多花相思离体培养与再生体系的建立

1、园林植物与观赏园艺专业毕业论文 精品论文 多花相思离体培养与再生体系的建立关键词：多花相思 离体培养 愈伤组织 植株再生摘要：多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽

2、率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳二次继代培养基为MS培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花

3、相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。

4、6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖培养基上，30天后，小苗增殖数为141。正文内容 多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代

5、培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳

6、二次继代培养基为MS培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组

7、织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖

8、培养基上，30天后，小苗增殖数为141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污

9、染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳二次继代培养基为MS培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，

10、筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001m

11、gL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖培养基上，30天后，小苗增殖数为141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子

12、苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳二次继代培养基为MS培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖

13、30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg

14、/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖培养基上，30天后，小苗增殖数为141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent）W

15、illd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂

16、对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳二次继代培养基为MS培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思

17、组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接

18、在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖培养基上，30天后，小苗增殖数为141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思

19、无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳二次继代培养基为MS培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA

20、03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06

21、mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖培养基上，30天后，小苗增殖数为141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文

22、以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA0

23、5mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳二次继代培养基为MS培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相

24、思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十m

25、A05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖培养基上，30天后，小苗增殖数为141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精

26、浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳二次继代培养基为MS培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交

27、试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生

28、植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖培养基上，30天后，小苗增殖数为141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展

29、开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳二次继代培养基为MS培养基+KT03

30、mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA03mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导

31、培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖培养基上，30天后，小苗增殖数为14

32、1。多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中

33、，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL+蔗糖30gL，30d后增殖数可以达到2914；最佳二次继代培养基为MS培养基+KT03mgL+BA10mgL+IBA15mgL+AC12gL+蔗糖30gL；30d后增殖数可以达到4179；最佳三次及多次继代培养基为MS+BA02mgL+IBA03mg/L+蔗糖20g/L。30d后增殖数可以达到3309。 3多花相思小苗生根诱导。采用正交试验设计，考虑不同种类和浓度生长素对多花相思小苗生根的影响，筛选出最佳生根培养基为MS+IBA0

34、3mg/L+IAA01mg/L+蔗糖30g/L。 4多花相思组培苗的炼苗和移栽。实验结果表明：黄心土：泥炭土=2：1的效果最好，成活率达到855。 5多花相思愈伤组织体系的建立。以多花相思种子苗下胚轴以上部分为愈伤组织诱导材料，筛选出愈伤组织的最佳诱导培养基为MS+BA10mgL+KT06mgL+IBA06mg/L+蔗糖30g/L。愈伤组织的最佳继代培养基为MS+BA10mgL+KT10mgL+IBA06mgL+蔗糖30gL。当光照强度为1200Lx时，愈伤组织长势最好。 6多花相思愈伤组织培养再生植株。以多次继代的愈伤组织为基本材料，在MS+TDZ001mgL+NAA02mg/L+蔗糖30g

35、/L培养基中，可使愈伤组织分化率达到89，将分化愈伤组织转接在MS+TDZ001mgL+NAA02mgL+蔗糖30gL培养基上，再生率为98。在12MS十mA05mgL+NAA01mgL+AC12g/L+20gL蔗糖培养基上，30天后，小苗增殖数为141。多花相思（Acaciafloribunda（Vent）Willd）自然分布于澳大利亚昆士兰、新南威士和维多利亚等州，适应性较强，有较高的观赏价值。本论文以自然状态下多花相思的种子为基本材料，从无菌体系的建立、继代培养、生根诱导、炼苗移栽等各个环节展开多花相思无菌体系的建立及快繁技术的研究；同时以多花相思种子苗下胚轴以上部分为材料，进行愈伤组织的诱导，并从愈伤组织分化出苗。主要研究结果如下： 1多花相思无菌体系的建立。采用184gmL浓硫酸处理种子10min效果最好，发芽率可达90。然后用75酒精浸泡10s，01升汞浸泡15min，无菌水冲洗7遍，可以使污染率控制在3，最后接种到MS培养基中，生长状况良好。 2采用正交试验设计，考虑不同植物生长调节剂对多花相思小苗增殖的影响，筛选出最佳一代培养基为MS+KT04mgL+IBA05mg/L+BA05mgL