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多糖化学构造鉴定方案总结..(word多糖化学构造鉴定方案总结..(word版可编辑修改)多糖化学构造鉴定方案总结..(word编辑整理:敬重的读者朋友们:文中内容进展认真校对,但是难免会有疏漏的地方,但是任然期望〔多糖化学构造鉴定方案总议和反响,这将是我们进步的源泉,前进的动力。本文可编辑可修改,假设觉得对您有帮助请保藏以便随时查阅,最终祝您生活开心业绩进步,以下为多糖化学构造鉴定方案总结..(word经过分级纯化的多糖在测定构造前须检查其纯度及测定分子量.检查纯度最常用的推断方法:(1〕GC、HPLC测定组成多糖的单糖的摩尔比是否恒定。用不同的柱型测定结果更为牢靠。(2)电泳只消灭一条带.如可用聚丙烯酰胺凝胶电泳、乙酸纤维素薄膜电泳及玻璃纤维纸电泳。对于中性多糖可承受高压电泳,以硼酸盐为缓冲液,可增大其迁移速度。凝胶柱层析图呈现对称的单峰。假设有“拖尾”现象,说明其均一性不够好.阴离子交换层析纯化DEAE52〔2.6x100cm)柱层析,0。lmol/LNaCl6ml/h,按2ml分部收集,苯酚一硫酸法逐管检测,绘制收集体积与糖含量之间的关系曲线.看是否有单一对称峰。YeDEAE52〔2.6x30cm〕对鲍氏层孔菌菌丝DEAEDEAE5210(ml/g〕的0。5mol/LNa0H30pH0.5mol/LHCI30pH0。5mol/lNaOH30pH0.5mol/LNaCl1.0ml/min)23100mg5mlDEAE52层析柱〔2。6x30cm,Cl-1型〕,0。10。3mol/LNaCI1.0ml/min,自动收集器分部收集〔10ml/20各管多糖含量(490nm〔490nm〕DEAE一52一纤维素色谱柱洗脱曲线.依据洗脱峰型,合并一样组分,50℃旋转蒸发浓缩,对去离子48hNaCI初步纯化多糖得率计算公式:多糖得率〔%)=纯化多糖质量/粗多糖质量x100%葡聚糖凝胶层析纯化SephadexG—100DEAE—52进一步纯化。葡聚糖凝胶〔sephadexG100〕sephadexG10030〔ml/g)的去离子水,沸水浴5洗,减压脱气后进展湿法装柱,用0。1MNaSO2
0.25ml/min〕234用。DEAE5220mg2ml0。1MNaSOSephadexG100(2。6x60cm〕0。1MNaSO
溶液溶液洗脱,流2 4 2 40.25ml/min,分步收集〔5ml/管)。用硫酸一苯酚法跟踪检测各管多糖含量(490nm处吸取值〕,以收集的管数为横坐标。吸光〔490nm为纵坐标绘制sePhadexG一10048hNaSO2 4得不同纯化产品。纯化多糖得率计算公式:纯化多糖得率〔%)=纯化多糖质量/粗多糖质量x100%〔鲍氏层孔菌菌丝体粗多糖)纸层析法呈单一集中斑点。0.550ul,点样于华中速滤纸〔3cmx20cm1cm正丁醇:浓氨水:水〔4O:50:5〕为开放剂,饱和26h,取出吹干,用0。5%95%乙醇漂洗至背景褪色,看是否只有一个清楚的斑点。琼脂糖(Agarose)凝胶电泳法在琼脂糖板〔0。2cm35ul0。075mol/L,pH8.61-1.5h,6480V,甲苯胺蓝〔1%)染色,醋酸乙醇混合溶液〔醋酸:乙醇:水=0。1:5:5〕脱色。多糖纯品经电泳开放后,看是否呈现单一斑点,斑点是否清楚.(6〕紫外分光光度法PWZ0.9%NaCI1mg/mlUV16OA光谱仪扫描(200nm30Onm)260nm、280nm多糖的分子量测定:过去用现已少用。现在较常用的方法有凝胶过滤法和高效凝胶液相色谱法,这两种方法须先用分子量的标准多糖比照测定样品的分子量。一般来说,多糖构造分析包括以下几点:单糖组成分析:争论确定单糖的种类及摩尔比;完全酸水解后用高效液相色谱方法〔HPLC)或气相色谱方法测定.糖苷键类型:争论确定糖苷键及支链点连接位置;甲基化分析方法Smith糖环大小:争论确定糖苷键为呋喃糖或吡喃糖;红外光谱a—P-构型;2DNMR.(TwodimensionalNuclearMagneticResonance)光谱分析方法测确定单糖残基和重复单元的序列甲基化分析方法与磁共振光谱分析方法结合分析,一般会参考多糖的单糖组成及摩尔比信息以利于解析多糖构造。高碘酸氧化法薄层层析〔TLc〕——定性,气相色谱法取代基团位点:争论0H-修饰基团的种类和取代位点,如0-磷酸化,乙醜基取代,0-硫酷化等;比色分析方法多糖分子量分布的争论。紫外光谱定性与定量方法薄层层析:残基定性气相色谱:残基定量气质联用:残基定量高效阴离子色谱法:残基定量鉴定构造常用物理化学方法:高效液相色谱:确定单糖组分和相对分子量红外光谱分析:测定多糖的官能团,不仅可以检测酮糖、酵糖的耻喃糖环或呋喃糖环的构象和糖苷键的构型核磁共振:α—构型与β-构型残基的比例;推断异头碳构型;推断主链和支链连接键型鉴定构造复合方法:甲基化分析:推断出多糖样品中糖基的连接方式及各种连接键型的比例Smith推断糖苷键的位置、直链多糖的聚合度及支链多糖的分支数目糖睛乙酸酷衍生物的气相色谱法:单糖组成和摩尔比各种多糖化学构造鉴定方法的具体实施方案1、酸水解完全酸水解称取20mg样品,参加2mL2mol·L-1
的
于安培管中沸水浴水解8h,水解液用2 4BaCO3
pH=7,离心,取上清夜置冰箱冷藏备测.〔阿魏侧耳子实体多糖分别纯化及其化学构造的初步争论〕局部酸水解称取糖样70mg,80℃条件下,0.05M三氟乙酸水解2h。降至室温后,离心(4000r/min,10min,将沉淀枯燥,留做GC分析.上清用无水乙醇除酸至中性(pH为67,蒸馏水透析48h:将袋外透析液浓缩,真空枯燥,留做GC分析;袋内液浓缩至5ml左右,加10倍体积无水乙醇,醇沉过夜,离心(4000r/min,10min〕,沉淀常规枯燥,作GC分析;上清浓缩,真空枯燥,留做GC分析。2、高效液相色谱确定样品的单糖组成色谱条件为:色谱柱为ShodexKS804Sugar〔300mm×7.8mm〕40流淌相为水0.8mL·min—1检测用410RⅠ810GPC同时用鼠李糖、阿拉伯糖、甘露糖、半乳糖、木糖、果糖、葡萄糖、岩藻糖8种单糖进展比照,依据峰值确定样品的单糖组成。分子量的测定以标准分子量的葡聚糖Pulluan作分子量测定标准。让其通过高压液相色谱柱Pulluan的工作曲线上可以求得该成分分子量。〔阿魏侧耳子实体多糖分别纯化及其化学构造的初步争论〕PW2HPLCPW221.77∶1。例如:HPLCPW23。18×104〔阿魏侧耳子实体多糖分别纯化及其化学构造的初步争论〕4、甲基化分析(1〕根本原理解,水解后得到的化合物,其羟基所在的位置,即为原来单糖残基的连接点.同时依据不同甲基化单糖的比例,可以推想出此种连接键型在多糖重复构造中所占的比例.用此种方法得到的羟基及NaBH4
复原醛基后产生的羟基,经乙酰化可得到甲基化的糖醇乙酸酯〔GC分析,再经GC与GC—MS质谱谱图的主要离子碎片的分析便可以较准确地确定糖的连接键型.反响通式如下:(2〕甲基化反响10mg,2.0ml〔DMSO〕N2NaOH50mgN2
1。0hN21.0mlN2
排出空气,加盖密封,室温连续反响1。0h0.5ml48h24h,透析液冷冻枯燥得第一次甲基化样品.第一次甲基化样品连续甲基化,反响步骤同上,得其次次甲基化样品。如此重复甲基化三次.甲基化后的样品用红外光谱检测,3700cm—1-3100cm-1,四周无羟基的特征吸取峰,说明甲基化反响完全。〔3)甲基化样品的衍生化2mol/1(TFA〕3.0ml,1202。0h50℃2.0ml2。0ml25mg,2.0h。01mol/1pH5.5~7050℃2。0ml1。0ml1.0ml1。0h。反响50℃2.0ml1。0ml,0.45ulGC/MS(4〕GC/MSGC/MS依据文献的相对保存时间和不同单糖的主要离子碎片(m/e〕,推断出多糖样品中糖基的连接方式及各种连接键型的比例.本试验承受的条件为:GC(VarianCP3800〕MS〔VarianSatum2200〕气相一DB—5MS〔30mX0.25mmX0.25um80℃,保持18℃/min2101min20℃/min260℃,1min;氦气作载气,进2501:50,1。0ml/min;电子电离源〔EI〕70eV,倍增器电350V,250uA260180℃,质荷比〔m/z)扫描范围30~4502.5scan/sec〔〕〔MAEP—2a-2b是安络小皮伞菌丝体多糖的某个过程中第某个样品)例如:经过甲基化反响的MAEP-2b-2a通过GC—MS分析,结合其各峰位保存时间和质谱碎片峰,推断样品的构造并计算摩尔百分比。从表14中,可以看出MAEP-2b-2a中糖局部是以〔1→2,1→6〕连接的Man〔甘露糖)为〔1→2〕连接的Man〔甘露糖)在其4位上有分枝点,(1→6)连接的Man在其2位上Gal和Glu为主组成的侧链。MAEP-2b—2a的非复原末端是由Gal,Man,Glu组成.从甲基化结果的摩尔百分比计算,各分枝点摩尔百分比之和低于非复原末端摩尔百分比之和,由PMPMAEP-2b-2a尚含约9%的GalA,糖醛酸在简单多糖中可能以分枝点的形式存在,故推想在MAEP—2b—2a中还有大量的GalA〔络小皮伞菌丝体多糖〕〔茶源多糖构造鉴定〕5、红外光谱分析取枯燥样品微量,压片,全波段扫描。例如:阿魏侧耳子实体多糖分别纯化及其化学构造的初步争论图中显示在4000cm—1~650cm—1区内的是具有多糖类物质的一般特征。3372cm-1的吸取峰是O-H和N-H2931cm—1为C—H-CH和—CH2的共振吸取锋。这两类是糖类的特征吸取峰。848cm-1吸取峰说明在PW2〔文中提纯的其次种成分)多糖纯品构造中存在α〔即α1026cm-11081cm—1和1152cm-1的吸取峰说明PW2中的糖环为吡喃糖环,这是由醚键C—O-C振动而产生的吸取峰;而呋喃糖环在此区间上只有两个强吸取峰。在890cm—1处有微弱吸取,说明样品中含有少量β型糖苷键,而在810cm—1处没有振动吸取峰说明没有甘露糖的存在.928cm—1为糖类分子振动吸取D—吡喃糖1725cm-1的存在,说明多糖含有糖醛酸基团,即PW2为酸性多糖。3、核磁共振将样品10mg,溶于D
O(重水)中,溶解温度80400MHz500MHz21HNMR13CNMR。(阿魏侧耳子实体多糖分别纯化及其化学构造的初步争论〕氢谱分析例如:5。39吸取峰说明样品的主要构型为α—构型4.97吸取峰的存在,说明存在少量的β-构型(α-C—1δ103以下,H—1δ5。0以上;β—C-1在δ104H—1δ5。0以下)。且α—构型与β—构型残基的比例为1∶0。2843。碳谱分析例如:由图及表2可以看出:C—1信号在100.4ppm,即处在90-103之间,说明多糖的异头碳的构型为α—构型,同时可以看到存在一个微弱的117ppm峰β-构型,峰的相对高度正比于碳的数目,即α—构型与β—构型残基的比例为1∶0.29,这个结果和红外光谱以及氢谱的结论完全吻合。图中70~76之间的碳共振峰分别是未被取代的C-2、C-3、C—4,其中,αβ两种构型的共振峰重叠严峻,由于77.906C-4的糖苷键的共振峰,图中可以看出存在重叠峰,这是由于α与β两种构型和两种单糖造成的,〔小邱:不是很明白它的意思,C—4〕C-661.11469。977说明多糖PW2存在1—6依据峰高比例可以大约看出多糖PW2的主链为1—61-4糖苷键的支链。由C—1和C-6的峰高比例可以看出多糖PW2的支链不多。6、Smith(1)原理高碘酸氧化是一种选择性的氧化反响,它只能作用于多糖分子中连二轻基及连三轻基处。当C—C后,产生相应的醛;当C—C时,产生甲酸及相应的醛1molC-C1mol1mol2mol因此,通过测定高碘酸消耗量及甲酸生成量,便可以推断糖苷键的位置、直链多糖的聚合度及支链多糖的分支数目等.高碘酸氧化产物经NaBH4复原,得到的多糖醇用稀酸在温顺条件下水解,可发生特异性降Smith.Smith打断被高碘酸破坏的糖苷键残基仍连在糖链上。这样,多糖醇经Smith降解,就可以得到小分子的多元醇和未被破坏的多糖或寡糖片段,对这些产物进展分析,便可以推断出糖苷键的键型及其位置.(2〕高碘酸钠标准曲线绘制NaI04〔15mmol/L〕NaIO3
〔15mmol/L)5:0,4:1,3:2,2:3,1:40:50.1ml25025ml,223nmNaI04〔mmol/L〕为横坐标,吸NaIO4
标准曲线。〔3)高碘酸氧化25mg15mmol/1NaIO4
1.0mg/ml〕溶液,振荡使其溶解。2h0.1ml25025ml,223nm4℃6h0.1ml25ml223mn吸光值,直至吸光值根本稳定。依据反响前后的吸光值和NaIO4
NaIO4
消耗量。1。0ml1h1.0ml,50ul0.5mmol/LNaOH50mg20h01mol/LpH5。5—7。048h,24h502。0ml3Smith〔4〕SmithGC将减压蒸干的多糖高碘酸氧化产品,进展三氟乙酸(TFA)水解,再制备糖腈乙酸酯衍生物,GC7、糖腈乙酸酯衍生物的气相色谱法(鲍氏层孔菌菌丝体多糖的构造分析)〔1)多糖样品水解承受完全酸水解法。5mg2mol/1(TFA)2ml,120℃250℃2ml,再蒸发干,如此重复3生化使用。(2)糖腈乙酸酯衍生物的制备10mg5mg06ml90℃30min1。0ml9030min,冷却后得糖腈乙酸酯衍生物。反响产物可直接用于气相色谱分析。〔3)衍生物的气相色谱检测本试验承受的条件为:Agilent6890N气相色谱仪,5%苯甲基硅氧烷毛细管色谱柱HP—5,30。0mX320umX0.25um;氢火焰离子检测器(FID〕;色谱柱程序升温:1200C3min30C/min2100C,2100C4min250℃、280℃;进样体1.0ul,25ml/min,30ml/min,400ml/min。(4〕标准单糖衍生与检测鼠李糖、岩藻糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖以及半乳糖等标准单糖同样进展糖睛乙酸酷衍生化,然后以同样条件进展气相色谱分析。单糖组成和摩尔比.计算公式:Wx=〔Ax*Wi)/〔Ai*。Wx〔mg〕;Wi(mg);AX-样品中单糖的峰面积;Ai—样品中内标的峰面积;f—相对校正因子:f=Wi*As/(Ws*Ai〕。8、薄层层析〔TLc)单糖残基的定性分析(猴头菌实体多糖)〔TLc):2mg2mol/L〔TFA)4mL,在110℃2h,4h40℃)后,3mL45TFA05mL5uL水〔5:51:3,显色剂为苯胺一邻苯二甲酸,110℃加热10min后显色,以标准单糖样品为比照。〔山药多糖〕9、气相色谱法〔猴头菌体多糖)标准单糖样品的乙酰化周密称取等摩尔〔2mmol/L〕的半乳糖、岩藻糖、木糖、鼠李糖、葡萄糖、甘露糖和阿拉伯糖,分别溶于3mL蒸馏水中,参加20-30mg硼氢化钠(NaBH4,于室温下,间歇振荡,复原3h,NaBH4,至溶液不再产生气泡为止,pH4—53mL4—5过夜。次日,110℃15min,4mL1001h,3mL4-53mL410mLGCGC—MS样品的乙酰化处理2mg2mol/L〔TFA)4mL,110℃水2h40℃3mL4-5TFA5m1,GCGC-MSGC分别用单个单糖的标样按〔1〕法处理后用GC糖的混标按(1〕法处理后用GC6〔RSD(1法平行处理六个混标样品后用GC(RSD2。糖的定量分析:计算各糖组分的峰面积,利用面积归一法求出各糖组分的百分比例,并计算每种单糖的响应因子.然后依据等摩尔的标样组分,计算出样品的摩尔比.(4)色谱条件气相色谱仪(GCDB-23,30mX0。25mmX0.25um。氢火焰离子化检测器(FID12015℃/min2406.5min。2501:5025035mL/min350mL/min,尾30mL/min1mL/min。10、高效阴离子色谱法〔猴头菌体多糖〕2mg2mol/L〔TFA〕4mL110℃下水2h,100mL100DionexCarboPacTMPA20CarboPacTMPA20工作参数:E1100mv,400ms;E2—2023mv,20ms;E3600mV,10ms;E4100mV,70ms2.5mmol/LNaOH浓度淋洗。流速:0。45mL/min;上样量:25uL30℃。11、气质联用〔猴头菌体多糖〕GC—MS,色谱条件:气相一质谱联用(GC—MS〕DB—5MS毛细管柱,30mX0.25mmX0.25um801min,50C/min至2000C20C/min至215℃,最终以20/min至270250℃,1:501mL/min。EI(70eV)350v250uA,接口200℃,250℃42-462amu,2。5scan/秒.HEPF1〔36〕,通过各峰的保存时间和质谱可以确定其含有岩藻22.58min22.58min图〔3.7m/z43,87,101,117,129,143,189203m/z2031893-0-z129143m/z189203AcOH,—60〕而产生的二级片段,与文献完全全都.由此可以断定此峰是3-0—甲基一甲基戊糖的糖醇乙酸酷衍生物。由于3-0—甲基一甲基戊糖有两种存在形式,3—03—0一种,还需要进一步验证。12、苯酚·硫酸法总糖含量测定〔1〕标准曲线的制作10520mg500mL0.4mL,0.6mL,0。8mL,1.0mL,1.2mL,1。4mL,1。6mL,1。8mL2.0mL6%1。0mL,用移液管吸5.0mL10min20min490nm测吸光度,并绘制标准曲线。(2〕样品含量测定1mg/mL13、糖醛酸含量测定〔1〕试剂配制间轻基联苯〔m-hydroxydiphenyl〕试剂:0.15%0.5%氢氧化钠配制,置于冰箱中保存,10.0125mol/L60mg,100mL60ug/mL,定容后备用.(2)标准曲线制作0uL,5uL,100uL,150uL,200uL,250uL,300uL,350uL025mL1.5mL5min25uL520nm(3〕样品测定0.1mg/mL0.1mL,1mL,余操作同标准曲线,平行测定三次,依据吸光度从标准曲线上求得糖醛酸含量。14、分子质量测定〔dn/dc)通过OPTILAB折光仪在633nm和25℃dn/dc值为0.14dn/dc描述的是大分子溶液折光指数相对于溶质浓度的变化,它的值得大小有其自身性质打算的,受溶剂、温度、测量波长等因素的影响,也是用光散射测定聚合物分子量不行少的常数。LS测定角度为900,TFP1的流出体积为28m6-1和6—2,通过Kc/R。θsin2(θ/2)+KcZimm〔图15(b)〕,Mw公式中字母的意义:K,c为多糖溶液的浓度(mg/mL),Rθ
为瑞利因子,n溶剂的折光指数,λ0
为入射光波长,<S2>z1/2均方根旋转半径,NA
Avogadro,II0 θ分别为入射光强和散射光强,代表光源到测量点得距离。ZimmTFPlNaCl1,TFPl的重均分子量(Mw〕大5.832xl06Da;Z〔<S2>z1/2)是用来描述大分子的尺寸,它的大小可以用TFP1<S2z1/21913nmTFP1(Mw/Mn〕1。005TFP1TFP1是分子量较大的均一多糖,糖链是伸展的刚性链。14、碘—碘化钾反响TFP1〔0.02%120.2%KI300—700nm565nm则说明多糖有较少的分支和较短的侧链[161。16TFP1I2—KI351nm565nm没有最大吸取,说TFP1可能存在较长的侧链和较多的分支TFP1I2—KI15、刚果红试验CHNNaOS696。66,能溶于水和乙醇,可与具32226 262有三股螺旋构象的多糖形成络合物,络合物的最大吸取波长同刚果红相比发生相对位移,在肯定NaOHNaOH03mol/LNaOH于刚果红本身最大吸取波长削减明显缓慢,则说明多糖未表现出三股螺旋构造。如图17,随着NaOHTFP116、粘度检测高分子的粘度是流体力学性质的内容,反映高分子之间的摩擦力,特性粘度值反映的是单个高分子在特定浓度下对溶液粘度的奉献,其值的大小并不随浓度转变而转变,多糖溶液特性粘度[ɳ。Kh和Kk分别为高分子在特定条件下某溶剂中的常数[ɳ粘度;C,高分子溶液浓度。
增比粘度;ɳ相对sp rHuggins〔y=1146547。14x+1508.83Kraemer〔y=-189179x+1507.8)计TFPl[ɳ]=1508.3mL/g18)2250.1mol/LNaCl作为溶剂的条件下测定的特性粘度,银耳多糖与其它一些样品相比占有相对
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