGs的Fc片断ProteinG 许多IgGs的Fc片断Antigen 特异的抗体Anti-IgG 特异免疫球蛋白抗体纯化配基类型

族特异性专一特异性二、实验原理低

pH下洗脱用rProteinASepharose™分离IgGColumn:HiTrap™ProteinAFF结合缓冲液: 20mM磷酸钠,pH7.0洗脱缓冲液: 0.1M甘氨酸-HCl,pH3注意: 为了保护抗体的活性，将洗脱组分收集于1MTris-HCl,pH7.5中二、实验原理二、实验原理蛋白A和蛋白G的结合特异性种属 蛋白A 蛋白G

结合 结合人IgA 可变的 -IgD - -IgEIgG1 ++++ ++++IgG2 ++++ ++++IgG3 - ++++IgG4 ++++ ++++IgM* 可变的 -鸟类蛋黄IgY† - -牛 ++ ++++狗 ++ +山羊 - ++豚鼠IgG1 ++++ ++IgG2 ++++ ++仓鼠 + ++马 ++ ++++考拉 - +骆驼 - +种属 蛋白A 蛋白G

结合 结合恒河猴 ++++ ++++大鼠IgG1 + ++++IgG2a ++++ ++++IgG2b +++ +++IgG3 ++ +++IgM* 可变的 -猪 +++ +++兔 ++++ +++小鼠IgG1 - +IgG2a - ++++IgG2b - ++IgG3 + ++绵羊 +/- +++

相对结合强度–弱或不结合三、实验材料——纯化试剂：磷酸二氢钠、磷酸氢钠、氯化钠、异地酸二钠、枸橼酸、精氨酸、盐酸胍、氢氧化钠、95%乙醇；均为分析纯。容器：50ml烧杯/三角瓶/试管10个；15ml收集试管5个；100ml三角瓶5个；250ml烧杯5个填料：ProteinA层析柱：XK10或预充柱装柱体积：~2ml血清：~2ml滤器：0.45μm针头式滤器5个；SDS:缓冲液：

平衡液：20mM磷酸二氢钠，150mM氯化钠，pH7.2；(1L)

冲洗液：20mM磷酸二氢钠，0.5M氯化钠，10mMEDTA二钠，pH7.2；(1L)

洗脱液：0.1MGlycine-HCl，pH3.5；(1L)

清洗液：6mM氢氧化钠。(1L)稀释血清：

取2ml血清，用平衡缓冲液稀释5倍，0.45um针头滤器过滤。标记为S.三、实验材料——纯化三、实验材料——SDS试剂：1.2x样品缓冲液2.凝胶贮液：在通风橱中，称取丙烯酰胺30g，甲叉双丙烯酰胺0.8g，加重蒸水溶解后，定容到100ml，过滤。3.pH8.9分离胶缓冲液：Tris36.3g，加1mol/LHCl48ml，加重蒸水80ml使其溶解，调pH8.9，定容至100ml，4℃保存。4.pH6.7浓缩胶缓冲液：Tris5.98g，加1mol/LHCl48ml，加重蒸水80ml使其溶解，调pH6.7，定容至100ml，4℃保存。5.TEMED（四乙基乙二胺）原液6.10%过硫酸铵（用重蒸水新鲜配制）7.pH8.3Tris-甘氨酸电极缓冲液：称取Tris6.0g，甘氨酸28.8g，加蒸馏水约900ml，调pH8.3后，用蒸馏水定容至1000ml。置4℃保存，临用前稀释10倍（减半配制）。8.考马斯亮蓝G250染色液：称100mg考马斯亮蓝G250，溶于200ml蒸馏水中，慢慢加入7.5ml70%的过氯酸，最后补足水到250ml，搅拌1小时，小孔滤纸过滤。器材：

电泳仪，电泳槽，水浴锅，摇床。三、实验试剂——浓度测定考马斯亮蓝G-250蛋白染色液(1)牛血清白蛋白标准液（100ug/ml）精确称取0.010g牛血清白蛋白，溶于约50ml蒸馏水，定容到100ml.(2)考马斯亮蓝G-250试剂

取100mg考马斯亮蓝G-250，溶于50ml90%乙醇中，加入85%正磷酸100ml，最后用蒸馏水定容到1000ml，此试剂在常温下可放1个月。四、实验步骤1.ProteinA纯化：1）装柱：固定好层析柱，柱保持垂直，夹上出入口止水夹，量取20ml蒸馏水加入柱内，在柱外做一体积为20ml的标记，然后打开止水夹赶去出口内气泡，最后在柱内保留0.5-1m的水。ProteinA填料中加入适量平衡缓冲液，小心搅起凝胶，尽量一次加入柱内，待上层有一水层后打开止水夹，再用20-40ml平衡缓冲液不断加入柱内洗脱，最后待胶床表面仅有1-2厘米液层时，旋紧止水夹。装好的胶柱应符合无气泡、无节痕、床面平正。2）上样：血清让胶床表面几乎不留液层，然后小心注入床面中央~2ml稀释血清，待样液几乎全部进入胶床表面后，关止水夹，室温下样品与填料结合15min。实验步骤

1.ProteinA纯化：

3）冲洗：加2倍柱体积冲洗缓冲液，打开止水夹，控制流出速度为2ml/min，并用试管收集流出液(记为W)，在床表面仅有1毫米左右液层时，关止水夹，再加入2倍柱体积平衡缓冲液冲洗填料，床表面仅有1毫米左右液层时，关止水夹，。4）洗脱收集：取刻度试管2支编号，柱床上面加3倍柱体积洗脱缓冲液，控制止水夹流出1倍柱体积洗脱液后，关止水夹，室温下柱料与洗脱液孵育15min，打开止水夹控制流出速度为1ml/min收集2倍柱体积（记为E1），待床表面仅有1毫米左右液层时再加入3倍柱体积洗脱缓冲液，收集2倍柱体积记为E2。5）收集结束后，加入清洗液（6MNaOH）洗涤2cv，平衡液5cv。分离胶及浓缩胶的制备：1将玻璃板、样品梳、Spacer用洗涤剂洗净，用ddH2O冲洗数次，再用乙醇擦拭，晾干；2将两块洗净的玻璃板之间加入Spacer，按照说明书提示装好玻璃板；3按以下配置10%分离胶及浓缩胶四、实验步骤

2.SDS纯度测定浓缩胶（5ml）双蒸水0.5mol/LpH6.8Tris-HCl30%胶贮液10%SDSTEMED10%AP5%3.4ml0.63ml0.83ml50μl5μl50μl分离胶（10ml）双蒸水1.5mol/LpH8.8Tris-HCl胶贮液10%SDSTEMED10%AP7.5%12%10%4.8ml3.3ml4.0ml2.5ml2.5ml2.5ml2.5ml4ml3.3ml100μl100μl100μl10μl10μl10μl100μl100μl100μl3、按比例配好分离胶，用移液管快速加入，大约5cm左右，之后加少许蒸馏水，静置30分钟。凝胶配制过程要迅速，催化剂TEMED要在注胶前再加入，否则凝结无法注胶。注胶过程最好一次性完成，避免产生气泡。水封的目的是为了使分离胶上延平直，并排除气泡。凝胶聚合好的标志是胶与水层之间形成清晰的界面。4、倒出水并用滤纸把剩余的水分吸干，按比例配好浓缩胶，连续平稳加入浓缩胶至离边缘5mm处，迅速插入样梳，静置10分钟。样梳需一次平稳插入，梳口处不得有气泡，梳底需水平。四、实验步骤

2.SDS纯度测定5、样品处理：还原样品：取30ul样品（S,W,E1E2），加入30ul还原上样缓冲液，100℃水浴5min，非还原样品加入30ul非还原上样缓冲液室温孵育5min。6、加样：拔出样梳后，空出第一个孔，从第二个开始按已编排好的顺序依次加入相应体积的样品和蛋白Marker。其中S和Marker加样量为2µl，W,E1，E2加样量为15µl，还原与非还原样品间空一孔道。注射器不可过低，以防刺破胶体，也不可过高，在样下沉时会发生扩散。为避免边缘效应，最好选用中部的孔注样。四、实验步骤

2.SDS纯度测定7、电泳槽中加入缓冲液，接通电源，进行电泳，开始电压恒定在160V，当进入分离胶后改为240V，溴酚蓝距凝胶边缘约5mm时，停止电泳。8、凝胶板剥离与染色：电泳结束后，用专用工具撬开短玻璃板，从凝胶板上切下一角作为加样标记，然后放在大培养皿内，加入染色液微波煮沸后，染色10min左右。剥胶时要小心，保持胶完好无损，染色要充分。9、脱色：染色后的凝胶板用蒸馏水冲洗染色液，再用微波煮沸后的脱色液脱色，可更换2次，直到蛋白质区带清晰。四、实验步骤

2.SDS纯度测定实验步骤

3.蛋白质含量测定

1）取洗脱液E1，E20.5毫升，用蒸馏水稀释至5毫升，然后吸取稀释后的酶洗脱液G-250.5毫升，用考马斯亮蓝G-250染色法测定其蛋白质含量。

01234567100ug/ml牛血清蛋白标准液(ml)

0.81.0

样品待测液(ml)

0.50.5蒸馏水(ml)1.00.2

0.50.5考马斯亮蓝G-2505.05.05.05.05.05.05.05.0各管均匀，室温下放置5分钟，在λ=595n处比色吸光度（OD595）

蛋白质含量（ug）020