生化实验提取与电泳_第1页
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文档简介

实验一组织细胞中基因组DNA的提取实验二琼脂糖凝胶电泳分离DNA片段(水平潜水式)实验一原理样品研磨或者匀浆后加入细胞核裂解液,1、首先在强去污剂或者和蛋白酶K协同下裂解细胞释放出基因组DNA;2、接着加入RNaseA去除RNA;3、然后蛋白沉淀液选择性沉淀去除蛋白;4、最后纯净的DNA通过异丙醇沉淀并重溶解于DNA溶解液。操作步骤1、600μl冰预冷的细胞核裂解液加入10-20mg新鲜组织用小匀浆器匀浆10s,将裂解物转入1.5mlEP管;(4ml)2、将裂解物放置在65℃水浴10min;3、冷却,加入RnaseA(10mg/ml)1.8μl至裂解物中裂解物中至终浓度30μg/ml,颠倒混匀,37℃温育10min去除残留RNA;室温冷却;4、裂解物中加入200μl蛋白沉淀液,涡旋振荡器上高速连续振荡混匀25s,然后冰浴3min;5、13,000rpm离心5min;6、小心缓慢吸取600ul上清到一个新的1.5ml

EP管中,勿吸动沉淀;7、加入等体积的室温异丙醇(约600μl),颠倒30次混匀或直到出现棉絮状(丝状)白色DNA沉淀,12,000rpm离心1min;8、弃上清液,加入1ml70%乙醇后,颠倒漂洗DNA沉淀,12,000rpm离心1min,弃上清液,倒置在吸水纸上轻敲几下,空气晾干沉淀几分钟;9、加入100μl溶解液,EP管做好标记,冰箱-20℃保存至下周。1、DNA溶液放置在65℃温育20min,中间不时轻弹管壁帮助重新水化DNA;操作步骤二(接上周实验)实验二琼脂糖凝胶电泳分离DNA片段(水平潜水式)

原理:分子筛效应溴乙锭(ethidiumbromide,EB),其分子可插入DNA的碱基之间,形成一种络合物,在254~365nm波长紫外光照射下,呈桔红色荧光,籍此可分析实验结果。1.凝胶槽准备:将电泳槽内的有机玻璃内槽(制胶槽)洗干净、晾干,放入制胶玻璃板。取透明胶带将玻璃板与内槽两端边缘封好,形成模子。将内槽置于水平位置,并在固定位置放好梳子。2.制备琼脂糖凝胶:按照被分离的DNA分子的大小选择合适浓度的琼脂糖凝胶。称取一定量的琼脂糖,置于锥形瓶中,加入电泳缓冲液1×TAE,置微波炉或水浴锅中加热至琼脂糖全部融化。3.灌胶:待凝胶冷却至60℃左右加入溴化乙啶(终浓度0.5μg/mL),混匀后小心地倒入内槽玻璃板上,使胶液缓慢展开,直到整个玻璃板表面形成均匀胶层(应注意胶面平整,无气泡),室温下冷却凝固。待完全凝固后,垂直轻拔梳子,取下胶带,将凝胶及内槽放入电泳槽中。添加1×TAE电泳缓冲液使之高出胶面1~3mm。4.加样:在点样板上混合DNA样品和上样缓冲液(上样缓冲液的最终稀释倍数应不小于1×),然后加入胶板的样品小槽内。在样品一侧的样品小槽中加入分子质量标准(DNALadder)。注意加样前要先记下加样的顺序,每加完一个样品,应更换一个加样头,以防污染,加样时勿碰坏样品孔周围的凝胶面。5.电泳:加样后的凝胶板立即通电进行电泳,电压100V,样品由负极(黑色)向正极(红色)方向移动。当溴酚蓝移动到距离胶板下沿约1cm

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