PCR引物的设计与实验操作技巧

微生物基因工程李刚副教授教学内容一、PCR引物的设计与实验操作技巧聚合酶链式反响、分子克隆及DNA序列分析这三大类实验方法几乎构成了现代分子生物学的实验工作的根底。而三者中，PCR方法在理论上出现最早，在实践中应用得最广泛。PCR反响的七种根本成份热稳定DNA聚合酶。一对特异的引导DNA合成的寡核苷酸引物。dNTP〔混合液：标准PCR反响包含4种等摩尔浓度的脱氧核苷三磷酸，即dATP、dTTP、dCTP和dGTP。二价阳离子。所有的热稳定DNA聚合酶都要求有游离的二价阳离子，通常是Mg2+用于激活。一价阳离子。标准PCR缓冲液内包含有50mmol/L的KCl，它对于扩增大于500bp的DNA片段是有益的，提高KCl浓度在约70－100mmol/L范围内对改善扩增较短的DNA片段产物是有利的。模板DNA。含有靶序列的模板DNA科研单链或双链形式参加PCR混合液中。闭环DNA模板的扩增效率略低于线性DNA。尽管模板DNA的长短不是PCR扩增的关键因素，但当使用高分子量的DNA〔>10kb〕作模板时，如用限制性内切酶先行消化〔此酶不应切割其中的靶序列〕，那么扩增效果更好。PCR引物设计的几条原那么：①引物长度一般引物长度为18-30碱基就足够了。特殊情况下〔比方Tm值或GC含量不适宜〕可以进一步延长到50-60bp长度。但超过60bp的引物长度比较少见。原因一是超过60bp长度的引物比较难以合成，因此合成价格大幅度增加。另外长引物在合成的时候出错率也显著增加。上下游引物的长度应该根本相等，最好相差不要超过3bp。2.碱基组成G＋C含量应在40％到60％之间，4种碱基要在引物中分配均匀。假设是引物存在严重的GC倾向或AT倾向那么可以在引物5’端加适量的A、T或G、C尾巴。3.重复和自身互补序列不能有大于3bp的重复序列或自身互补序列存在。这种序列可形成发夹结构，如果这种结构在PCR条件下稳定，它会非常有效地阻止寡聚核苷酸和靶DNA之间的复性。4．上下游引物的互补性一个引物的3‘端不允许结合到另一个引物的任何位点上。因为在PCR中引物的浓度往往是比较高，所以即使引物间微弱的互补，都会导致引物间形成杂交，随后是引物二聚体的形成和扩增。如果引物二聚体在PCR早期形成，它将和DNA聚合酶、引物及核苷酸竞争进而抑制靶DNA的扩增。精心进行引物设计，应用热启动PCR或降落PCR或特制的DNA聚合酶〔如：AmpliGold，Perkin－Elmer〕都可以防止引物二聚体的形成。当在一个PCR中应用多对引物时，请注意检查任何一个3’末端都不能和其他任何引物互补。5.解链温度〔Tm〕解链温度〔Tm〕：也称熔化温度。计算出来的两个引物的Tm值相差不能大于5C。扩增产物的Tm值与引物的Tm值相差不能大于10C。这些特性保证了扩增产物在每个PCR循环可有效地变性。为什么要计算引物的解链温度解链温度的计算方法6.3‘末端

3’末端的性质非常关键。如果可能的话，每个引物的3‘末端碱基应为G或C，不能为A。然而，并不推荐使用3’端有NNCG或NNGC序列的引物，因为末端GC碱基高的自由能可以促进发夹结构的形成，还可能产生引物二聚体。7．向引物的5‘端添加限制性酶切位点，噬菌体启动子等序列有用而又不与靶DNA序列互补的序列一般加到引物的5’末端。一般来说，这些序列的存在不会显著地影响寡核苷酸和靶DNA之间的复性。这些附加序列包括噬菌体启动子和GC夹子。限制性酶切位点是一个特殊情况。因为位于DNA分子5‘末端的限制性酶切位点的切割效率比较低，所以引物应当超出限制性内切酶识别位点至少3个核苷酸。保护碱基确实定保护碱基确实定不是随意的，通常每一种限制性内切酶都有自己最正确的保护碱基。每一种限制性内切酶与其对应的最正确保护碱基请到NEB公司网站或互联网上查询。8.引导位点的设置根据实验的不同目的，引导位点的设置可能会受到突变位点、限制性内切酶位点、编码序列、微卫星序列和顺式作用元件的影响。当针对cDNA模板设计引物时，正向和反向引物最好结合到不同外显子的不同区域。这些可以很容易地把来源于cDNA的扩增产物和来源于污染的基因组DNA的扩增产物区分开。PCR设计软件推荐PrimerPremier5WDNASISOligo7

PCR高保真酶推荐PE公司〔ABI〕Parken－ElmerDNA聚合酶，TakaRa公司的PrimeSTARHSPolymerase，ToYoBo公司的Kod－PlusPolymerase。PCR产物的克隆

在许多研究中,需要将PCR产物克隆,以获得目的DNA片段。此时,所用PCR循环数应尽量小,以减少平台效应或非特异性扩增产物的干扰。通常将PCR产物插入到载体中有以下一些方法。1.平末端连接：由于TaqDNA聚合酶往往在PCR产物3'端加上多余的非模板依赖碱基,在用平末端连接克隆PCR产物前,可用Klenow片段或T4DNA聚合酶处理补平末端。2.在PCR产物克隆载体尾部加dT或ddT：TaqDNA聚合酶会在3'端加上多余的非模板依赖碱基,而且对A优先聚合,所以PCR产物末端的多余碱基大局部都是A.。利用这一特点,可以经限制酶切割产生的平末端用酶加上dT或ddT,使载体与PCR产物末端互补并进行连接.载体末端加dT尾可直接用TaqDNA聚合酶和dTTP或ddTTP,ddTTP因缺少3-OH而不能再形成磷酸二酯键,保证在载体3'端只加上一个ddTTP,而其5'端所含的磷酸基团可与PCR产物的3'端OH连接,连接产物在载体和PCR产物之间的双链上带两个切口,这种重组DNA仍可转化适宜的受体菌,并在细菌体内修复.目前很多公司已开发出可直接用于克隆PCR产物的带3'-T的T-Vector。3.粘性末端连接：利用引物中附加在5'端的限制酶位点,直接将PCR产物经适当的限制酶切割后产生粘性末端,与载体连接,产生重组DNA.如果下游两个引物中含有两个不同的限制酶位点.经酶切后可定向克隆到载体中。PCR反响有哪些关键环节？①模板核酸的制备，②引物的质量与特异性，③酶的质量④PCR循环条件。寻找原因亦应针对上述环节进行分析研究。

模板最容易出现的问题一、模板含有杂质：①模板中含有杂蛋白质；②模板中含有Taq酶抑制剂；③模板中蛋白质没有消化除净，特别是染色体中的组蛋白；④在提取制备模板时丧失过多，或吸入酚；⑤模板核酸变性不彻底。在酶和引物质量好时，不出现扩增带，极有可能是标本的消化处理，模板核酸提取过程出了毛病，因而要配制有效而稳定的消化处理液，其程序亦应固定,不宜随意更改。

二、模板发生变异：如靶序列发生突变或缺失，影响引物与模板特异性结合，或因靶序列某段缺失使引物与模板失去互补序列，其PCR扩增是不会成功的。通常模板发生变异的主要原因是模板切胶回收时间过长〔一般应控制在1分钟以内〕或无意中将模板置于超净工作台中灭菌所致。

PCR引物常见的问题引物：引物质量、引物的浓度、两条引物的浓度是否对称，是PCR失败或扩增条带不理想、容易弥散的常见原因。有些批号的引物合成质量有问题，两条引物一条浓度高，一条浓度低，造成低效率的不对称扩增，对策为：①选定一个好的引物合成单位。②引物的浓度不仅要看OD值，更要注重引物原液做琼脂糖凝胶电泳，一定要有引物条带出现，而且两引物带的亮度应大体一致，如一条引物有条带，一条引物无条带，此时做PCR有可能失败，应和引物合成单位协商解决。如一条引物亮度高，一条亮度低，在稀释引物时要平衡其浓度。③引物应高浓度小量分装保存，防止屡次冻融或长期放冰箱冷藏，导致引物变质降解失效。④引物设计不合理，如引物长度不够，引物之间形成二聚体等。

DNA聚合酶的问题酶失活：需更换新酶，或新旧两种酶同时使用，以分析是否因酶的活性丧失或不够而导致假阴性。需注意的是有时PCR失败是由于忘加了酶。

Mg2+浓度Mg2+离子浓度对PCR扩增效率影响很大，浓度过高可降低PCR扩增的特异性，浓度过低那么影响PCR扩增产量甚至使PCR扩增失败而不出扩增条带。对于一些难以扩增的模板，建议买PCRBuffer中Mg2+free的PCR试剂，以便自己通过一些预实验找出PCR反响中最正确的Mg2+浓度。

PCR反响体积通常进行PCR扩增采用的体积为20ul、30ul、50ul。或100ul，应用多大体积进行PCR扩增，是根据科研和临床检测不同目的而设定，在做小体积如20ul后，再做大体积时，一定要模索条件，否那么容易失败。如果不愿重新摸索条件，一个最简单可行的方法是按照小体积的条件多做几管，最后将PCR产物聚集在一起。

另外，PCR管有普通管和薄壁管〔thinwallPCRtubes〕之分。普通管和薄壁管的热传导效率是不同的。热盖与非热盖PCR仪早期的PCR仪均为非热盖，因此每个PCR反响管中需要参加无菌石蜡油，以防止溶液的蒸发。现在的PCR仪大局部都有热盖〔及顶部加热器〕，会阻止溶液的蒸发，因此PCR反响管中不需参加石蜡油了。

PCR出现假阳性的原因？

假阳性：出现的PCR扩增条带与目的靶序列条带一致，有时其条带更整齐，亮度更高。出现假阳性的原因主要有：

〔1〕引物设计不适宜：选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性，因而在进行PCR扩增时，扩增出的PCR产物为非目的性的序列。靶序列太短或引物太短，容易出现假阳性。需重新设计引物。

〔2〕靶序列或扩增产物的交叉污染：这种污染有两种原因：一是整个基因组或大片段的交叉污染，导致假阳性。这种假阳性可用以下方法解决：操作时应小心轻柔，防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。除酶及不能耐高温的物质外，所有试剂或器材均应高压消毒。所用离心管及样进枪头等均应一次性使用。必要时，在加标本前，反响管和试剂用紫外线照射，以破坏存在的核酸。二是空气中的小片段核酸污染，这些小片段比靶序列短，但有一定的同源性。可互相拼接，与引物互补后，可扩增出PCR产物，而导致假阳性的产生，这种污染可以通过更换实验场地来解决，有时也可用巢式PCR方法来减轻或消除。

非特异性扩增带出现的原因非特异性扩增带出现的对策〔一〕非特异性扩增带出现的对策〔二〕采用热启动PCR：把PCR混合物在显著低于Tm值的温度下作哪怕短暂的保温，也可能产生引物二聚体和非特异性配对。热启动PCR那么可以大大减少这些麻烦。其目标是在第一个循环中等温度升到超过反响物的Tm值后才允许反响中的一两种关键成分进入反响。例如在覆盖有矿物油的小试验中，所有反响管的一种公共成分〔如Taq酶〕可以先不加，而到第一个循环的变性阶段温度超过80℃以后再加。最近有一种热启动的方法是在参加TaqDNA聚合酶前先在管中参加其单克隆抗体〔Clonetech公司的TaqStartAntibody，或者ToYoBo公司的KodPlusDNA聚合酶〕，在温度升高到将中和抗体变性失活之前，抗体阻遏聚合酶的活性，防止反响开始。非特异性扩增带出现的对策〔三〕嵌套式和半嵌套式PCR对于减少或消除不需要的产物同时提高灵敏度经常是很成功的。首先在常规条件下用第一套跨越目的DNA片段的引物扩增，假象产物经常会与引物中的一条或两条配对，但其内部却是无关序列。接着对一局部反响物－产物混合物进行新一轮扩增，采用的引物与第一对引物内侧的序列配对，在这一轮扩增中只有真正的产物被扩增。这种方法即使在目的产物开始用EB染色检测不到而且有假象带时也常常获得成功。半嵌套式PCR，只第二条引物在目的片段一端的内侧，也同样有效。在基因步行或企图进行5‘或3’端RACE时，由于只有一条引物内部的序列是的，经常需要作这种变动。采用嵌套式PCR方法，第一、二轮扩增在第20个循环左右终止而不是象通常的在第30－35个循环终止会获得更好的结果，这样做减少了产生不需要的高分子量带和成片产物的