【精品PPT】植物组织培养

1、plant tissue culture l绪论 l第一章 实验设备及技术 l第二章 外植体的选择及灭菌 l第三章 外植体的接种培养及驯化 l第四章 愈伤组织的培养 l第五章 器官和体细胞胚的发生 l第六章 植物快繁与脱毒 l植物组织培养是二十世纪发展起来新技 术，近几十年来，由于组培基础理论的 研究深入，发展极为迅速，几乎以植物 为研究对象的各个分支学科都在广泛进 行组培。 l定义：是指植物的任何器官、组织或细 胞，在人工预知的控制条件下，放在含 有营养物质和植物生长调节物质等组成 的培养基中，使其生长、分化形成完整 植株的过成。 l1 根据培养的对象不同，可分为： l 器官培养（organ

2、 culture） l 组织培养（meristem culeure） l 胚胎培养（embryoid culeure ） l 细胞培养（cell culeure ） l 原生质体培养（protoplast culeure ） l2 根据培养过程不同，分为 l 初代培养（primary culture） l 继代培养（ subculture） l 3 根据培养基物理状态，分为 l 固体培养（solid culture） l 液体培养（liquid culture） l4 相关概念 （1）外植体（explant）：由活体（in vivo） 上提取下来的，接种在培养基上的无菌细 胞、组织、器官等。

3、（2）愈伤组织（callus）：在人工培养基上 由外植体形成的一团无序生长状态的薄壁 细胞。 （3）分化（differentiation）：指由受精卵经 细胞分裂，引起极性生长发育成种子，经 根、茎、叶生长，开花结实，形成完整植 株。 （4）脱分化（dedifferentiation）：由高度 分化的植物组织或器官产生无分化状态 的愈伤组织的过程。 （5）再分化（redifferentiation）：将脱分 化形成的愈伤组织转移到适当的培养基 上继续培养，这些无定形的愈伤组织又 会重新分化出根、茎、叶的完整植株的 过程。 l（一）理论依据 植物细胞的全能性（totipotency）： 是指植物

4、体任何一个细胞都携带着一套 发育成完整植株的全部遗传信息，在离 体培养条件下，这些信息可以表达，产 生出完整植株。 l原理：生物体的每一个细胞都包含有该 物种所特有的全套遗传物质，都有发育 成为完整个体所必须的全套基因，从理 论上讲，生物体的每一个活细胞都应该 具有全能性。 l差异： （1）受精卵的全能性最高 （2）受精卵分化后的细胞中，体细胞的全 能性比生殖细胞低。 l潜在全能性的原因： 基因表达的选择性 l科学研究表明：处于离体状态的植物活 细胞，在一定的营养物质，激素和其他 外界条件的作用下，就可能表现出全能 性，发育成完整植株。人工条件下实现 的这一过程，就是植物的组织培养。 l要使细

5、胞全能性表达出来，形成完整植 株，除了生长以外，还要经过分化、脱 分化和再分化等过程。 l在正常情况下： 受精卵受精卵分裂、分化种子种子萌发 完整植株完整植株（具有根、茎、叶、花、果实） 在离体条件下： 离体组织、器官离体组织、器官 （在培养基上） 细胞 分裂（脱分化） 愈伤组织愈伤组织 再分化 完整植株完整植株（具有根、茎、叶、花、果实） l（二）（二）植物组织培养过程： 植物体植物体 （分离）外植体外植体 （脱分化）愈伤愈伤 组织组织 （再分化）生长点生长点 完整植株完整植株（具有 幼根、幼茎） l（三）（三）植物组织培养条件： 含有全部营养成分的培养基、一定的温 度、空气、无菌环境、适合

6、的ph、适时 的光照。 l（四）离体器官的分化方式（四）离体器官的分化方式主要有三种；主要有三种； 1 、由分生组织直接分生芽 2 、由分生组织形成愈伤组织，经过再分 化形成完整植株实现细胞全能性。 3 、 由游离的细胞或原生质体形成胚状体 （embryoid），直接重建完整植株，或 制成人工种子后重建植株 l（五）植物组织培养的特点 1、优越性：可以在不受植物体其他部分 干扰的情况下研究被培养部分（外植体） 的生长和分化规律。 2、 特点： （1）取材少，培养材料经济 （2）人为控制培养条件，不受自然条件影 响。 （3）生长周期短，繁殖率高， （4）管理方便，利于自动化控制 l 3、重要性：

7、 （1）理论上：是研究细胞学、遗传学、 育种学、生物化学和药物学等学科的重 要手段。 （2）生产上：在农学、园艺、林业和次 生代谢物工程等生产领域得到广泛应用。 l1902年，德国植物学家haberlandt提出细 胞全能性的概念。 l1904年，e. hanning 培养萝卜和辣根菜属 的一种植物的胚，使其发育成熟。 l1908年，s. simon 研究培养白杨嫩茎，观 察到愈伤组织的发生和根芽的形成。 l1958年，美国科学家steward等和德国 reinert分别用胡萝卜根细胞诱导形成胚 状体，使细胞全能性得到证实，为组织 培养技术程序奠定了基础。 l1960年，e. c.cockin

8、g采用纤维素酶,果胶酶等 酶制剂分离番茄幼根，获得大量健康的原生 质体。 l1962年，murashige和skoog在烟草培养中筛 选出至今仍然被广泛使用的ms培养基。 l1964年，印度科学家s. guha和 msheshwari培 养南洋金花未成熟的花药时，发现了由大量 胚状体形成的小植株（单倍体植株）。 l罗士韦是我国植物组织和细胞培养研究的开 拓者和奠基人之一。在30年代即开始离体根 的培养，随着又进行幼胚和茎尖的培养。 l70年代初期开始，我国掀起了单倍体育 种的高潮，在小麦、水稻、烟草、玉米、 三叶橡胶等作物上取得了一批有意义的 成果。 l80-90年代，全国研究工作内容明显倾向

9、 无性系的快速繁殖，许多机构开始转向 应用，成为生产实体，如甘蔗、草莓、 葡萄、菠萝、香蕉，各色观赏植物等。 l现在，我国在原生质体培养，体细胞杂 交、突变体筛选、去除病毒、次生代谢 物的发酵生产、人工包装超级种子等方 面都有了进步。 l1、快速繁殖：运用组织培养途径，一个 植株一年可以繁殖几万到几百万个植株， 例如，一株葡萄一年繁殖3万多株，一株 兰花一年繁殖到400万株。 l2、种苗脱毒：针对病毒对农作物造成的 严重危害，通过组织培养可以有效地培 育出大量的无病毒种苗，已经取得的有 马铃薯、草莓、香蕉、葡萄等。 l3、远缘杂交：利用组织培养可以使难度 很大的远缘杂交取得成功，从而育成一 些

10、罕见的新物种。比如辽宁果树研究所 利用这一方法获得了苹果与梨的杂交种。 l4、突变育种：采用组织培养可以直接诱 变和筛选出具抗病毒、抗盐、高赖氨酸、 高蛋白等优良性状的品种。象中国林科 院用逐步加大培养基中盐的浓度，直接 获得耐盐的杨树株系。 l5、基因工程：基因工程主要研究dna的 转导，而基因转导后，必须通过组织培 养途径才能实现植株再生。 l6、生物制品：有些极其昂贵的生物制品， 比如抗癌首选药物紫杉醇等，可以用 大规模培养植物细胞来直接生产。 在进行植物组织培养工作之前，首先 对工作中需要哪些最基本的设备条件有 个全面了解，以便因地制宜地利用现有 房屋，或新建、改建实验室。实验室的 大

11、小取决于工作的目的和规模。以工厂 化生产为目的，实验室规模太小，则会 限制生产，影响效率。在设计组织培养 实验室时，应按组织培养程序来设计， 避免某些环节倒排，引起日后工作混乱。 植物组织培养是在严格的无菌的条件下 进行的，要做到无菌的条件，需要一定 的设备、器材和用具，同时还需要人工 控制温度、光照、湿度等培养条件。 1、实验室设计原则：保证无菌操作，达 到工作方便，防止污染。 2、实验室组成： 化学实验室、洗涤菌室、无菌操作室（接 种室）、培养室、细胞学实验室。 l化学实验室（准备室）：完成所使用的 各种药品的贮备、称量、溶解、配制、 培养基分装等。 主要设备：药品柜、防尘橱（放置培养 容

12、器）、冰箱、天平、蒸馏水器、酸度 计及常用的培养基配制用玻璃仪器。 l洗涤、灭菌室：完成各种器具的洗涤、 干燥、保存、培养基的灭菌等。 主要设备：水池、操作台、高压灭菌锅、 干燥灭火器（如烘箱）等。 l无菌操作室（接种室）：主要用于植物 材料的消毒、接种、培养物的转移、试 管苗的继代、原生质体的制备以及一切 需要进行无菌操作的技术程序。 主要设备：紫外光源、超净工作台、消 毒器、酒精灯、接种器械（接种镊子、 剪刀、解剖刀、接种针）等。 接种室宜小不宜大，一般78平米，要求 地面、天花板及四壁尽可能密闭光滑， 易于清洁和消毒。配置拉动门，以减少 开关门时的空气扰动。 l接种室要求干爽安静，清洁明

13、亮，在适 当位置吊装12盏紫外线灭菌灯，用以照 射灭菌。最好安装一小型空调，使室温 可控，这样可使门窗紧闭，减少与外界 空气对流。 l接种室应设有缓冲间，面积为1m为宜。 进入无菌操作室前在此更衣换帽，以减 少进出时带入接种室杂菌。缓冲间最好 也安装一盏紫外线灭菌灯，用以照射灭 菌。 l培养室：培养室是将接种的材料进行培 养生长的场所。培养室可根据需要培养 架的大小、数目、及其他附属设备而定。 其设计以充分利用空间和节省能源为原 则。高度比培养架略高为宜，周围墙壁 要求有绝热防火的性能。 l培养材料放在培养架上培养。培养架大 多有金属制成，一般设5层，最低一层离 地面高约10cm，其他每层间隙

14、30cm左右， 培养架即高1.7m左右。培养架的长度是 根据日光灯的长度而设计的，如采用 40w的日光灯，则长1.3m，30w的长度 为1m，宽度为60cm。 l培养室最重要的因子是温度，一般保持 在2027c左右，具备产热装置，并安 装窗式或立式空调机。由于热带植物和 寒带植物等不同种类要求不同温度，最 好不同种类有不同的培养室。 l室内温度也要求恒定，相对湿度以保持 在70%80%为好，可安装加湿器。控制 光照时间可安装定时开关钟，一般需要 每天光照1016小时，也有的需要连续照 明。短日照植物要求短日照条件，长日 照植物要求长日照条件。 l现代组培实验室大多设计为采用天然太 阳能作为主要

15、能源，这样不但可以节省 能源，而且组培苗接受太阳光生长良好， 驯化易成活。在阴雨天可用灯光作补充。 l主要设备：培养架（控温控光控湿）、 摇床、培养箱、紫外光源等。 l细胞学实验室：用于培养物的观察分析 与培养物的记数等。 l主要设备：双筒实体显微镜、显微镜、 倒置显微镜。 l其他小型仪器设备：分注器、血球计数 器、移液器、过滤灭菌器、电炉等加热 器具、磁力搅拌器、低速台式离心机等。 l一、营养条件一、营养条件培养基（培养基（culture mediumculture medium） 培养基：是植物组织培养的重要基质。在 离体培养条件下，不同种植物的组织对培 养有不同的要求，甚至同一种植物不同

16、部 位的组织对营养的要求也不相同，只有满 足了它们各自的特殊要求，它们才能很好 地生长。因此，没有一种培养基能够适合 一切类型的植物组织或器官， 在建立一项新的培养系统时，首先必须 找到一合适的培养基，培养才能成功。 l培养基的种类 培养基有许多种类，根据不同的植物 和培养部位及不同的培养目的须选用不同 的培养基。 培养基的产生，最早是sacks（1680） 和knop（1681），他们对绿色植物的成分 进行了分析研究，根据植物从土中主要是 吸收无机盐营养，设计出了由无机盐组成 的sacks和knop溶液，至今仍在作为基本 的无机盐培养基得到广泛应用。 以后根据不同目的进行改良产了许多培 养基

17、，white培养基在40年代用得最多， 现在还常用。而到60-70年代则大多采用 ms等高浓度培养基，可以保证培养材料 对营养的需要，并能生长快、分化快， 且由于浓度高，在配制、消毒过程中某 些成分有些出入，也不致影响培养基的 离子平衡。 l 培养基的名称，一直根据沿用的习惯。 多数以发明人的名字命名，如white培养 基，murashige和skoog培养基（ms培养 基），也有对某些成分进行改良的改良 培养基。 l目前国际上流行的培养基有几十种，常 用的培养基及特点如下： （1）ms培养基：它是1962年由murashige 和skoog为烟草细胞而设计的。特点是无 机盐和离子浓度较高，为

18、较稳定的平衡 溶液。其养分的数量和比例较合适，可 满足植物的营养和生理需要。它的硝酸 盐含量较其他培养基为高，广泛用于植 物的器官、花药、细胞和原生质体培养 效果良好。有些培养基是由它演变而来。 （2）b5培养基：是1968年由galmborg等为培 养大豆而设计的。其主要特点是含有较低 的铵，这可能对不少培养物的生长有抑制 作用。从实践得知有些植物在b5培养基上 生长更适宜，如双子叶植物特别是木本植 物。 （3）white培养基：是1943年由white为培养 番茄根尖而设计的。1963年又作了改良， 称作white改良培养基，提高了meso4的浓 度和增加了硼素。其特点是无机盐数量较 低，

19、适于生根培养。 （4）n6培养基：是1974年朱至清等为水稻 等禾谷类作物花药培养而设计的。其特 点是成分较简单，kno3和（nh4）2so4 的含量高。在国内已广泛应用于小麦、 水稻及其他植物的花药培养基和其他组 织培养。 （5）km8p培养基：它是1974年为原生 质体培养而设计的。其特点是有机成分 较复杂，它包含了所有的单糖和维生素， 广泛用于原生质体融合的培养。 l培养基的成分主要可以分为水、无机盐、 有机物、天然复合物、培养体的支持材 料等五大类。 水（水（h2oh2o） l是植物原生质体的组成成分，也是一切 代谢过程的介质和溶液。它是生命活动 过程中不可缺少的物质。配制培养基母 液

20、时要用蒸馏水，以保持母液及培养基 成分的精确性，防止贮藏过程发霉变质。 大规模生产时可用自来水。但在少量研 究上尽量用蒸馏水，以防成分的变化引 起不良效果。 无机元素（无机元素（inorganic elementinorganic element） l大量元素：指浓度大于0.5/l的元素等，其作 用是： l（1）n 是蛋白质、酶、叶绿素、维生素、 核酸、磷脂、生物碱等的组成成分。是生命 不可缺少的物质。在制备培养基时以no3 n和nh4n两种形式供应。大多数培养基既 含有no3n又含有nh4 n。 nh4n对植 物生长较为有利。供应的物质有kno3、 nh4no3等。也添加氨基酸来补充氮素。

21、l（2）p 是磷脂的主要成分，而磷脂又是 原生质、细胞核的重要组成部分。磷也 是atp、adp等的组成成分。在植物培养 过程中，向培养基内添加磷、不仅增加 养分、提供能量，而且也促进对n的吸收， 增加蛋白质在植物体中的积累。常用的 物质有kh2po4或nah2po4等。 l（3）k 对碳水化合物合成、转移、以及 氮素代谢等密切关系。k增加时，蛋白质 合成增加，维管束、纤维组织发达，对 胚的分化有促进作用。但浓度不易过大， 一般为13mg/l为好。制备培养基时， 常以kcl、kno3等盐类提供。 l（4）mg、s和ca、mg是叶绿素的组成成分， 又是激酶的活化剂；s是氨基酸和蛋白质的 组成成分。

22、它们常以mgso47h2o提供。用 量为1-3mg/l较为适宜；ca是构成细胞壁的 一种成分，ca对细胞分裂、保护质膜不受破 坏有显著作用，常以cacl2h2o提供。 微量元素 l指小于0.5mmol/l的元素，fe，b，mn，cu， mo，co等。 l铁是一些氧化酶、细胞色素氧化酶、过氧化 氢等酶的组成成分。同时，它又是叶绿素形 成的必要条件。培养基中铁对胚的形成、芽 的分化和幼苗转绿有促进作用。在制作培养 基时不用feso4和fecl3（因其在ph值5.2以上， 易形成fe(oh)3的不溶性沉淀），而使用 feso47h2o和naedta的结合成的结合物。 b，mn，zn，cu，mo，co

23、等，也是植物组 织培养中不可缺少的元素，缺少这些物质会 导致生长、发育异常现象。 有机化合物（有机化合物（organic compoundorganic compound） l培养基中只含有大量元素与微量元素，常 称为基本培养基（basic medium）。为不同 的培养目的往往要加入一些有机物以利于 快速生长。常加入的的有机成分要以下几 类： l碳水化合物碳水化合物：最常用的碳源是蔗糖，葡萄糖和 果糖也是较好的碳源，可支持许多组织很好生 长。麦芽糖、半乳糖、甘露糖和乳糖在组织培 养中也有应用。蔗糖使用浓度在2%3%，常 用3%，即配制一升培养基称取30g蔗糖，有时 可用2.5%。但在胚培养时

24、采用4%15%的高浓 度，因蔗糖对胚状体的发育起重要作用。 l不同糖类对生长的影响不同。从各种糖对水稻 根培养的影响来看，以葡萄糖效果最好，果糖 和蔗糖相当，麦芽糖差一些。不同植物不同组 织的糖类需要量也不同，实验时要根据配方规 定按量称取，不能任意取量。高压灭菌时，一 部分糖会发生分解，制订配方时要给予考虑。 在大规模生产时，可用食用的棉白糖代替。 l维生素维生素（vitamin）：这类化合物在植物细胞 里主要是以各种辅酶的形式参与多种代谢活 动，对生长、分化等有很好的促进作用。虽 然大多数的植物细胞在培养基中都能合成所 必须的维生素，但在数量上还明显不足，通 常需要加入一至数种维生素，以便

25、获得最良 好的生长。主要有vb(盐酸硫胺素) 、vb6(盐 酸吡多醇)、vpp(烟酸)、vc(抗坏血酸)，有时 还使用生物素、叶酸、vb12等。一般用量为 0.11.0mg/l。有时用量较高。vb1对愈伤组 织的产生和生活力有重要作用，vb6能促进 根的生长，vpp与植物代谢和胚的发育有一 定关系。vc有防止组织变褐的作用。 l肌醇肌醇（myoinosltol）：又叫环己六醇， 在糖类的转化中起重要作用。通常可由 磷酸葡萄糖转化而成，还可进一步生成 果胶物质，用于构建细胞壁。肌醇与6分 子磷酸残基相结合形成植酸，植酸与钙、 镁等阳离子结合成植酸钙镁，植酸可进 一步形成磷脂，参与细胞膜的构建。使

26、 用浓度一般为100mg/l，适当使用肌醇， 能促进愈伤组织的生长以及胚状体和芽 的形成。对组织和细胞的繁殖、分化有 促进作用，对细胞壁的形成也有作用。 l氨基酸氨基酸（almino acide）：是很好的有机 氮源，可直接被细胞利用。培养基中最 常用的氨基酸是甘氨酸，其他的如精氨 酸、谷氨酸、谷酰胺、天冬氨酸、天冬 酰胺、丙氨酸等也常用。有时应用水解 乳蛋白或水解酪蛋白，它们是牛乳用酶 法等加工的水解物，是含有20种氨基酸 的混合物，用量在10-100mg/l之间。由 于它们营养丰富，极易引起污染。如在 培养中无特别需要，以不用为宜。 天然复合物天然复合物 l天然复合物的成分比较复杂，大多含

27、氨 基酸、激素、酶等一些复杂化合物。它 对细胞和组织的增殖与分化有明显的促 进作用，它对器官的分化作用不明显。 它的成分大多不清楚，所以一般应尽量 避免使用。 l椰乳：是椰子的液体胚乳。它是使用最 多，效果最大的一种天然复合物，一般 使用浓度在10%-20%，与其果实成熟度 和产地关系也很大，它在愈伤组织和细 胞培养中有促进作用。在马铃薯茎尖分 生组织和草莓微茎尖培养中起明显的促 进作用。 l香蕉：用量为150-200ml/l。用黄熟的小 香蕉，加入培养基后变紫色。对ph值缓 冲作用大。主要在兰花的组合培养中应 用，对发育有促进作用。 l马铃薯：去掉皮和芽后，加水煮30min，再 经过滤，取滤

28、液使用。用量为150-200g/l。 对ph值缓冲作用大。添加后可得到健壮的植 株。 l水解酪蛋白：为蛋白质的水解物，主要成分 为氨基酸，使用浓度为100200mg/l，受酸 和酶的作用易分解，使用时应注意。 l其他：酵母提取液(ye)(0.01%-0.05%).主要 成分为氨基酸和维生素类；麦芽提取液 （0.01%-0.5%）、苹果和番茄的果汁、黄瓜 的果实、未熟的玉米胚乳等。遇热较稳定， 大多在培养困难时使用。 植物生长调节物质（植物生长调节物质（hormonehormone） l植物激素是植物新陈代谢中产生的天然化 合物，它能以极微小的量影响到植物的细 胞分化、分裂、发育，影响到植物的形

29、态 建成、开花、结实、成熟、脱落、衰老和 休眠以及萌发等许许多多的生理生化活动， 在培养基的各种成分中，植物生长物质是 培养基的关键物质，对植物组织培养起着 决定性作用。 l1）生长素类（生长素类（auxin）：在组织培养中， 生长素主要被用于诱导愈伤组织形成， 诱导根的分化和促进细胞分裂、伸长生 长。在促进生长方面，根对生长素最敏 感。在极低的浓度下（10-510-8mg/l） 就可促进生长，其次是茎和芽。天然的 生长素热稳定性差，高温高压或受光条 件易被破坏。在植物体内也易受体内酶 的分解，组织培养中常用人工合成的生 长素类物质。 liba（indolebutyri acid 吲哚丁酸）：

30、是促 进发根能力较强的生长调节物质。 l2，4d（2，4二氯苯氧乙酸）启动能 力比iaa高10倍，特别在促进愈伤组织的 形成上活力最高，但它强烈抑制芽的形 成，影响器官的发育，适宜的用量范围 较窄，过量常有毒效应。 liaa（indo acetic acid 吲哚乙酸）： l是天然存在的生长素，亦可人工合成，其 活力较低，是生长素中活力最弱的激素， 对器官形成的副作用小。高温高压易被破 坏，也易被细胞中的iaa分解酶降解，受 光也易分解。 lnaa（naphthalene acetic acid 萘乙酸）： 在组织培养中的启动能力要比iaa高出3-4 倍，且由于可大批量人工合成，耐高温高 压，

31、不易被分解破坏，所以应用较普遍。 naa和iba广泛应用于生根，并与细胞分 裂素互作促进芽的增殖和生长。 l2）细胞分裂素类（细胞分裂素类（cytokinin）：这类激 素是腺嘌呤的衍生物，包括6-ba（6-苄 基氨基嘌呤）、kt（kinetin 激动素）、 zt（zeatin 玉米素）等。其中zt活性最强， 但非常昂贵，常用6-ba。 l在培养基中添加细胞分裂素有三个作用 （1）诱导芽的分化，促进侧芽萌发生长 （2）促进细胞分裂与扩大 （3）抑制根的分化。 因此，细胞分裂素多用于诱导不定芽的 分化和茎、苗的增殖，而在生根培养中 使用较少或用量较低。 l3）ga（gibberellic aci

32、d 赤霉素）： 有二十多种，生理活性及作用的种类、 部位、效应等各有不同、培养基中添加 的是ga3，主要是促进幼苗茎的伸长生长， 促进不定胚发育成小植株；赤霉素和生 长素协同作用，对形成层的分化有影响， 当生长素/赤霉素比值高时有利于木质部 分化，比值低时有利于韧皮部分化：此 外，赤霉素还用于打破休眠，促进种子、 块茎、鳞茎等提前萌发。一般在器官形 成后，添加赤霉素可促进器官或胚状体 的生长。 激素配比模式激素配比模式 l生长素与细胞分裂素的比例决定着发育的方 向，是愈伤组织、长根还是长芽。如为了促 进芽器官的分化，应除去或降低生长素浓度， 或调整培养基中生长素与细胞分裂素的比例。 高 有利于

33、根和愈伤组织形成 生长素/细胞分裂素 中 有利于芽的分化 低 有利于芽的形成 l生长调节物质的使用甚微，一般用mg/l 表示浓度。在组织培养中生长调节物质 的使用浓度，因植物的种类、部位、时 期、内源激素等的不同而异，一般生长 素浓度的使用为0.05%-5mg/l，细胞分裂 素的浓度0.05-10mg/l。 l抗生物质（抗生物质（antibiotic） l抗生物质有青霉素、链霉素、庆大霉素等，用量 在5-20mg/l之间。 l添加抗生物质可防止菌类污染，减少培养中材料 的损失，尤其是快速繁殖中，常因污染而丢弃成 百上千瓶的培养物，采用适当的抗生素便可节约 人力、物力和时间。尤其对大量通气长期培

34、养， 效果好。对于刚感染的组织材料，可向培养基中 注入5%-10%的抗菌素。抗生素各有其抗菌谱，要 选择加以利用，也可两种抗生素混用。 l但是应当注意抗生素对植物组织的生长 也有抑制作用，可能有些植物适宜用青 霉素，而另一些植物却不适应。 l值得一提的是，在工作中不能以为有了 抗生素，而放松灭菌措施，此外，在停 止抗生素使用后，往往污染率显著上升， 这可能是原来受抑制的菌类又滋生起来。 l活性碳（活性碳（active carbon） l活性炭为木炭粉碎经加工形成的粉末结构，它结 构疏松，孔隙大，吸水力强，有很强的吸附作用， 它的颗粒大小决定着吸附能力、粒度越小，吸附 力越强。温度低吸附力强，温

35、度高吸附力弱，甚 至解吸附。通常使用浓度为0.510g/l。它可以 吸附非极性物质和色素等大分子物质，包括琼脂 中所含的杂质，培养物分泌的酚、琨类物质以及 蔗糖在高压消毒只产生的5羟甲基糖醛及激素 等。 l活性炭作用活性炭作用： l茎尖初代培养，可以吸附外植体产生的致死性 褐化物。 l活性炭在生根时有明显促进作用。其机理一般 认为与活性炭减弱光照有关。 l在培养基中加入0.3%的活性炭，还可降低玻璃 苗的产生频率。 l活性炭在胚胎培养中也有一定作用，可减少组 织变褐和培养基变色，产生较少的愈伤组织。 l但是，活性炭有副作用，研究表示，每毫克活 性炭吸附100mg左右的生长调节物质，这说明 l只

36、要极少量的活性炭就可以完全吸附培 养基的调节物质。 l大量活性炭加入会削弱琼脂的凝固能力， 因此要多加一些琼脂。很细的活性炭也 易沉淀，通常在琼脂凝固之前，要轻轻 摇动培养瓶。总之，在使用时要有量的 意识，不能随意添加，使活性炭发挥其 积极作用。 二二 . .培养材料的支持物培养材料的支持物 l琼脂（agar）：在固体培养时琼脂是最好 的固化剂。琼脂是一种由海藻中提取的 高分子碳水化合物，本身并不提供任何 营养。琼脂能溶解在热水中，成为溶胶， 冷却至40c即凝固为固体溶胶。通常所 说的“煮化”培养基，就是使琼脂溶解 于90c以上的热水。琼脂的用量在6- 10g/l之间，若浓度太高，培养基就会变

37、 得很硬，营养物质难以扩散到培养的组 织中去。若浓度太低，凝固性不好。新 买来的琼脂最好先试一下它的凝固力。 一般 l琼脂以颜色浅、透明度好、洁净的为上 品。琼脂的凝固能力除与原料、厂家的 加工方式有关外，还与高压灭菌时的温 度、时间、ph值等因素有关。长时间的 高温会使凝固力下降，过酸过碱会加之 高温会使琼脂发生水解，丧失凝固力。 时间过久，琼脂变褐，也会逐渐丧失凝 固能力。 l三、环境条件三、环境条件 在植物组织培养中温度、光照、湿度等 各种环境条件，培养基组成、ph值、渗 透压等各种化学环境条件都会影响组织 培养育苗的生长和发育。 l因为温度是植物组织培养中的重要因素，所以植物 组织培养

38、在最适宜的温度下生长分化才能表现良好， 大多数植物组织培养都是在2327之间进行，一 般采用25 2。低于15时培养，植物组织会 表现生长停止，高于35时对植物生长不利。但是， 不同植物培养的适温不同，百合的最适温度是20、 月季足25-27、番茄是28。温度不仅影响植物组 织培养育苗的生长速度，也影响其分化增殖以及器 官建成等发育进程。如烟草芽的形成以28为最好， 在120以下，33以上形成率皆最低。 l不同培养目标采用的培养温度也不同，百合鳞 片在30以下再生的小鳞茎的发叶速度和百分 率都比在25以下的高。桃胚在25条件进 行一定时间的低温处理，有利于提高胚培养成 活率。用35处理草莓的茎

39、尖分生组织35d， 可得到无病毒苗。 l组织培养中光照也是重要的条件之一，主要表现在光强、光 质、以及光照时间方面 l1光照强度(light intensity) l光照强度对培养细胞的增殖和器官的分化有重要影响，从目 前的研究情况看，光照强度对外植体及细胞的最初分裂有明 显的影响。一般来说，光照强度较强，幼苗生长的粗壮，而 光照强度较弱幼苗容易徒长。 l2光质(light wave) l光质对愈伤组织诱导，培养组织的增殖以及器官的分化都有 明显的影响。如百合珠芽在红光下培养，8周后，分化出愈 伤组织。生长旺盛，而白光下幼苗纤细。 l但在蓝光下培养，几周后才出现愈伤组织，而唐 菖蒲子球块接种1

40、5d后，在蓝光下培养首先出现 芽，形成的幼苗 l3光周期(light period) l试管苗培养时要选用一定的光暗周期来进行组织 培养，最常用的周期是16h的光照，8h的黑暗。 研究表明，对短日照敏感的品种的器官组织，在 短日照下易分化，而在长日照下产生愈伤组织， 有时需要暗培养，尤其是一些植物的愈伤组织在 暗下比在光下更好。如红花、乌饭树的愈伤组织 l湿度的影响包括培养容器保持和环境的湿度条件， 容器内主要受培养基水分含量和封口材料的影响。 前者又受琼脂含量的影响。在冬季应适当减少琼脂 用量，否则，将使培养基干硬，以致不利于外植体 接触或插进培养基，导致生长发育受阻。封口材料 直接影响容器

41、内湿度情况，但封闭性较高的封口材 料易引起透气性受阻，也会导致植物生长发育受影 响。 l环境的相对湿度可以影响培养基的水分蒸发， 一般要求70%80%的相对湿度，常用加湿器或 经常洒水的方法来调节湿度。湿度过低会使培 养基丧失大量水分，导致培养基各种成分浓度 的改变和渗透压的升高，进而影响组织培养的 正常进行。湿度过高时，易引起棉塞长霉，造 成污染。 l培养基中由于有添加的盐类、蔗糖等化 合物，因此，而影响到渗透压的变化。 通常12个大气压对植物生长有促进作 用，2个大气压以上就对植物生长有阻碍 作用，而56个大气压植物生长就会完 全停止，6个大气压植物细胞就不能生存。 l不同的植物对培养基最

42、适ph值的要求也是不同的 (表21)，大多在5、65左右，一般培养基皆 要求5.8，这基本能适应大多植物培养的需要。 lph值适度因材料而异，也因培养基的组成而不同。 以硝态氮作氮源和以铵态氮作氮源就不一样，后 者较高一些。一般来说当ph值高于65时，培养 基全变硬；低于5时，琼脂不能很好地凝固。因 为高温灭菌会降低ph值(约0.20.3个ph值)因此 在配制时常提高ph值0203单位。ph值大小 调整可用01m的naoh和0im的hci来调整。lml 的naoh可使ph值升高02单位，lml的hcl可使ph 值降低02单位。调节时一定要充分搅拌均匀。 不同植物的最适不同植物的最适ph值值 种

43、类最适ph值种类最适ph值 杜鹃4.0月季5.8 越桔4.5胡萝卜、石刁柏6.0 蚕豆5.5桃7.0 番茄5.7 l氧气是组织培养中必需的因素，瓶盖封 闭时要考虑通气问题，可用附有滤气膜 的封口材料。通气最好的是棉塞封闭瓶 口，但棉塞易使培养基干燥，夏季易引 起污染。固体培养基可加进活性炭来增 加通气度，以利于发根。培养室要经常 换气，改善室内的通气状况。液体振荡 培养时，要考虑振荡的次数、振幅等， 同时要考虑容器的类型、培养基等 l一、母液(stock solution)的配制和保存 l在植物组织培养工作中，配制培养基是日常必备的 工作。为简便起见，通常先配制一系列母液，即贮 备液。所谓母液

44、是欲配制液的浓缩液，这样不但可 以保证各物质成分的准确性及配制时的快速移取， 而且还便于低温保藏。一般母液配成比所需浓度高 10-100倍。母液配制时可分别配成大量元素、微量 元素、铁盐、有机物和激素类等。配制时注意一些 离子之间易发生沉淀，如ca2+和s042+，ca2+、 lmg2+和po43- 一起溶解后，会产生沉淀，一定 要充分溶解再放入母液中。配制母液时要用蒸 馏水或重蒸馏水。药品应选取等级较高的化学 纯或分析纯。药品的称量及定容都要准确。各 种药品先以少量水让其充分溶解，然后依次混 合。一般配成大量元素、微量元素、铁盐、维 生素等母液，其中维生素、氨基酸类可以分别 配制，也可以混在

45、一起。母液配好后放人冰箱 内低温保存，用时再按比例稀释。 母液的配制方法：母液的配制方法： l单配法：将培养基配方中的各种成分分别配成一定 浓度的母液。一般用a:b表示，即每b毫升溶液中含 有a毫克溶质。 l混配法：将几类营养成分按配方中的用量扩大一定 倍数称量，分别溶解后每一类混合在一起定容到一 定体积配成混合母液，浓度可用a mg/l表示，即配 制一升培养基吸取该母液a ml. l生长素配制时可先用少量95%酒精助溶。2，4d可 用o1moll的naoh或koh助溶，加入温水定容。 生长素常配成1mgml的溶液贮于冰箱中备用。 l细胞分裂素类一般先用少量1n盐配溶解后，再 加入温水冷却后定

46、容， l铁盐配法（ms为例）：在装有400ml 蒸馏水 的烧杯中加入2粒苛性钠，溶解后加入3.73g edta-na2，加热使其全部溶解，然后边搅拌边 慢慢加入2.78g feso4.7h2o直至全部溶解，冷 却后定容至500ml，置于冰箱中备用。 l在建立一个新的实验体系时，为了能研 制出一种适合的培养基，最好先由一种 已被广泛使用的基本培养基(如ms培养基 或b5培养基)开始。当通过一系列的实验， 对这种培养基做了某些定性和定量的小 变动之后，即有可能得到一种能满足实 验需要的新培养基，选择最佳培养基。 常用试验方法主要有单因子试验、多因 子试验及广谱实验等。 l在单因子试验中由于培养基中

47、其他成分都维 持在一般水平上，所以只变动一个因子，就可 以找出这一因子对试验的影响和影响的程度。 例如ms基本培养基的其他成分和用量都不变， 只变动naa用量对某一培养物生根的影响，这种 只研究一个因素的试验就是单因子试验。 l生物学试验不同于物理学或化学试验，最显著 的差别是在生物学试验中必需设置对照组与试 验组，试验组可以有一组或几组，随试验的复 杂性而设置，对照组也可能有一组以上。 l试验中要求对照组与试验组中的试验个体， 即植物组织块或其他培养物，必须在遗传 性、生理状态、前培养条件等方面，尽可 能完全一致。以保证试验结果是来源于试 验因子，而不是由于试验材料的不一致导 致的。 l试验

48、中各处理一般都要设有一定的重复， 以取得可靠的试验结果。随试验规模和要 求不同，大多每个项目要有410瓶，每瓶 至少3块培养物或3丛小幼苗。 二、多因子试验二、多因子试验 对培养基中两个或两个以上因素进行研究的试 验称为多因子实验，试验可采用完全试验方案， 也可选用正交设计方案，完全试验方案具有均 衡完全的特点，各个因子的每个水平都相互搭 配，构成了所有可能的处理组合，如研究naa和 6ba的最佳浓度组合，每个因子各设5个浓度 水平(0，0.5，2.5，5，10mgl)，这两种因子 各种浓度的所有组合，就构成了一个具有25项 处理的试验见下表： 2 2种激素种激素5 5种浓度的实验组合种浓度的

49、实验组合 6-ba mg/l） 0 0.5 2.5 5 1 0 naa 0 1 2 3 4 5 (mg/l) 0.5 6 7 8 9 10 2.5 11 12 13 14 15 5 16 17 18 19 20 10 21 22 23 24 25 l 完全试验方案试验因子越多，处理数越多， 试验越复杂，消耗的精力、物力越多。为了 减少试验处理，但又能准确全面地获得试验 信息，通常采用正交试验。例如，采用正交 设计，在使用此表时就可以安排4个因子，3 种水平的试验，一共做9种不同搭配的试验， 其结果相当于做了27次种种搭配的试验。正 交试验虽然是多因素搭配在一起的试验，但 是在试验结果的分析中，

50、每一种因素所 起的作用却又能够明白无误地表现出来。 因此，一次系统的试验结果，就可以把 问题分析得清清楚楚，用有限的时间取 得成倍的收获。在组织培养研究中，可 用于同时探求培养基中适宜的几种成分 的用量，如细胞分裂素、生长素、糖和 其他成分的用量。 l在植物组织分化与再生的研究中，在没有取得 可靠的分化与再生之前，往往添加各种有机营 养成分，而在取得了稳定的再生之后，就可以 逐步减少这些成分。在逐步添加时是使试验成 功，在逐步减少时是缩小范围，以便找到最有 影响力的因子，或是为了实用上的需要竭力使 培养基简化，以降低成本和利于推广。在寻求 最佳激素配比时，也经常用到这种加加减减的 简单方法。

51、l在广谱实验法中，把培养基中所有组分 分为4大类： l无机盐 l有机营养物质(蔗糖、氨基酸和肌醇等) l生长素 l细胞分裂素 对每一类物质选定低(l)、中(m)、和高 (h)3个浓度,4类物质各3种浓度的自由组 l合即构成了一项包括81个处理的实验。 在这81个处理中最好的一个可用4个字母 表示,例如，一个包含中等浓度无机盐， 低等浓度生长素、中等浓度细胞分裂素 和高等浓度有机营养物质的处理即可表 示为mlmh。达到这个阶段，再试用不同 类型的生长素和细胞分裂素即可找到培 养基的最佳配方。这是因为不同类型的 生k素和细胞分裂素对不同植物的活性有 所不同。 l第一节第一节 外植体的选择外植体的选

52、择 l泛指第一次接种所使用的植物组织、器 官等一切材料。如，顶芽、茎段、叶片 等。 l（一）.外植体的选择： l一. 部位：不同的植物、器官和组织其形 态发生能力很不相同。在组培中，选择 合适的，最易表达全能性的部位，是决 定组培系成功建立的前提之一。 l在选择植物外植体进行组织培养时，还 要考虑待培养材料的来源是否保证，是 否容易成苗；同时要考虑到该外植体， 特别是经过脱分化产生的愈伤组织，是 否会引起不良变异，丧失原品种的优良 性状。 l茎尖：对大多数植物来讲，茎尖是较好 的部位，由于其形态已经基本建成，生 长速度快，遗传性稳定，也是获得无病 毒苗的重要途径，但茎尖易受到材料来 源的限制，

53、而采用茎段（一般木本植物、 较大的草本植物）可解决培养材料的不 足。 l叶片：由于叶片的来源最有保证，因而 许多植物的组织培养以叶片为起始培养 物，如，玫瑰、海棠、矮牵牛和豆瓣绿 等许多植物。 l子叶或下胚轴：对一些培养较困难的植 物，则往往可以通过其子叶或下胚轴来 建立其组织培养体系。 l若有可能，最好对培养较困难的植物各 部位的诱导及分化能力进行比较，从中 筛选出最佳外植体。 l二. 取材季节： l对大多数植物而言，应在生长开始的季 节采样较好，若在生长末期或已进入休 眠期时取样，则外植体可能对诱导反应 迟钝或无反应。在母株生长旺盛的季节 取材料，不仅成活率高而且增殖率也大。 如，马铃薯在

54、12月和4月所取的外植体具 有强烈的再生能力。而23月间或511月 间所取的材料，则很少能够再生。 l三. 生理年龄： l按照生理学基本观点，沿植物体主轴， 越向上的部位所形成的器官其生长时间 越短的，其生理年龄也相应越老，越接 近发育上的成熟，越易形成花器官。反 之，越向基部，其生理年龄越小，幼年 的组织都比老年的组织具有较高的形态 发生能力。植株下部组织产生营养芽的 比例高，而上部组织产生花器官的比例 高。因此，外植体的采集尽量选用植物 体最幼态的组织。 l四. 外植体的大小： l外植体越大，污染率越高，但也不能过 小，越小成活率越低。在通常情况下， 叶片、花瓣等的面积约为5mm，茎段为

55、0.5cm，除非是用于去除病毒，否则不宜 将外植体切得过小。 第二节第二节 灭菌灭菌 l灭菌是组织培养重要的工作之一。初学 者首先要清楚有菌和无菌的范畴。有菌 的范畴是：凡是暴露在空气中的物体， 接触自然水源的物体，至少它的表面都 是有菌的。依此观点，无菌室等未经处 理的地方、超净台表面、简单煮沸的培 养基、我们使用的刀、剪在未处理之前、 我们身体的整个外表及与外界相连的内 表，如整个消化道、呼吸道，即我们呼 出的气体、培养容器无论洗得多干净等 等都是有菌的。 l这里所指的菌，包括细菌、真菌、放线菌、藻 类及其他微生物。茵的特点是：极小，肉眼看 不见。无处不在，无时不有，无孔不人。在自 然条件

56、下忍耐力强，生活条件要求简单，繁殖 力极强，条件适宜时便可大量滋生。 l无菌的范畴是：经高温灼烧或一定时间蒸煮过 后的物体，经其他物理的或化学的灭菌方法处 理后的物体(当然这些方法必须已经证明是有效 的)。高层大气、岩石内部、健康的动、植物的 不与外部接触的组织内部，强酸强碱，化学元 素灭菌剂等表面和内部等等都是无菌的。从以 上可以看出：在地球表面无菌世界要比有菌世 界小得多。 l菌是指用物理或化学的方法，杀死物体表面和 孔隙内的一切微生物或生物体，即把所有生命 的物质全部杀死。与此相关的一个概念是消毒， 它指杀死、消除或充分抑制部分微生物，使之 不再发生危害作用，显然经过消毒，许多细菌 芽孢

57、、霉菌的厚垣孢子等不会完全杀死，即由 于在消毒后的环境里和物品上还有活着的微生 物，所以通过严格灭菌的操作空间(接种室、超 净台、等)和使用的器皿，以及操作者的衣着和 手都不带任何活着的微生物。在这样的条件下 进行的操作，就叫做无菌操作。 l一一. 灭菌方法灭菌方法 l常用的灭菌方法可分为物理的和化学的 两类，即：物理方法如干热(烘烧和灼烧)、 湿热(常压或高压蒸煮)、射线处理(紫外 线、超声波、微波)、过滤、清洗和大量 无菌水冲洗等措施；化学方法是使用升 汞、甲醛、过氧化氢、高锰酸钾、来苏 儿、漂白粉、次氯酸钠、抗菌素、酒精 化学药品处理。这些方法和药剂要根据 工作中的不同材料不同目的适当选

58、用。 l湿热灭菌（培养基）湿热灭菌（培养基） l培养基在制备后的24h内完成灭菌工序。高压灭菌 的原理是：在密闭的蒸锅内，其中的蒸气不能外 溢，压力不断上升，使水的沸点不断提高，从而 锅内温度也随之增加。在o1mpa的压力下，锅 内温度达121。在此蒸气温度下，可以很快杀死 各种细菌及其高度耐热的芽孢。 l注意完全排除锅内空气，使锅内全部是水蒸气， 灭菌才能彻底。高压灭菌放气有几种不同的做法， 但目的都是要排净空气，使锅内均匀升温，保证 灭菌彻底。常用方法是：关闭放气阀，通电后， 待压力上升到o05mpa时，打开放气阀，放出空 气，待压力表指针归零后，再关闭放气阀。关阀 再通电后，压力表上升达

59、到01mpa时压力01- 015mpa，20min。 l对高压灭菌后不变质的物品，如无菌水、栽培介质、 接种用具，可以延长灭菌时间或提高压力。而培养 基要严格遵守保压时间，既要保压彻底，又要防止 培养基中的成分变质或效力降低，不能随意延长时 间。 l对于一些布制品，如实验服、口罩等也可用高压灭 菌。洗净晾干后用耐高压塑料袋装好，高压灭菌 20-30min。 l高压灭菌前后的培养基，其ph值下降0.2-0.3单位。 高压后培养基ph值的变化方向和幅度取决于多种因 素。在高压灭菌前用碱调高ph值至预定值的则相反。 培养基中成分单一时和培养基中含有高或较高浓度 物质时，高压灭菌后的ph值变化幅度较大

60、，甚 至可大于2个ph值单位。环境ph值的变化大于 0.5单位就有可能产生明显的生理影响。 l高压灭菌通常会使培养基中的蔗糖水解为单糖， 从而改变培养基的渗透压。在8%-20%蔗糖范围 内，高压灭菌后的培养基约升高043倍。 l培养基中的铁在高压灭菌时会催化蔗糖水解， 可使15%-25%的蔗糖水解为葡萄糖和果糖。培 养基值小于5.5，其水解量更多，培养基中添 加0.1%活性炭时，高压下蔗糖水解大大增强， 添加1%活性炭，蔗糖水解率可达5%。 l(1)经常注意搜集有关高压灭菌影响培养 基成分的资料，及时采取有效措施。 l(2)设计培养基配方时尽量采用效果类似 的稳定试剂并准确掌握剂量。如避免使