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文档简介

1、细胞毒性实验设计方案1.胰酶 双抗(青霉素/高DMEM(糖)链霉素)DAPI准备材料:MTT(5mg/mL) DMSO PBS 4% 指甲油 6 孔培养板 多聚甲醛 培养瓶(25mL) 96孔培养板 超 薄载玻片一包 0.45滤膜 m 以 灭菌: 50mL , 10mL , 5mL离心管两种枪头2.实验方案材料本实验所用的为载药的通过二硫键桥连透明质酸的 夹心二氧化硅(SiO2-SS-HA/DOX ),在高谷胱甘肽条件下,二硫键断 裂,透明质酸脱离,同时SiO2-本实验的夹心二氧化硅中药物得以释放。目的为测定透明质酸修饰的夹心二氧化硅(,SiO2-SS-HASiO2-SS-HA/DOXSS-H

2、A/DOX )的细胞毒性。实验组为、 DOX成纤维细胞为正常人肝癌细胞为肿瘤细胞模型和分别采用,HepG2 L929 空白对照组为纯细胞细胞模型。SiO2-SS-HA/DOX 、 HepG2 人肝癌细胞为肿瘤细胞模型,实验组为采用1%(w/v) DOXSiO2-SS-HA 、,空白对照组为纯细胞。10%(v/v)培养基中含有FBS和、。配制不同浓度的链霉素青霉素双抗(/ ) SiO2-SS-HA/DOXSiO2 HA 药物载、DOX体培养基溶液。HepG2以人肝癌细胞为肿瘤细胞模型(1).12% DMEM 87%1%血清培养基的配置:双抗具体操作步骤:细胞的复活:C温水中,使细胞快速溶解。将悬

3、浮的细将冻存于液氮中的细胞取由,迅速放入 37无血清培养基,5mL胞移至离心管中,力口 1000rmp,5min 离心(每次转移时,将之前的离心管洗涤,5mL去上清,再加 有血清培养基,转移至培养瓶中。并用移液枪来回吸,使液体混合均匀。)将培养瓶放入培养箱中培养。细胞的传代:C,每次使用一管,避的胰酶分装至小离心管中,0.25% 将,冻存于2mL每个管中-20免反复冻融。的酒精放入超净台。将培养液倒入废液75%将培养瓶从培养箱中取由,盖子旋紧,喷 缸,操作完成后,残留培养基用吸管吸干净,培养瓶口 -用火烧。加入2mL胰酶将瓶底铺满,消化 2-3min ,于显微镜下观察细胞形态,呈2mL 12%

4、 DMEM 终止消化,用枪吹打,使细胞悬浮。圆形,即消化完毕,加入离心。迅速倒掉上清,加入 10mL离心管中,1000rmp,5min,将细胞悬浮液移入 6mLDMEM 培养基,分装至两个培养瓶中,再各加入培养箱中培养 48h。,于37 C, 5%的 CO22mLDMEM至5mL-。下一次传代步骤同:细胞存活率测定方法(布板,加样)。同传代步骤 -并用移液枪来回吸,使液体混合均匀,将所有含给每个离 心管中加入定量的培养基,有细胞的培养基转移到一个50mL离心管中,最终使液体体积为30mL。个复孔,每块板设一组空白调零孔,内加培养液,不含 96孔板中每个浓度设计 5细胞与药物,一组空白对照组,只

5、加培养基和细胞,不加药物。除过空白调零孔,每孔加入, 5% (v/v) CO 2 L 含细 胞的培养基。将孔板放入培养箱中,培养箱保持一定的湿度, 100 2 22小时。温度保持在 37 C,培养微升的0.03g将谷胱甘肽加入到10mL培养基,充分溶解,浓度为 0.003g/mL, 取20.003g/mL 谷胱甘肽溶液加入到 10mL的培养基中,将这两个浓度含谷胱甘肽的培养基替换部分原来的培养基,作为对照,不需要加谷胱甘肽的孔换上5% (v/v) CO 2 ,温新鲜培养基,将孔板放入培养箱中,培养箱保持一定的湿度,小时,具体的加样孔见图一。2度保持在37 C,培养的培养基中,分成两份,其中 3

6、mL样品溶到SiO2-SS-HA/DOX 1.2mg 将的的培养基,再将稀释后的含液样的培养基分成两份,1.5mL一份里加入 其中一份SiO2-SS-HA/DOX 样 新鲜培养基,依此类推,便得到一个浓度梯度的加入 1.5mL品。SiO2-SS-HA 样品的浓度配制方法同上。的0.918mg 将 SiO2-SS-HA/DOX的培养基中,剩下3mL。所示。将孔板放入培养箱孔板中的培养基,如图 96 1将配制好的载体溶液替换原来37,温度保持在C,培养5%(v/v) CO2 中,培养箱保持一定的湿度,24小时。5 mg/mL 配制的 溶液,将孔板中的培养更换成MTTMTT溶液,将孔板放-入培养箱中

7、,培养箱保持一定的湿度,5% (v/v) CO 2 ,温度保持在37 C。培养4小时后,mm us: .和*工»| kF Lp- iF .)1 A JK将孔板中的培养基取由,用PBS溶液清洗3次,然后向每孔加入100以L的DMSO ,溶解孔中的甲瓒,采用酶标仪测定,波长设定为 490nm图1药物载体布板示意图.以L929成纤维细胞为正常细胞模型 实验组为 SiO2-SS-HA/DOX 、SiO2-SS-HA、 DOX ,空白对照组为纯细胞。实验目的为测定药物载体溶液对正常细胞 的细胞毒性。培养基的配置:双抗 1%血清 12% DMEM 87%具体操作步骤:细胞的复活:C温水中,使细胞

8、快速溶解。将悬浮的细37将冻存于液氮中的细胞取由,迅速放入离心胞移至离心管中,加5mL 无血清培养基, 1000rmp,5min(每次转移时,将之前的离心管洗涤,去上清,再加 5mL有血清培养基,转移至培养瓶中。并用移液枪来回吸,使液体混合均匀。)将培养瓶放入培养箱中培养。细胞的传代:C,每次使用一管,避 2mL ,冻存于-20将0.25%的胰酶分装至小离心管中,每个管中 免反复冻融。的酒精放入超净台。将培养液倒入废液将培养瓶从培养箱中取由,盖子旋紧,喷 75% 培养瓶口缸, 残留培养基 用吸管吸干净,操作完成后,用火烧。,于显微镜下观察细胞形态,呈圆形,即2-3min 2mL加入胰酶将瓶底铺

9、满,消化终止消化,用枪吹打,使细胞悬浮。消化完毕,加入 2mL 12% DMEM离心。迅速倒掉上清,加入将细胞悬浮液移入10mL离心管中,1000rmp,5min,培养基,分装至两个培养瓶中,再各加入6mLDMEM。48h CO2 5% 37 5mL2mLDMEM ,至,于C,的培养箱中培养下一次传代步骤同-。细胞存活率测定方法(布板,加样) :同传代步骤-。并用移液枪来回吸,使液体混合均匀,将所有含给每个离 心管中加入定量的培养基,离心管中,最终使液体体积为50mL 12mL。有细胞的培养基转移到一个个复孔,每块板设一组空白调零孔,内加培养液,不含孔板中每个浓度设计 5 96细胞与药物,一组

10、空白对照组,只加培养基和细胞,不加 药物。除过空白调零孔,每孔加入,以 100 5% (v/v) CO 2 L含细胞的培养基。将孔板放入培养箱中,培养箱保持一定的湿度, 温度保持在 37 22 C,培养小时。- 将所有加样的孔换成新鲜培养基,作为与癌细胞的对照。将孔板放入培养箱中,培养箱保持一定的湿度,5%(v/v)CO2 ,温度保持在 37 C,培养 2小时。将0.4mg 的SiO2 -SS-HA/DOX 样品溶到 1mL的培养 基中,分成两份,其中一份里加入0.5mL的培养基,再将稀释后的含液样的培养基分成两份,其中一份加入 0.5mL新鲜培养基,依此类推,便得到一个 浓度梯度的 SiO2

11、-SS-HA/DOX 样品。 SiO2-SS-HA 样品 的浓度配制方法同上。1mL的培养基中,剩下的步骤同 0.306mg 的SiO2-SS-HA/DOX 样品溶到将。o,所示。将孔板放入培养箱将配制好的载体溶液替换原来96孔板中的培养基,如图 2,温度保持在 37 C,培养中,培养箱保持一定的湿度,5%(v/v) CO2小时。24溶液,将孔板放入培养箱中,MTT配制5 mg/mL 的溶液,将孔板中的培养更换成MTT小时后,将孔板中的培培养箱保持一定的湿度,5% (v/v) CO 2,温度保持在 37 Co培养4,溶解孔中的甲瓒,采DMSO以L的3养基取由,用PBS溶液清洗次,然后向每孔加入100490nm用酶标仪测定,波长设定为二(ODtreated -ODblank /OD control -:细胞存活率细胞存

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