遗传细胞 大四下课件 细胞培养技术1

实验课：实验一细胞培养基制备和外周血淋巴细胞培养实验二人类外周血染色体标本制备及初步观察实验三PCR扩增染色体特定基因实验四人类染色体疾病基因诊断实验五

染色体镜下核型分析细胞培养的基本技术主要内容

基本操作技术和要求原代培养传代培养和细胞系的维持细胞冻存与复苏细胞培养污染的检测和排除组织（细胞）培养

从生物体内取出细胞（组织），模拟体内生理环境，在无菌、适当温度和一定营养条件下，使之生存、生长并维持其结构和功能的方法。

细胞（组织），包括器官培养终归是离体培养，缺少生物整体的严密联系，不能代表整个机体。在进行医学生物实验过程及对结果的评估是都必须考虑这些。1基本操作技术和要求由于体外培养的细胞没有抗感染能力，因此防污染是决定培养成功的首要条件。一切操作需要保证无菌和有条不紊。1.1培养室内的无菌技术培养前的准备：按实验计划和程序准备物品，作到心中有数培养室和超净台：定期全面彻底消毒培养用品的无菌处理：高压灭菌、过滤、酒精消毒实验中无菌培养操作：均在火焰近处进行，实验用品需火焰灭菌，冷却后接触培养细胞，以防烧死细胞。1.2培养细胞的取材基本要求：取材组织用培养液浸泡，4度运送，24h内尽快培养。取材无菌操作，避免对组织的机械损伤，尽量去除脂肪、神经、结缔、坏死组织，污染组织可用青链霉素和制霉菌素漂洗。原代取材同时保留组织学和电镜标本，对供体来源、部位及一般情况做记录。1.2.3皮肤和粘膜的取材皮肤和粘膜是上皮细胞培养的重要来源。取材方法似断层皮片手术，面积2-3mm2.尽可能去除皮下和粘膜下组织。因分布在体表，故细菌、霉菌很多，需严格消毒，可用较高浓度抗菌素青链霉素漂洗。1.2.4内脏和实体瘤的取材内脏除消化道和泌尿管道外基本是无菌的，明确取材部位，去除结缔组织。肿瘤组织取材避免坏死液化和结缔组织，标本应按污染组织处理。1.2.5血细胞的取材血细胞培养可用于造血干细胞移植、免疫活性细胞的治疗和染色体分析等。取血抗凝剂量过大易导致溶血，肝素常用浓度为20U/ml,针管用较高浓度肝素500U/ml湿润。1.3组织材料的分离欲从组织中获得大量生长良好的细胞，须将组织分散开，使细胞解离出来。常用方法有机械法和化学法。1.3.1细胞悬液的分离方法离心法：血液和体液等细胞悬液500-1000rpm转速5-10分钟。离心速度过大、时间过长，会造成细胞损伤和死亡。密度梯度离心法：用离心法将细胞分到不同密度的梯度介质中，再分别吸出各层细胞。适于分离密度不等的的细胞。常用介质有Ficoll400,Percoll,

泛影葡胺等。。1.3.2.1机械分散法

适于较柔软的组织，如脑、肝、脾、淋巴结、胸腺、胚胎组织和肿瘤组织等。剪切组织为1mm3碎块

后，置于组织匀浆研磨，或用吸管反复吹打分散组织细胞

组织液放在注射器内通过针头压出。注射器针芯挤压后，用PBS液洗涤，分别通过不锈钢筛网80,150,400目孔径筛网。记数活细胞数，制成细胞悬液接种。1.3.2.3消化分离法消化法是结合生化和化学手段把已剪切成较小体积的组织进一步分化，获得细胞悬液直接进行培养1.3.2.3.1胰蛋白酶法主要作用是对细胞间蛋白质水解，使细胞离散。活性以消化酪蛋白的能力测定，常用1：250消化效果与pH值、温度、酶浓度和组织块大小与硬度有关，对细胞分离作用与细胞的类型与性质关系密切钙镁离子和血清抑制活性常用剂量为0.25%（0.1-0.5%），pH值8（8-9）温度37。4度配制应用液。1.3.2.3.2胶原酶法只对细胞间质胶原组织起消化作用，使上皮细胞与胶原成份分离产品有I-VVII-IX等型，分别适用于分离肝细胞、胰岛、脂肪细胞肾及纤维组织钙镁离子和血清不影响活性,pH.6.5-7常用剂量为200单位/ml或0.1µg/ml~0.3µg/ml1.3.2.3.3EDTA法EDTA（二乙烯四乙酸二钠）作用较缓和。主要作用：能从组织生长环境中吸取维持组织完整的钙镁离子。单独使用不能使细胞完全分散，常用1:1的EDTA（0.02%）和胰蛋白酶0.25%混合液2原代培养也称初代培养,是从供体取得组织细胞后在体外进行的首次培养。细胞保持原有的基本性质，仍具二倍体遗传物性。最接近和反映体内生长特性。适合作药物测试，细胞分化研究。原代培养细胞部分生物学特征尚不稳定，供体和细胞间有很大差异。2.1组织块培养法将组织剪成小块后，接种于培养瓶，24小时贴壁后，细胞就从组织周围长出。培养瓶底预先涂以胶原薄层，以利上皮细胞的生长。如需做组织染色或电镜检查，可将组织可放入小盖玻片上后再放进培养瓶培养。换液需轻巧，以免组织块漂起，细胞死亡2.2消化培养法采用前述的组织消化分散法。将妨碍细胞生长的细胞间质去除，使细胞分散，形成悬液，按不同浓度接种培养瓶培养。3传代培养和细胞系的维持培养细胞增殖长满瓶壁时，既达到所谓的饱和密度。此时正常细胞则不再生长；恶性细胞重叠生长，易于从瓶壁上成片脱落,，为此传代势在必行。培养细胞的生长过程1）原代（初代）培养期：从机体取下组织培养到第一次传代，此代细胞保持异质性，细胞种类较多，接近原组织细胞种类。维持时间，因细胞种类不同，一般1-4周。2）传代期培养：初代培养的细胞生长到一定程度，即可连接传代，使其连续生长。一般正常二倍体细胞，不加附加条件，可传代30-50代，此时可发生染色体丢失、突变、细胞增殖变慢、停止分裂，进入衰退期，我们称之有限细胞系。这一转折点有人称之危象临界点（crisis）有些细胞的少数后代，或通过人工条件转化的细胞可通过这一期，获得持久的增殖传代能力，我们称细胞系，或无限细胞系，即一般通称的细胞系。（3）衰退期：传代细胞到达一定代数，即发生增殖缓慢，逐渐停止，进而发生衰退、死亡，多数传代细胞（或叫有限细胞系），不能通过所谓的“crisis（危象临界点），导致最终死亡，这一现象可能说明生物学衰老的细胞学基础。人胚胎成纤维细胞可以进行60代增殖，而80岁老人的肺成纤维细胞仅传代了16代后便死亡。表皮细胞寿命4-10天；红细胞3周-3个月，白细胞5-7天，神经细胞数年或更多。密度抑制（Densityinhibition）或接触抑制（Ccontactinhibition）1958年Abercrombie等学者提出的一种现象，培养细胞再生长过程中多发生分裂增殖，细胞移动而相互靠近，这时某些细胞可移向其他方向，保证细胞不会重叠，一但接触，这种活动即可停止。所谓接触抑制实际使细胞汇合形成单层时，细胞变得拥挤，与培养液接触的表面区域也相应减少，营养成分消耗，其分裂也将停止。细胞生长曲线细胞数量生长天数缓慢生长期对数生长期平衡期

（1）迟缓期（或延迟期）当细胞接种到培养瓶后，细胞逐渐贴附于瓶底，并恢复贴壁形状，代谢开始旺盛，出现细胞分裂及增殖，但生长缓慢。

（2）对数生长期：此期几乎所有的细胞都在进行分裂，细胞数目迅速增长。期细胞倍增时间（TD）等于细胞周期时间（TC）长度。这一期常用细胞倍增时间及细胞分裂指数来判定。（3）平衡期（平坦期）这期细胞数目虽然在增加，但其增加速度在减慢，直至细胞数量不再增加，处于平衡状态。

3.1原代细胞培养的传代细胞由培养瓶内分离再培养称之为传代,进行一次分离再培养称之为传一代。原代培养的首次传代是建系的关键时期，细胞需覆盖大部分瓶底后再传代。首次传代时细胞接种数量要多一些，使细胞能尽快适应新环境而利于细胞生存和增殖。3.2细胞传代方法贴壁生长的细胞用消化法传代；部分贴壁生长的细胞用直接吹打即可传代；悬浮生长的细胞采用离心分离后传代，3.2.1贴壁细胞传代步骤吸除瓶内旧培养液；加入1ml消化液；37C或室温25C消化2~5分钟显微镜下进行观察，发现胞质回缩、细胞间隙增大后；直接加少许含血清的培养液，终止消化；细胞脱离瓶壁后形成细胞悬液计数，分别接种在新的培养瓶内。3.2.2悬浮细胞的传代直接传代即让悬浮细胞慢慢沉淀在瓶底后，将上清洗掉1/2~1/3，然后用吸管吹打形成细胞悬液后，再传代。离心法：离心800~1000rpm，5min，除上清，加新的培养液，然后传代接种。部分贴壁生长细胞直接吹打传代或需消化后传代3.3细胞系的维持是通过换液、传代和细胞冻存实现的：建立档案：记录组织来源，生物学特性，培养液要求、传代、换液时间和规律，细胞的遗传学标志，生长形态，常规病理染色的标本等。3.3细胞系的维持防细胞之间的交叉污染，传代时所用器械要编号或做好标记每一种细胞系都应有充足的冻存储备，以防绝种；另外二倍体细胞等有限细胞系如果暂时不用最好冻存以免传代太多，造成细胞衰老或发生改变4.1细胞的冻存冻存细胞要缓慢冷冻。减少细胞内冰晶的形成是减少细胞损伤的关键。冷冻保护剂的使用，可使细胞免受冰晶形成和渗透压改变而致的损伤。常用二甲基亚砜和甘油。冻存细胞最好每三个月复苏一次，检测细胞原特性是否改变。细胞冻存步骤

取生长对数期的细胞消化成细胞悬离心细胞记数2.5x106/ml冻存液加含10%DMSO冻存液熔封置4度数小时，负20度过夜或-70°C放置2-3h移入液氮罐中记录细胞复苏步骤取出安瓶立即放入37°C水中消毒安瓶开封后将细胞移入离心管中加培养液离心记数接种培养瓶培养4.3培养细胞的运输冷冻储存运输，即利用特殊容器内盛液氮或干冰冻存充液法