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文档简介

1、    代谢型谷氨酸受体亚型在成年猕猴腰骶段脊髓中的分布(1)    】 目的: 为探讨代谢型谷氨酸受体亚型在猕猴脊髓中可能的功能提供形态学依据.方法: 采用免疫组织化学技术, 在光学显微镜下观察代谢型谷氨酸受体亚型(mGluR1, 2/3, 5, 7) 在大鼠腰骶段脊髓内的分布.结果: mGluR1在脊髓全层中均有分布.在后角浅层中,免疫染色阳性产物主见于神经毡和少量中间神经元的胞体及突起.在后角深层、中间带外侧核以及脊髓前角中则分布有较多数量的免疫染色阳性的神经元胞体和突起,其中前角运动神经元呈免疫染色强阳性;

2、mGluR5样免疫染色阳性结构在后角浅层中也主分布于神经毡和中间神经元的胞体及突起,而在脊髓的其他区域则分布有大量的免疫染色强阳性神经元及突起;mGluR2/3和mGluR7亚型主分布在脊髓后角浅层神经毡,未见免疫染色阳性神经元.结论: 代谢型谷氨酸受体可能对成年哺乳动物脊髓局部环路的信息传递与整合发挥调节作用.【关键词】 受体,亲代谢性谷氨酸盐;脊髓;猕猴;免疫组织化学0引言谷氨酸(Glutamate, Glu) 是中枢神经系统中主的兴奋性神经递质, 与兴奋性突触传递、神经元的发育和死亡、突触的可塑性以及某些神经疾病的发生密切相关.长期以来,人们一直认为谷氨酸仅通过一类配体门控性离子通道受体

3、(即NMDA、AMPA和KA受体)来发挥对突触传递的快速性调节作用.然而,近年的实验表明, 谷氨酸还可通过一类G蛋白偶联受体,即代谢型谷氨酸受体(metabotropic glutamate receptors, mGluRs),参与离子通道的调节和第二信使的合成.应用分子生物学技术迄今已成功地克隆出8种亚型代谢型谷氨酸受体 (mGluR18) 1-4.根据各亚型间氨基酸序列的同源性、信号转导机制以及药理学特性, 又可将之归类为3组: mGluR1和mGluR5; mGluR2和mGluR3; mGluR4,mGluR6,mGluR7和mGluR8.脊髓是哺乳动物躯体和内脏感觉和运动的低级中枢

4、.脊髓后角是机体接受伤害性信息传入的重部位,也是对伤害性信息进行加工、整合处理的初级门户.脊髓前角富集运动性神经元,同时也是下行性传导束发挥运动调节作用的最终靶区.大量的研究表明: 大鼠脊髓中含有丰富的代谢型谷氨酸受体5-10,它们在脊髓水平的信息传递与整合过程中发挥重的作用.然而,代谢型谷氨酸受体各个亚型在灵长类动物脊髓中的分布情况,目前则鲜见报道.因此, 本研究采用免疫组织化学方法系统地观察了代谢型谷氨酸受体各个亚型在成年猕猴腰骶段脊髓中的分布情况.1材料和方法11材料成年雄性猕猴2只,体质量810 kg.均购自第四军医大学实验动物中心.846合剂 im将其深麻后, 开胸经升主动脉插管.随

5、后用1500 mL的磷酸盐缓冲液(001 mol/L PBS, pH 74) 冲血, 再用8 L含40 g/L多聚甲醛和10 g/L苦味酸的磷酸缓冲液(PB, pH 74) 灌注固定2 h.灌注毕后取出腰骶段脊髓,剥膜并修块后将之置于含300 g/L蔗糖的01 mol/L的PB(pH 74)内过夜直至沉底(4).12方法121免疫组织化学方法取出脊髓行冰冻切片,片厚30 m.切片分为7套, 充分漂洗后收集于001 mol/L PBS内.第14套切片分别行mGluR1、mGluR2/3、mGluR5和mGluR7免疫组织化学染色.具体步骤如下: 兔抗mGluR1、mGluR2/3、mGluR5和

6、mGluR7抗体室温孵育过夜, 稀释度分别为11000, 1500, 11000, 1500.抗体特异性均已鉴定1-4; 生物素标记的羊抗兔IgG (Sigma, 1400)室温孵育2 h; ABC复合物(Sigma, 1400)室温孵育2 h.切片最后在含有05 g/L DAB (Sigma)和003 g/L H2O2的005 mol/L TrisHCl缓冲液(pH 76)内呈色2030 min.以上各步骤间均用001 mol/L PBS充分漂洗.呈色结束后裱片、脱水透明、DPX 封片.第5套切片行Nissl染色.122第6、7套切片分别用正常兔血清和001 mol/L PBS替代一抗, 再

7、按上述步骤进行免疫染色,结果均为阴性.2结果MGluR1在脊髓各层中均有分布.在脊髓后角和中间带外侧核中主见于神经毡,但是也可见到少量免疫染色阳性的神经元稀疏地分布在脊髓灰质中,胞体多为椭圆形或梭形,由背侧向腹侧方向伸展(Fig 1A).免疫阳性产物及其分布密度均呈由脊髓后角向中间带外侧核逐渐递减的趋势.但是在脊髓前角中则分布由浓密的免疫染色强阳性的神经元(Fig 1B);mGluR5也分布于脊髓全层.但是免疫染色强度和免疫染色阳性结构的密度均明显高于mGluR1.在脊髓后角浅层,免疫阳性产物主分布在神经毡中,但也有少量的免疫染色阳性的神经元胞体(Fig 1C).在后角深层和中间带外侧核中,免

8、疫阳性产物主分布在神经元的胞体及树突上,胞体多为椭圆形、梭形或多角形(Fig 1C, D).脊髓前角中则密集分布有大量的免疫染色强阳性的运动神经元的胞体和树突(Fig 1E, F);与I组代谢型谷氨酸受体的分布截然不同的是,mGluR2/3和mGluR7仅仅分布于脊髓后角浅层神经毡中,没有观察到免疫染色阳性的神经元胞体(Fig 1G, H).在脊髓后角深层和前角中则没有发现mGluR2/3和mGluR7的免疫染色阳性结构.            作者:贺世明赵磊郎兵焦西英赵振

9、伟高国栋 【关键词】脊髓Distribution of subtypes of metabotropic glut         本篇论文是由3COME文档频道的网友为您在网络上收集整理饼投稿至本站的,论文版权属原作者,请不用于商业用途或者抄袭,仅供参考学习之用,否者后果自负,如果此文侵犯您的合法权益,请联系我们。3讨论在本研究中,我们观察到I组代谢型谷氨酸受体(mGluR1和mGluR5)在成年猕猴脊髓全层中均有表达.其中,mGluR1在脊髓前角神经元中表达强度较高,这一现象与mGluR1在大鼠脊髓中的分布情况

10、相类似但又有所不同.大鼠脊髓中,mGluR1主分布在后角深层和前角7.而Aronica等11则报道在正常人脊髓中,mGluR1也分布于脊髓全层中.在大鼠脊髓中,mGluR5主分布在后角浅层.超微研究结果表明它们主分布在脊髓后角中间神经元的胞体和树突上5-7.本研究结果也表明,在猕猴脊髓后角中有大量的mGluR5免疫染色强阳性的中间神经元,提示它们可能主定位在突触后膜.此外,除脊髓后角外,脊髓前角运动神经元也强烈地表达mGluR5,表明mGluR5不仅参与了初级传入信息在猕猴脊髓后角中的传递与整合,而且也可能对前角运动神经元的功能发挥调节作用.与组代谢型谷氨酸受体相比,组代谢型谷氨酸受体在猴脊髓

11、中仅仅分布于后角浅层.这一结果与在大鼠中的研究结果十分相似.免疫组化和原位杂交结果均未能在大鼠脊髓中检测到mGluR2或其mRNA的存在.Baxall等8报道mGluR3在大鼠脊髓中主分布在后角,而且在紫外线辐射造成外周炎症时,后角、层中mGluR3的mRNA发生了上调.尽管有关于组代谢型谷氨酸受体位于突触后的报道,但是绝大多数研究者仍然认为型代谢型谷氨酸受体位于突触前而不是突触后9;由于本研究中采用的组代谢型谷氨酸受体的抗体识别mGluR2胞内C末端的813872段残基,而mGluR2和mGluR3胞内C末端呈80的同源性,因此因而不能完全排除猕猴脊髓中没有mGluR3存在的可能性.

12、0;   图1代谢型谷氨酸受体在成年猕猴脊髓中的分布略组代谢型谷氨酸受体虽然种类较多,但是各个亚型在中枢神经系统中的分布仍有区别.MGluR4分布密度最高的是小脑;mGluR6仅分布在视网膜中;mGluR8集中分布在嗅束,迄今为止没有见到mGluR6 和mGluR8在脊髓中分布的报道;中枢中分布最广的是mGluR7.在大鼠脊髓中mGluR7已被证实存在于初级传入神经末梢,主是谷氨酸能末梢的突触前膜活性区,可作为自受体而发挥对谷氨酸释放的负反馈调节作用10.本研究结果也表明在猕猴脊髓中mGluR7也主分布于初级传入神经末梢的分布区域中.然而,它们是否也存在于后角初级

13、传入神经末梢上,目前还没有这方面的报道,需进一步的神经束路追踪实验或背根切断实验以及超微结构研究来加以验证.代谢型谷氨酸受体是一类与G蛋白耦联的调节离子通道和第二信使生成酶的特异受体.其多种亚型的存在,反映出它们在功能上的多样性和复杂性.不同亚型的受体具有不同的胞内信号转导机制.它们对谷氨酸介导的突触传递的调节作用可以表现为增强作用,也可以表现为抑制效应.最终效应取决于局部神经环路的构成.有证据表明它们可以直接影响到中枢神经系统损伤后的修复12,13.本研究结果提示,不同亚型的代谢型谷氨酸受体在成年哺乳动物脊髓水平的信息传递与整合过程中可能具有重的功能调节作用.【参考文献】1 Masu M,

14、Tanabe Y, Tsuchida R, et al. Sequence and expression of a metabotropic glutamate receptor J. Nature,1991;349(4):760-765.2 Houamed KM , Kuijper TL , Gilbert TL , et al. Cloning, expression, and gene structure of a G proteincoupled glutamate receptor from rat brain J. Science, 1991;252(7):1318-1321.3

15、Saugstad JA ,Kinzie JM, Mulvihill ER, et al. Cloning and expression of a new member of the L2amino4phosphaonobutyric acidsensitive class of metabotropic glutamate receptors J. Mol Pharmacol, 1994;45(2) : 367-372.4 Okamoto N , Hori S, Akazawa C, et al. Molecular characterization of a new metabotropic

16、 glutamate receptor mGluR7 coupled to inhibitory cyclic AMP signal transduction J. J Biol Chem, 1994;267(5):1231-1236.5 Jia H, Rustioni A, Valtschanoff JG. Metabotropic glutamate receptors in superficial laminae of the rat dorsal horn J. J Comp Neurol, 1999;410(4): 627-642.6 Romano C, Sesma M, McDon

17、ald CT, et al. Distribution of metabotropic glutamate receptor mGluR immunoreactivity in rat brain J. J Comp Neurol, 1995;355(3):455-469.7 Alvarez FJ, Villalba RM, Carr PA, et al. Differential distribution of metabotropic glutamate receptors 1a, 1b, and 5 in the rat spinal cord J. J Comp Neurol, 200

18、0;422(3):464-487.8 Boxall SJ, Berthele A, Laurie DJ, et al. Enhanced expression of metabotropic glutamate receptor 3 messenger RNA in the rat spinal cord during ultraviolet irradiation induced peripheral inflammation J. Neuroscience, 1998;82(2):591-602.9 Cartmell J, Schoepp DD. Regulation of neurotr

19、ansmitter release by metabotropic glutamate receptors J. J Neurochem, 2000; 75:879-907.10 Ohishi H,Nomura S,Ding YQ, et al. Presynaptic Localization of a metabotropic glutamate receptor, mGluR7, in the primary afferent neurons: An immunohistochemical study in the rat J. Neurosci Lett, 1995;202(1):85

20、-88.11 Aronica E, Catania MV, Geurts J, et al. Immunohistochemical localization of group I and metabotropic glutamate receptors in control and amyotrophic lateral sclerosis human spinal cord: Upregulation in reactive astrocytes J. Neuroscience, 2001; 105(2):509-520.12 李树合, 章翔, 费舟,等. 代谢型谷氨酸受体拮抗剂MCPG 对大鼠弥漫性脑损伤的保护作用J.第四军医大学学报,2000; 21 (9):1124-1126.Li SH, Zhang X, Fei Z, et al. MCPG prote

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