医学精品课件神经细胞培养2

1、神经细胞培养2021/7/16 星期五1第一节：细胞培养的基本知识1定义：组织培养 (Tissue culture ) ：细胞培养 (cell culture)：器官培养 ( organ culture)： 统称为体外培养 （In vitro)2021/7/16 星期五22 组织或细胞培养的优点：1）：研究对象是活细胞 2）：研究条件可以人为的控制3）：研究的样本可以达到比较均一性4）：研究的内容便于观察、检测和记录5）：研究的费用相对比较经济6） ：可作为一些遗传物质的运载细胞7) ：干细胞的广泛应用前景3 组织或细胞培养的不足：1）与体内条件存在差异 ；2）细胞培养存在一定的不稳定性202

2、1/7/16 星期五3培养细胞学的研究内容1 培养细胞学在病毒学中的应用2 细胞生物学的基础研究: 细胞培养使细胞生物学迅速发展3 细胞工程学的研究手段，利用细胞融合及杂交技术，进行细胞工程的研究与开发。4 干细胞的培养及应用5 淋巴细胞培养技术的应用6 遗传性疾病的产前检查7 细胞作为毒性实验及生物安全性实验的工具8 细胞培养在现代生物技术中应用很广，如基因分离，基因测序与表达，基因转移与重组，癌基因的研究等。2021/7/16 星期五44 培养细胞的特性 1）培养细胞生长方式： a 贴附生长型细胞 （大多数） b 悬浮生长型细胞（少数） 2）培养细胞生长特点：贴附；接触抑制；密度依赖性20

3、21/7/16 星期五52021/7/16 星期五62021/7/16 星期五75 培养细胞生长的条件 1）细胞的营养需要： a 基本营养物质 ：氨基酸 、维生素、碳水化合物及一些无机离子； b 营养因子等物质 2）细胞的生存环境： a 温度：哺乳动物和人类为3537；鸟类为38.5 b 气相及PH 值 ：O2及CO2的值： CO2=5%；PH=7.27.4 c 渗透压：260320m mol/L2021/7/16 星期五83) 无污染及无毒：体外培养的细胞必须生长于无污染及无毒的环境！ 无毒：与细胞直接接触者培养器皿、底物、培养基，蒸馏水等； 间接接触者配制培养基的器皿、瓶盖、瓶塞等 无污染

4、： 微生物及交叉污染，（霉菌污染常见）2021/7/16 星期五96 常用的培养用液及培养基培养用液：水平衡盐溶液（）（见表）作用：消化液胰蛋白酶液（%）二乙烯四乙酸二钠（）胶原酶： 甘氨酸 羟脯氨酸敏感培养基：1天然培养基（血清，血浆，组织浸出液，水解乳蛋白） 2 合成培养基（ S F12（） ）等2021/7/16 星期五10常用的平衡盐溶液（g/L）2021/7/16 星期五11细胞计数法：原则：取0.1 ml细胞悬液 加 Hanks 液0.9ml，混匀后滴于血细胞计数板上， 在低倍显微镜下计数四角大方格内细胞。计数过程中对于大方格边缘压线按照数上不数下，数左不数右的原则。 细胞浓度=4

5、个大方格内细胞数4 104 稀释倍数 = 细胞数/ml 2021/7/16 星期五12细胞活性的检查台盼蓝染色：0.2 ml 细胞悬液加0.4 ml台盼蓝溶液混合，滴少许于载波片上， 低倍镜计数200细胞，算比率，正常不着色，死细胞为兰色细胞活力（%）=（细胞总数-着色细胞数）/总细胞数100%2021/7/16 星期五13第 二节：神经细胞体外培 养的 基本概念和方案神经细胞培养的类型 1 原代培养 原代培养（primary culture)：指从活体获得细胞、组织或器官在体外条件下进行的第一次培养 传代培养(subculture)：当细胞持续生长到达一定密度之后，就应当将细胞分成两部分（或

6、更多）至新的培养器皿并补充新的培养液为传代培养。 2 细胞系培养 2021/7/16 星期五14一 神经元的原代培养(Primary culture)一、组织来源：1） 种属： 大鼠 小鼠 家鸡 瓜蟾 海兔 蜗牛 水蛭 等2）年龄：一般为胚胎或新生动物组织神经胶质细胞：生后早期大部分神经元 ：胚胎末期颗粒细胞： 生后两周以内主要根据轴突和树突广泛分枝发育之前培养 2021/7/16 星期五15二、常用试剂1） 培养液 A DMEM ： B F12 培养液 C DMEM/F12 培养液 D 无血清培养液加神经营养因子 E Neurobasal 培养液2） D-Hank液（其中可加入牛血清白蛋白3

7、g/L）（HBSS）聚L -赖氨酸：处理培养皿（瓶）（10mg/L）5-10 min神经营养因子： 睫状神经营养因子（ ciliary neurotrophic factor, CNTF): 支持交感神经、副交感神经和感觉神经的生长与存活； 脑源性神经营养因子（brain derived neurotrophic factor ,BDNF):支持外周和中枢特殊细胞群体的神经细胞； 硷性成纤维生长因子（basic fibroblast growth factor, bFGF ) 等2021/7/16 星期五16三、培养操作过程 新生13d 大鼠或者胚胎18-19d大鼠，麻醉后75%酒精浸泡消毒，

8、断头后移入超净工作台，无菌条件下开颅，快速取脑，置于D-Hanks液中，仔细剥除脑膜和血管，小心剥离脑组织（海马），放入10ml小瓶中剪碎，加入0.25%胰蛋白酶放入37培养箱，定期振摇促消化。消化约20min，用含血清的DMEM培养液终止消化，吸管反复轻柔吹打，用200目不锈钢筛网过滤，将滤液分散组成制成细胞悬液，1000rpm/min离心、洗细胞两次，每次10min，吸收细胞悬液，用血球记数板快速计数细胞数，用含10%胎牛血清的DMEM培养基，稀释细胞制成一定浓度细胞悬液，接种于经多聚赖氨酸处理过的24孔培养板或培养瓶内（板孔放置0.80.8cm的小盖玻片），放入5%CO2培养箱，37培养

9、。2021/7/16 星期五17四、神经元的鉴定：神经元特异性烯醇化酶（ Neuron specific enolose NSE）、 微管相关蛋白（Microtubule associated protein MAP2） 神经元,五、神经元的纯化：胞嘧啶阿拉伯糖 ，培养2d 后用含510 mol/L 胞嘧啶阿拉伯糖的培养24 hour ,然后改用常规培养液。特殊培养液：neurobasal 培养基 2021/7/16 星期五18培养过程中注意事项 1） 培养底物的处理： 多聚赖氨酸和多聚鸟氨酸、PEI 细胞外基质成分（胶原） 细胞黏附分子 单层非神经细胞 单层的胶质细胞2） 胰蛋白酶的作用时间

10、：3）细胞合适的换液时间：大脑皮质 不用经常换液 海马神经元应半量换液 胶质细胞经常换液2021/7/16 星期五19六、神经元的观察： 刚分离出的神经元呈圆形，用倒置显微镜观察有明显的光晕。接种一般在2-6小时可贴壁；8小时已有纤细有突起长出24小时后可见细胞体积开始增大，呈圆形或椭圆形。生长良好的细胞可见胞体周围有明显的光晕，立体感强，突起以单、双突起为主培养至第4天，神经元胞体明显增大，形态多样，有些具有分枝的突起，培养7天后，神经元形态基本成熟，具有光滑的胞体，发育良好的突起。2021/7/16 星期五202021/7/16 星期五212021/7/16 星期五222021/7/16

11、星期五23MAP-22021/7/16 星期五242021/7/16 星期五252021/7/16 星期五26ABNSE stain neuronTH stain neuron2021/7/16 星期五27Confocal laserscan images of organtypic slice culture from avian hippocampus 2021/7/16 星期五28Slice culture. Lucifer yellow stain (bar 50m)N2021/7/16 星期五29运动神经元 Dil标记2021/7/16 星期五30Purkinje cell in c

12、ulture (PEP-19)2021/7/16 星期五312021/7/16 星期五322021/7/16 星期五332021/7/16 星期五342021/7/16 星期五352021/7/16 星期五362021/7/16 星期五372021/7/16 星期五382021/7/16 星期五392021/7/16 星期五40 二、胶质细胞的培养2021/7/16 星期五41胶质细胞 纤维性 的分类：a大胶质细胞 星形胶质细胞 原浆性 少突胶质细胞 b小胶质细胞周围神经系统主要是施万细胞2021/7/16 星期五42根据免疫组化反应分类：型星型胶质细胞和型星型胶质细胞：标志物检测对象型细胞类

13、型型少突胶质细胞形态多角型星型具有少量突起A2B5 多聚唾液酸神经节苷脂+ GFAP 胶质纤维酸性蛋白+Ran-2大鼠神经抗原-2+GC半乳糖脑苷脂+GD3GD3神经节苷脂+ + 3H-GABAGABA摄取+125I-CYP-肾上腺能受体+NG2300kDa蛋白聚糖+ L1细胞黏附分子+Ia型MHC抗原+ +2021/7/16 星期五43研究胶质细胞的方法1） 从未成熟的脑组织分离、培养获得大量胶质细胞2）已经开发出能识别胶质细胞的免疫学标志物。2021/7/16 星期五44利用细胞培养可研究胶质细胞的特性受体的表达：星型胶质细胞和少突胶质细胞可与传统的神经递质发生反映。（型胶质细胞可表达25

14、种神经配体的受体神经营养因子的分泌：酶的诱导、蛋白质的合成神经递质的摄取髓鞘的形成神经的局部免疫反应代谢过程2021/7/16 星期五45胶质细胞培养的局限性1 大多来自于未成熟大脑，所以不能达到与体内相一致的成熟程度，即使成年也可能有干细胞的存在。其形态可能随培养条件而发生变化。存在不同的细胞亚群 其性质有赖于他们与特殊神经元相互作用。2021/7/16 星期五46培养用液培养基：MEM450ml + 血清 45ml+GLU-谷氨酰胺 青链霉素溶液8ml葡萄糖-谷氨酰胺 青链霉素溶液（100ml） ：葡萄糖 30g；谷氨酰胺 100mmol/l；青霉素 2.5 105U; 链霉素 2.510

15、 g胰蛋白酶：0.25%少突胶质细胞的限定培养液：F12 与DMEM（高糖，4.5 g葡萄糖/L 1：1混合 后加入：BSA ：终浓度为0.66 mg/ml ,胰岛素 :10ng /ml; 孕酮:20 nmol/l; 腐胺:100mol/l; 碳酸氢钠: 3.6 g/l; 硒: 5ng/ml; T3: 30nmol/l; 转铁蛋白: 50 g/ml.2021/7/16 星期五47培养的方法： 1）取材 生后1天的大鼠，75%酒精消毒，断头，置于培养皿中 2）沿纵轴剪开皮肤和颅腔，取出大脑皮质，去除嗅球等 3 去除脑膜，洗涤 （Hanks液） 4） 组织剪成碎块，37缓慢振荡约10 min。5）

16、胰蛋白酶消化6)重复吹打，自然沉淀数次，收集细胞悬液2021/7/16 星期五48（或者6 ）移入试管吹打或加入胰蛋白酶形成单细胞悬液7） 加入完全培养基终止8）调整细胞密度104106/cm2接种于培养瓶，常规CO2孵育箱培养9）接种3天后换液，以后每两天换液10）传代, 0.25% 胰蛋白酶消化（覆盖细胞层即可）或着用摇晃的方法2021/7/16 星期五49传代时注意事项：a 细胞没有生长到足以覆盖瓶底壁大部分 表面以前，不要急于传代 b 注意观察不同细胞有不同的消化时间；动作要轻柔，避免损伤细胞 c 首次传代时细胞数量要多一些，使细胞尽快适应新环境鉴定：星形胶质细胞鉴定： 胶质原纤维酸性

17、蛋白（Glial fibrillary acid protein GFAP，A2B5） 少突胶质细胞 鉴定：GalC（-galactosidase)2021/7/16 星期五50神经胶质细胞分离和纯化流程第0-12天 大鼠脑皮质混合细胞培养第12天 预震荡（260rpm，1.5h）收获非贴壁细胞震荡（260rpm，18h）第13天 贴壁的扁平细胞富含型星型胶质细胞 37培养1h收获贴壁细胞富含小胶质细胞非贴壁的，有突起的细胞，（processing bearing PB）富含型星型胶质细胞含10%胎牛血清培养富含少突交质细胞化学限定培养(oligodendrocyte-2-typeastroc

18、yte, 0-2A2021/7/16 星期五51其他可选择的分离培养方案1 低密度接种培养获得型胶质细胞原理： 在低密度时神经元和产生型胶质细胞和少突胶质细胞的前体细胞不能存活 优点：简单缺点：1）仅能获得型胶质细胞2） 成纤维细胞增殖能力更强3）部分型胶质细胞体积变大2 利用抗原和抗体结合原理用流式细胞仪分选获得3 小胶质细胞在营养剥夺的情况下可以生长良好2021/7/16 星期五52污染细胞的去除1 成纤维细胞的污染：为型星型胶质细胞主要污染细胞（用抗纤维结合素（fibronection)的抗体鉴别） 1）预防为主；取材小于两天鼠，脑膜驱除干净， 2）用D-缬氨酸代替培养基中L-缬氨酸2

19、小胶质细胞的污染：1.预震荡的方法可以驱除大部分小胶质细胞，2. 在培养液加入 5mmol/l的L-亮氨酸甲酯，两小时后可杀死小胶质细胞, 3. 让细胞先帖壁半小时后在其他培养皿接种。3 少突神经胶质细胞的污染：1 ）含血清培养； 2）在传代培养时用抗半乳糖脑苷脂抗血清或补体处理2021/7/16 星期五53神经胶质细胞培养的应用1受体表达研究：星型胶质细胞和少突胶质细胞可与传统的神经递质发生反映。（型胶质细胞可表达25种神经配体的受体细胞谱系的研究：研究O-2A前体细胞的分化型胶质细胞分化的研究：胎牛血清中存在诱导O-2A前体细胞分化为型胶质细胞的血清因子称为星型胶质细胞诱导分子（astro

20、glia inducing molecule AIM) 。神经元与胶质细胞相互作用的研究：2021/7/16 星期五542021/7/16 星期五55GFAP2021/7/16 星期五56human Schwann cells 2021/7/16 星期五57细胞系的生长过程：有限细胞系：原代培养传代期衰退期无限细胞系：滞留期 指数增长期 平台期三、神经细胞系培养2021/7/16 星期五58有限细胞系无限细胞系指数细胞数量培养时间（周）原代培养细胞系阶段2021/7/16 星期五59神经肿瘤细胞系培养优点：容易生长、增殖速度快、实验操作简单等优点；可以用液氮长期保存；培养条件标准化；可以导入外

21、源基因；缺点：不能表现出神经元分化的许多过程，不能植入人体。2021/7/16 星期五60神经细胞系的建立：1）动物诱发性神经肿瘤分离细胞进行培养（PC12）2）将连续细胞系的细胞与神经系统特殊区域分离的细胞融合。3）利用含有癌基因的逆转录病毒感染神经细胞，使神经细胞获得永生。2021/7/16 星期五61Neuroblastoma cells on glass slide原始数据图，颜色表示荧光强度2021/7/16 星期五62Neuroblastoma cells on silicon wafer硅片Ra=20nm神经母细胞瘤细胞生长密度很高细胞膜电位正常活性很高Rh-123染色荧光照片1

22、00X2021/7/16 星期五63神经母细胞瘤细胞贴附良好，开始分化并且形成网络2021/7/16 星期五64大鼠嗜铬细胞瘤株PC12的培养 PC12细胞；来源于大鼠嗜铬细胞瘤克隆 ，其具有嗜铬细胞瘤和肾上腺嗜铬细胞相关的表型。可以合成儿茶酚氨，在有NGF的作用下细胞停止增殖，生长出神经突起等特点。优点：1）相当高的稳定性和同质性 2）分化程度高，对NGF有很强的反应 3）已经具备了PC12细胞的生物学特征的背景资料所以常被广泛用于神经细胞分化和功能的研究2021/7/16 星期五65局限性1 PC12 不能作为所有类型神经元模型2 不能接受形成突触联系，3 在NGF处理后仍然可以继续合成D

23、NA4 可能发生自发性突变和继发性变异5 长期培养可能出现明显不同的细胞亚群而导致感性趣的表型消失，2021/7/16 星期五66一、 PC12细胞的常规培养1）培养液：85%RPMI1640培养液、10%马血清、5%胎牛血清，也可用DMEM或 F122）培养的底物：PC12细胞对塑料和玻璃黏附能力较差，所以必须在培养前进行底物处理：胶原、多聚赖氨酸、多聚鸟氨酸等2021/7/16 星期五67PC12细胞的培养和传代 1）PC12细胞 增倍时间为2.54天 实际可7-10天传代一次。2) 传代比例为1：3或1：43）换液时间为2-3天 每次换液约为2/3 的培养液4）通过机械分离进行传代培养-

24、用吸管轻轻吹打5）必须选择生长在胶原或着其他底物的细胞群体进行传代2021/7/16 星期五68PC12细胞的冻存和复苏PC12细胞可长期冻存保种过程： 细胞吹打从培养皿脱落，离心收集，并悬浮于10%DMSO的完全培养液中，用冻存管分装细胞悬液，方法 为每分钟-1 C的速度降至-60 C，或者放入-80C 过夜 ，可达6个月。长期冻存可放置于液氮罐中。复苏：37 C 水浴中快速复温，离心漂洗去除冻存液后 重悬浮于完全培养液。2021/7/16 星期五69PC12细胞培养常出现的问题1） 细胞生长不良 血清问题或 密度过低2）细胞贴壁不良3）对 NGF 反应不良 细胞群体变异、NGF 失活202

25、1/7/16 星期五70神经生长因子（NGF)的处理1 神经纤维的生长研究：1） 细胞密度(2.510)x104 2)合适的底物处理方案:NGF可减弱细胞对塑料培养皿的黏附能力 3)NGF的浓度: 工作浓度为 2nmol/l储存浓度为 250g/ml， 溶剂为醋酸钠缓冲液(ph=5) 温度为-80 4)作用时间 :10天左右,神经生长速度为50 m/d 2021/7/16 星期五712 神经纤维再生: 研究NGF对神经再生的作用。方法： NGF预处理一周 吹打 离心 ，去上清液 并重新接种，可23天重新形成网络，可冻存长期保存。3 NGF去除： 研究NGF作用方法：1）先更换培养液4-6次，间

26、隔培养数小时再换2次，吹打细胞，离心漂洗4次，再接种。2） 用抗NGF血清2021/7/16 星期五722021/7/16 星期五73PC-12 cells-NGF+NGF9 days+NGF9 days+NGF14 days2021/7/16 星期五74神经元网络在神经芯片上的定位培养2021/7/16 星期五75神经界面芯片的研究 慕尼黑的Max Plank生物化学研究所的Peter Fromherz和Gunther Zeck将蜗牛神经细胞置于一个硅芯片上，使用微型塑料桩子将它们围在特定位置。邻近的细胞彼此之间以及与芯片之间形成连接。(2001) 在每个神经细胞下的刺激物产生一个电压的改变

27、从而激起一个通过整个细胞的电冲动产生。作用于芯片上的电冲动从一个神经细胞传递到另一个，再传回到芯片经历一次硅转换。该回路从严格意思上来说是有生命的。 Fromherz 2001 nature2021/7/16 星期五76改变硅片表面的物理参数 ，比如表面粗糙度 Ra设计成网格状的图案 ，不同区域拥有不同的粗糙度大鼠黑质神经细胞可以在粗糙度合适的位置上生长 Fan,20022021/7/16 星期五77当前研究进展研究硅基芯片的结构参数和神经元在芯片上的贴附性能的关系多种神经细胞在具有纳米粗糙度的硅片上的培养后的存活和状态分析改变硅基底纳米粗糙度 Ra 5nm-100nm.改变培养细胞种类不同的

28、神经细胞可能会有不同的表面粗糙度要求。培养条件的变化可能会导致细胞对表面粗糙度要求的变化，（有无血清）2021/7/16 星期五78硅片的处理原料 Si 光滑面 Ra=5nm.腐蚀：用20%HF进行腐蚀。Ra=20nm,t=10min.清洗：用丙酮和浓硫酸洗除光刻胶。消毒：紫外灯照射或者臭氧消毒。2021/7/16 星期五79神经细胞种类的选取大鼠黑质细胞 nigra cells大鼠脑干细胞，brainstem cells神经母细胞瘤细胞 SK-N-SH neuroblastoma cells鸡胚背根神经节细胞，DRG cells2021/7/16 星期五80粗糙度的不同导致细胞的活性差异Ra

29、50nmRa20nm2021/7/16 星期五81硅片，Ra=20nmRa=20nm细胞内外膜电位变化也很显著，但是膜完整性不好，表现在峰上有波动。2021/7/16 星期五82硅片，Ra=50nm细胞膜内外电位变化显著，但细胞核区域膜电位偏高2021/7/16 星期五83细胞呈现多种形态分化突起明显生长出延伸很长的伪足有多极也有双极的细胞Rh123染色荧光照片400X2021/7/16 星期五842021/7/16 星期五852021/7/16 星期五862021/7/16 星期五87神经干细胞的分离和培养NSC可定义为既可以自我更新又可分化为中枢神经系统内所有细胞类型的具有多向分化潜能的一

30、类细胞。神经干细胞的来源： 胚胎干细胞成年的侧脑室下区（SVZ区） 和海马齿状回的颗粒细胞层（SGZ）成人嗅球神经干细胞骨髓基质细胞的转分化2021/7/16 星期五88神经干细胞(Neural stem cells) 一般处于静止或缓慢生长的状态(称为先祖细胞progenitor cells 或过渡细胞t ransient cells; 但是一般认为, 先祖细胞“progenitor”这一概念主要指那些比干细胞更具有明确发展方向的细胞; 而前体细胞“precursor”则是一个不甚严格的概念, 泛指那些处于发育更早期的细胞) , 随时准备应付正常损耗或伤害之所需。在遇到伤害的情况下, 干细胞

31、可以很快扩展以取代失去的细胞, 但仍保留一定数量的干细胞于原处以备下次之用。2021/7/16 星期五892021/7/16 星期五902021/7/16 星期五912021/7/16 星期五92诱导干细胞增殖和分化的营养因子bFGF 对神经干细胞分裂和增殖具有重要作用 对胎鼠纹状体 海马 人胚胎干细胞的增殖和分化有重要作用。EGF （表皮生长因子）对干细胞有分裂和增殖作用。BDNF 使干细胞分化为神经元CNTF（睫状神经营养因子） 定向分化为胶质细胞。胶质细胞生长因子： 使干细胞分化为施万细胞BMP（骨形成蛋白） 与NGF作用可使干细胞成为胶质细胞T3 少突胶质细胞的前体细胞2021/7/1

32、6 星期五93大鼠胚胎海马神经干细胞培养 一、培养用液：PBS-G溶液：含有6g/L葡萄糖的PBS，ph=7.4 N2培养基：DMEM/F12（1：1）混合，添加有29mmol/l 孕酮 ，30 mol/l硒酸钠，100 mol/l腐胺，3.9 mmol/ 谷氨酰胺，5 g/ml 胰岛素， mol/l转铁蛋白。多聚鸟氨酸溶液：终浓度为 g/ml bFGF ,分装后 -20 C 终浓度为20ng/ml 二、细胞分离和培养步骤1）孕期16天大鼠 麻醉后腹部用75%酒精消毒，剪开腹腔 取出角状子宫，取出胎鼠。2021/7/16 星期五942）胎鼠用75%酒精消毒 断头处死，剪开颅腔，解剖显微镜下去除

33、脑膜，分离获取海马组织。3）海马组织置于 PBS-G 溶液中 吹打40次 机械分离4） 离心吸除上清得到沉淀，用N2培养液重悬细胞5）取少量细胞悬液滴于血球计数板上 进行计数。6）将细胞接种于已经处理过的培养板上。7）培养液添加bFGF置37 C ，5% CO2 培养8）3-4天换液一次，培养一段时间传代2021/7/16 星期五95神经干细胞的鉴定：目前 关于神经干细胞的鉴定还在探讨中，主要有以下几种Nestin BrdU PSA- NCAM -tubelin vimentin GAL-C A2B5 ，GFAP 此外 还有 CD133 等神经干细胞的生长方式： 积聚成神经球并向四周扩散202

34、1/7/16 星期五96神经干细胞培养的应用大大促进了神经发育机制的了解,使一些神经营养因子直接应用于体内细胞的增殖和分化有效解决细胞来源，免疫排斥，不能长期存活等问题，使自体细胞移植治疗某些神经退行性疾病成为可能。基因治疗的载体2021/7/16 星期五972021/7/16 星期五982021/7/16 星期五99Samuel I. Stupp, Board of Trustees Professor Department of Materials Science & EngineeringDepartment of Chemistry, andFeinburg School of Med

35、icineNorthwestern University利用纳米技术培养神经干细胞并诱导其分化为神经元2021/7/16 星期五100.1）制备一种纳米级的三维材料（ IKVAV -PA ） 2）这种纳米级材料通过具有极性的多肽分子的自组装形成 3）这种分子结合一段具有生物活性的多肽链，它有使神经干细胞分化成神经元作用。2021/7/16 星期五1012021/7/16 星期五102A Molecular graphics illustration of an IKVAV-containing peptide amphiphile molecule (IKVAV PA)and its self

36、-assembly into nano-fibers. B Scanning electron micrograph of an IKVAV nanofiber network formed by adding cell media (DMEM) to a peptide amphiphile aqueous solution. 2021/7/16 星期五103Table 1. List of PA moleculesMolecule N terminus Peptide (N to C) Charge pH 71 H CCCCGGGS(PO4)RGD - 22 C6H11O CCCCGGGS

37、(PO4)RGD - 33 C10H19O CCCCGGGS(PO4)RGD -34 C16H31O CCCCGGGS(PO4)RGD - 35 C22H43O CCCCGGGS(PO4)RGD - 36 C10H19O AAAAGGGS(PO4)RGD -37 C16H31O AAAAGGGS(PO4)RGD - 38 C16H31O CCCCGGGS(PO4) - 39 C16H31O CCCCGGGS(PO4)KGE - 3 10 C16H31O CCCCGGGS(PO4)RGDS - 311 C16H31O CCCCGGGSRGD -112 C16H31O CCCCGGGEIKVAV - 1PNAS April 16, 2002 vol. 99 no. 8 513351382021/7/16 星期五104 1, C and D. This solid contained encapsulated dissociated NPCs or clusters of the cells kno