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文档简介
碱性磷酸酶的提取及其
比活性测定带教:张学礼、戴薇薇龚张斌、黎志萍材料选择细胞的破碎分离纯化鉴定
碱性磷酸酶(ALP,AKP)
Alkalinephosphatase一、实验目的1、掌握以有机溶剂分离技术提取蛋白质及酶的原理和方法;2、掌握酶蛋白纯化过程中的活性、比活性、得率及纯化倍数的概念及计算;3、了解AKP的临床意义及纯化蛋白质的一般方法。二、实验原理1、AKP概述
①催化有机单磷酸酯水解,并有转移磷酸基的作用②最适pH:8.6~10.3③
特点:特异性低④体内位置:细胞膜表面-肾小管的筛状缘-肠粘膜的微绒毛-胆小管的细胞膜缘-肝窦状腺表面-胎盘合体细胞滋养层细胞外表面⑤正常血清:ALP主要来自肝(或胆管)和骨骼,约各占总活性的一半。⑥临床意义:血清ALP活力增高常见于
-肝胆疾病(胆道阻塞等)
-骨骼疾病(佝偻病等)
-甲状腺功能亢进
-妊娠和生长期儿童2、AKP的分离、提取、及纯化整个制备过程可分为5个阶段:①材料的选择和预处理,②细胞的破碎,③提取,④纯化(包括盐析、有机溶剂提取、层析、电泳等),⑤浓缩、干燥及保存。①取材取酶含量丰富、容易提取、新鲜的组织本次实验:肝脏②生物组织与细胞的破碎机械破碎法:高速组织捣碎机、匀浆器、研钵渗透破碎法:低渗条件使细胞溶胀而破碎反复冻融法:超声波法:超声波震荡器使细胞膜上所受张力不均而使细胞破碎酶法:如用溶菌酶破坏微生物细胞
③选择合适分离提取方法把混在酶制剂中的大量杂蛋白及其它大分子物质(核酸、脂类、多糖)去除掉把酶从溶液中提取出来有机溶剂方法——
有机溶剂分段沉淀法原理:利用不同的蛋白质在不同浓度的有机溶剂中有不同的溶解度而进行分离。有机溶剂:①正丁醇能去除与pro结合的脂类物质,使pro溶解在溶液中②乙醇30%AKP溶解状态60%AKP沉淀状态③丙酮33%AKP溶解状态50%AKP沉淀状态通过离心,去除部分杂蛋白通过离心,进一步去除杂蛋白④保护酶活性措施低温条件下操作所有试管均需洗干净选择合适的pH及合适的缓冲体系,以稳定酶活性Mg(Ac)2~NaAc混合液提取AKPpH8.8Tris缓冲液测AKP活性保护和稳定AKP
2g新鲜兔肝剪碎→匀浆管
加0.01MMg(Ac)2-0.01MNaAc混合液2ml,匀浆
匀浆液入离心管
用4ml上述混合液冲洗匀浆器,并倒入离心管,混匀,记体积VA
A液A1管A2管剩余A液0.1mlA液+0.1mlA液+4.9ml0.01MpH8.8Tris4.9ml生理盐水
三、操作步骤(待测酶活性)(待测蛋白质含量)加2ml正丁醇,搅拌3-5',室温放置30',过滤,入离心管
上述滤液
加等体积冷丙酮,混匀,
离心2000rpm、5分钟上清入回收瓶沉淀
加4.0ml0.5MMg(Ac)2,搅拌,记体积VB
B液0.10mlB液
+4.9ml0.01MpH8.8Tris
B1管B2管
剩余B液VB'0.1mlB液+4.9ml生理盐水
加
0.45VB'
冷乙醇96%→30%,混匀,
离心2500rpm,5分钟
(待测酶活性)(待测蛋白质含量)上清
弃沉淀入离心管
,记体积VB‘’,加
0.83
VB‘’冷乙醇
96%(30%→
60%)混匀,
离心
2500rpm,5分钟
上清入回收瓶
沉淀加0.01MMg(Ac)2-0.01MNaAc混合液4ml,搅拌,记体积Vc
C液C1管C2管
剩余C液Vc'
0.10mlC
液
+
1.9ml0.01MpH8.8Tris
0.1mlC液+0.4ml生理盐水
加0.5Vc'冷丙酮→33%,混匀,离心2000rpm,5分钟
(待测酶活性)(待测蛋白质含量)上述离心结果上清
弃沉淀上清入回收瓶沉淀加5ml0.01MpH8.8Tris,搅拌,记体积VD
D液D1管
D2管
0.10mlD
液
+
0.9ml0.01MpH8.8Tris
入离心管
,记体积Vc'',加1/3Vc''冷丙酮→
50%,混匀,
离心2000rpm,5分钟
剩余D液(待测酶活性)(直接待测蛋白质含量)上述离心结果比活性:指单位质量的蛋白质制剂中所含的酶活性单位
比活性=酶活性单位数/mg蛋白二、实验原理
3、建立测定酶比活性的方法
①②磷酸苯二钠法原理:磷酸苯二钠AKP苯酚K3Fe(CN)64-氨基-安替比林醌类化合物λ=510nm①测定酶活性
AKP活性单位定义:37℃,反应15分钟,产生1ug苯酚
一个AKP活性单位(u)试剂(ml)B1234A1稀释液0.10B1稀释液0.10C1稀释液0.10D1稀释液0.10pH8.8Tris缓冲液0.10复合基质液33333
立即混匀。将各管置于37℃水浴精确保温15分钟0.5%K3Fe(CN)622222
立即混匀。终止酶促反应,室温静置10分钟。H2O调零,
λ=510nm比色,记录各管OD。计算酶活性:各制剂总AKP单位数(U)=查表所得值×稀释倍数×总体积注:A1、B1、C1、D液分别稀释50、50、20、10倍(标准曲线)
考马斯亮蓝法
(CoomassieBrilliantBlueG-250,Bradford法)
考马斯亮蓝G-250——红色和蓝色
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