细胞培养标准操作程序SOP

细胞培养原则操作程序（SOP）1．目的：为了确保培养细胞的正常生长，实验技术人员必须明确并对的执行细胞培养的基本操作环节，特制订实验室细胞培养操作流程。2．合用范畴：合用于来我院细胞室进行细胞培养工作的人员。3．操作规程：

培养液、PBS、胰蛋白酶的配制

1000ml培养液的配制1、准备用品：培养粉、1000ml烧杯、玻棒、量筒、电子分析天平、PH仪、2～3天内的新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）、NaHCO3粉、1000ml无菌玻璃瓶（100ml×10个玻璃瓶）、青霉素、链霉素、2～3个过滤器、注射器。紫外线照台30min。2、将培养粉用900ml新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）溶解，并冲洗袋内残留粉末。3、充足搅拌，按阐明添加成分（如Invitrogen公司的RPMI-1640配制1000ml需加NaHCO3粉，Invitrogen

公司的DMEM需加NaHCO3粉等），再充足搅拌。无需加谷氨酰胺，因该培养基里已含有。4、用1M（1mol/L）HCl

调PH至左右（细胞适宜在～生长，配制好后PH值会升高～，故配时调PH至左右）。5、用新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）定容到1000ml。6、配青霉素

80万/瓶

+4ml

蒸馏水

溶解

配链霉素100万/瓶

+4ml

蒸馏水

溶解

取青霉素和链霉素加入到1000ml培养液中，使其终浓度均为100U/ml，充足搅拌混匀。7、在无菌操作台里用的除菌滤膜过滤配制好的培养液，并分装到到100ml玻璃瓶中，玻璃瓶口用薄膜封口，盖上橡皮塞，放-20℃保存备用。注意：（1）配制培养液及调节培养液PH值所使用的HCl和（或）NaOH均需新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）配制。

普通于配制当天制备，以确保水的纯度和质量。（2）准备的100ml×10个玻璃瓶必须事先高压灭菌！烧杯、量筒、玻棒、盛新鲜三蒸水（或新鲜反渗

水）的容器均不需高压灭菌，干净即可。

PBS（平衡盐溶液）的配制

NaCl

8g

KCl

＋新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）至1000ml

Na2HPO4*H2O

KH2PO4

（1）

无需调PH值，其成分溶解后PH为，不需除菌滤膜过滤除菌，放于4℃保存，用前直接高压灭菌（高压时，装PBS的瓶子的瓶盖要插针头!）

（2）

Na2HPO4*H2O

则Na2HPO4*12H2O需

（3）

如欲配制500ml，以上成分减半即可

%胰蛋白酶的配制

胰蛋白酶粉

EDTA（乙二胺四乙酸二钠）

NaCl

KCl

`

+新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）至1000ML

NaHCO3

Glucose(葡萄糖)

酚红

（1）配出来的PH值为，在PH值～范畴内，故不需调PH值。（2）用的除菌滤膜过滤分装，瓶口用薄膜封口，放-20℃保存备用。4℃可持续使用1月左右。（3）用于分装的玻璃瓶必须事先高压灭菌！而烧杯、量筒、玻棒、盛新鲜三蒸水（或新鲜反渗水）的容器均不需高压灭菌，干净即可。（4）如欲配制500ml，以上成分减半即可

细胞复苏1、准备：紫外线照台30min，准备好装有高压灭菌好的吸管、试管的饭盒、废液缸；培养基临用前放水浴箱里温育20分钟。在操作台上摆放好物品，左边为饭盒、培养液等，中间为酒精灯、试管架等，右边放滴管架、镊子，右上角放废液缸。2、灼烧培养瓶口及瓶盖，用滴管取培养基5ml加入试管中（一滴约为50ul）。3、戴手套，从-196℃液氮罐中取出冻存管，立刻放入37℃水浴箱中快速解冻，同时不停轻轻摇动冻存管，确保冻存管内细胞1min内融化。以70%酒精擦拭保存管外部，移入无菌操作台内。（慢冻快融）4、用吸细胞液的滴管从冻存管中完全吸出细胞悬液，加入到已装有培养基的试管中，塞子塞试管，800rpm离心2min（用培养基且离心的目的:去除细胞冷冻保护剂DMSO，因常温下其对细胞毒性大），弃上清，试管底部的白色物质为细胞，轻弹混匀。往试管中加培养基、FBS（胎牛血清）各80滴和20滴（使FBS浓度为20％）。用吸细胞液的滴管轻轻吹打，使细胞混匀，以免在培养瓶里成团，影响细胞生长。5、将试管中的细胞悬液用吸细胞液的滴管全部吸出，加到培养瓶中，标记日期、细胞名称，再把培养瓶放入CO2培养箱。（注意：加入到培养瓶后，培养瓶轻轻平放，用手拿培养瓶侧壁，左右上下轻轻摇晃几次，使细胞均匀贴壁在培养瓶底。）6、收拾所用物品、用75%酒精喷洒操作台，擦台，保持台面整洁。

注意：（1）入细胞室前观察CO2%压力，左右，减压器表压力不低于！（2）刚复苏的细胞需要的营养成分更多些，让FBS浓度达成20％。（3）离心时间为1～2min，速度为800转，不要离心太久，避免对细胞伤害较大。（4）滴管使用注意事项：

a.吸细胞液专用一种滴管，各株细胞的滴管一定要严格分开，不能混用，避免细胞间污染。

b.培养基和FBS（胎牛血清）能够用一种滴管，但分开用更加好！

c.

FBS（胎牛血清）不能和胰酶用一根滴管,由于血清对胰酶活性有克制作用。

d．胰酶和PBS（平衡盐溶液）能够用一根滴管，但是最佳分开（5）不是全部的细胞复苏后都能活。死亡因素：冻存时间太长（如2年以上），技术但是关（如吹打太激烈）、细胞传代数太多等。（6）有关PBS（平衡盐溶液）:

a.PBS溶液配好后要高压灭菌后才干用；PBS高压时其瓶塞一定要插针头。

b.PBS和培养基都能够冲洗培养瓶里细胞中的杂质，但需用温过的PBS冲洗细胞中的杂质。PBS即使冲洗杂质效果较好，但它有使细胞易脱壁的倾向，故不可经常冲洗细胞。

c．不温的PBS用来做难消化细胞消化前冲洗一遍的准备，使细胞加入胰酶后易消化。

d．消化后临时不养细胞的培养瓶，能够往其中加入2～3mlPBS（避免培养瓶干燥），培养瓶放CO2培养箱里短时间保存。下次用该培养瓶再养同种细胞时，把PBS吸出弃去，再用培养基冲洗一遍即可再用。（7）DMSO（二甲基亚砜）在常温下对细胞毒性较大，而在4℃时，其毒性大大削弱，故冻存的细胞复苏后应及时洗涤冷冻保护剂DMSO（离心后弃去上清），避免DMSO在常温下对细胞产生较大毒性！

细胞换液1、倒置显微镜下观察细胞生长状态：a.移动细胞培养瓶时，观察到呈漂浮状态的细胞为死细胞；b.生长状态良好的细胞：透明度大、折光性强、轮廓不清；能看清部分细胞细微构造，细胞处在对数生长久时能够见到诸多分裂期细胞。c.生长状态不良的细胞:

细胞折光性变弱，轮廓增强，胞质中常出现空泡、脂滴、颗粒样物质，细胞间空隙加大，细胞变得不规则，失去原有特点。d.只有生长状态良好的细胞才适合进一步传代和实验。2、紫外线照台30min，准备好吸管、试管饭盒，温育培养基，FBS（胎牛血清）可不温。实验开始时打开照明灯和抽风机，用75%酒精喷双手。酒精灯点燃放中间。滴管放滴管架上，从左到右次序为：吸细胞液的滴管、吸培养基的滴管、吸FBS（胎牛血清）的滴管。从水浴箱中取出培养基，擦干水放入操作台的左边。3、从CO2培养箱中取出细胞培养瓶，在酒精灯外焰上旋转灼烧其瓶口、盖子处（注意不要把胶盖烧焦），滴管（前端90%部位）灼烧。细胞培养瓶倾斜，用吸细胞液的滴管吸出旧液弃到废液碗中，尽量吸干净。注意：滴管的胶头应在瓶外压紧再伸进培养瓶内，避免产愤怒泡，且不要伸入瓶内太多，避免造成污染；滴管尖端悬空弃液，不要触到废液碗（要亲眼看到弃液，避免滴管尖端触到废液碗）！4、用吸培养基的滴管吸取培养基90滴加入到培养瓶（25c㎡）中，再用吸FBS（胎牛血清）的滴管吸取FBS10滴加入到培养瓶中。（使FBS浓度为10％）5、旋紧细胞培养瓶盖后，再旋回半圈，以利于空气流通。平放回CO2培养箱中。6、收拾所用物品、用75%酒精喷洒操作台，擦台，保持台面整洁。

注意:（1）在打开培养基、FBS（胎牛血清）、培养瓶前后均需旋转灼烧其瓶口和瓶盖，严格注意无菌操作。灭菌饭盒只能在无菌操作台里打开。（2）镊子每次使用前均需灼烧。装FBS的瓶子瓶盖小，用镊子夹住盖子灼烧后，再用其夹住瓶盖盖上；取其瓶盖时也是用镊子夹住瓶盖取下盖子。（3）滴管在第一次使用前也需灼烧。注意：除吸取细胞液的滴管外，其它滴管滴加液体时都要悬空滴加。已吸过液体的滴管在再次使用前决不能再灼烧！滴管千万不能混用！（4）培养瓶口不要对着自己，不加试剂时要平放。（5）培养液以没过细胞为宜。（6）细胞液颜色变黄，死细胞多时换液。不规定每天换液，容易增加污染机会。

细胞计数1、原理：（1）计算细胞数目用血球计数盘计数。（2）血球计数盘普通有二个chambers，每个chamber中细刻9个1mm2大正方形，其中4个角落之正方形再细刻16个小格，深度均为。当chamber上方盖上盖玻片后，每个大正方形之体积为1mm2×=。使用时，计数每个大正方形内之细胞数目，乘以稀释倍数，再乘以104，即为每ml中之细胞数目。

细胞数/ml＝4大格细胞总数/4×104注意：镜下偶见由两个以上细胞构成的细胞团，应按单个细胞计算，若细胞团占10%以上，阐明分散不好，需重新制备细胞悬液。2、计数办法：(1)75%酒精棉签清洁盖玻片及计数板，再用干纱布或棉签再擦一遍，放好盖玻片。(2)

用滴管从已经吹打混匀的细胞悬液中取一滴滴在计数板周边，再用加样枪吹打混匀该滴液体，从中吸取13ul至盖玻片边沿（注意不要溢出，不要有气泡）。(3)

观察计数：压线的记左不记右，记上不记下；成团的细胞只记为1个；先用低倍镜（红色，4×）找出大位置，再用中倍镜（黄色，10×）进行计数。细胞数/ml＝4大格细胞总数/4×104(4)

计数完毕用75%酒精棉签擦盖玻片及计数板，再用干纱布（或干棉签）擦一遍。

细胞传代1、紫外线照台30min，准备好细胞培养所需物品。2、取灭菌试管1支，配完全培养基（含10%FBS）3ml（培养基:FBS=54滴：6滴）。3、用吸细胞液的滴管吸弃旧液。4、胰酶消化：加入约1ml（20滴）胰酶到培养瓶里消化。胰酶铺平培养瓶底为佳。倒置显微镜下观察培养瓶内细胞，一旦发现大量细胞胞质回缩，细胞间隙增大，但未脱离培养瓶底，立刻用吸细胞液的滴管吸出胰酶弃去，把细胞培养瓶放入CO2培养箱让残存的胰酶继续消化，（在37℃胰酶消化效果最佳）。5、每1min把培养瓶拿到倒置显微镜下观察，当观察到细胞变圆，透亮，细胞间隙明显增大时,用吸细胞液的滴管从试管中吸取事先配好的完全培养基3ml加入到培养瓶中终止消化。6、用吸细胞液的滴管轻柔吹打，确保培养瓶底的每个角落都吹打到，斜坡处不能无视（能够把滴管卡在瓶口处吹打斜坡处。吹打时尽量避免产愤怒泡，因其对细胞有伤害；需轻柔吹打，用力吹打对细胞也有伤害。新学者可固定每个角落涉及斜坡处吹打5次，靠近瓶口端处的角落也要吹到），把培养瓶中全部细胞悬液用吸细胞液的滴管移入试管中，再用滴管吹打混匀细胞悬液。7、取一滴细胞悬液进行计数（此环节是为了积累培养细胞的经验，观察多少密度的细胞具体几天能够长满,待有经验后此环节能够省略。如需进一步进行铺板则一定要计数！）8、传代：不同细胞根据细胞数量、生长快慢、难易等，普通按照1：5比例进行传代。先用滴管吹打混匀3ml（60滴）细胞悬液，取12滴细胞悬液到培养瓶中，补足完全培养基（培养基:FBS=9:1）使液体总体积达成4ml，平放到CO2培养箱中继续培养。9、收拾所用物品、用75%酒精喷洒操作台，擦台，保持台面整洁。

注意：（1）对于难消化的细胞（如Bxpc-3胰腺癌细胞）在用胰酶消化前，先用1～2ml（即20～40滴，或1～2滴管）4

℃PBS冲洗一遍，较易消化的细胞不需要此环节。（2）一定要避免细胞过消化！因过消化，使细胞成团，不均匀，且对细胞伤害很大，影响细胞贴壁和造成生长状态差等。*

过消化特性：a.在没有加入完全培养基终止消化前就有成团细胞从培养瓶壁上脱落，胰酶里出现诸多悬浮物，为掉下来的细胞。b.培养瓶底板上本身为白茫茫（细胞贴壁生长），而过消化后细胞脱壁掉下来，则可见培养瓶底板有一片片空隙。（3）过消化的解决：不吸出胰酶，立刻加入3ml完全培养基终止消化后一并收集入试管中，通过800rpm

离心3min，弃去上清（失活的胰酶、培养基、FBS）。细胞沉淀（白色沉淀物）在试管底，用手指轻弹打散细胞，重新加入适量完全培养基，混匀后放入培养瓶中继续培养。（4）在加入未经37℃温育的胰酶（指仅为室温）消化细胞时，即使细胞已经变圆，且透亮，用完全培养基终止消化后仍很难吹打下来。那是由于胰酶的温度不适宜；而应当把残留有胰酶作用的培养瓶放到CO2培养箱中，放置5min,让胰酶在其最佳温度(37℃)下消化细胞。（5）把试管中细胞悬液转移到培养瓶中时，每次滴管在试管中取液时都要轻柔吹打液体，以避免细胞成团不均，影响在培养瓶中生长。（6）用力吹打和气泡产生对细胞都有伤害，故应轻柔吹打并尽量减少气泡产生。（7）吹打结束使细胞尽量分离成单个细胞为宜。（8）完全培养基为含有10％FBS（胎牛血清）的培养液（基）。（9）小牛血清使用范畴：5～20%，10%最惯用。血清可控制细胞生长速度，若想减慢细胞生长速度可减少血清浓度，反之亦然。对于刚复苏的细胞需要的营养成分更多些，则血清用20%。（10）普通25c㎡培养瓶需培养液5ml，普通需90滴培养基+10滴胎牛血清（FBS），一滴液体体积为50ul,即20滴为1ml。（11）普通细胞生长铺至瓶底约80%，则可传代或用来做实验，否则细胞进入生长平台期进而缺少营养而状态老化，不易用于后续实验。

细胞铺板（如12孔板）1、紫外线照台30min，准备好细胞培养所需物品。2、在灭菌试管1中配完全培养基3ml（培养基:FBS=54滴：6滴）3、消化同前，注意避免过消化。吹打混匀计数，如为：×10

5个/ml4、稀释细胞悬液：根据经验，细胞密度×10

5个/ml较合理，因每孔需加培养液1ml，共需12ml,分2次，每次6ml（因试管体积有限，6ml即120滴），则配制细胞悬液：

×10

5个/ml×xml=×10

5个/ml×6ml，x=

即

细胞原液：

×20滴/ml=12滴完全培养基：

=

（×20滴=108滴）97滴培养基+11滴FBS故取12滴细胞悬液、108滴完全培养液加入试管中。用吸细胞液的滴管吹打混匀细胞悬液。5、在超净工作台里打开细胞板，铺板，注意无菌操作。每孔1ml(20滴)，分4次滴加，每次5滴，按次序依次滴入。注意：每次从试管中吸细胞悬液时都应吹打以使细胞均匀！6、继续稀释细胞悬液6ml，操作同前。7、加完之后，小心平稳地将培养板放入培养箱内，静置5min后，在显微镜下观察细胞与否铺均匀，如不均匀，将影响后续实验，则需在细胞板内吹打混匀细胞：因孔内细胞悬液1ml，采用700ul枪吹打（不能用滴管，会刮花底面），能够轻轻抵着底面往各个方向吹打。注意：小心吹打，最佳不要起气泡，否则会造成细胞不均，且影响观察。吹打后放倒置显微镜下观察，若不够均匀，继续吹打。将细胞板拿出操作台时需盖板盖，避免污染。8、吹打完毕后，小心将细胞板放CO2培养箱培养。（注意：拿细胞板避免晃动，最佳直拿直放，不要推动移动，否则细胞容易成团。）9、清洁操作台面，用75%酒精喷洒操作台，擦台。

注意：（1）若铺96孔板，则需在96孔板周边一圈孔中加入PBS，避免干燥。

（2）多个不同规格板的铺板细胞数量：

板型细胞密度（孔）体积/孔需细胞数吹打加样枪头6孔板

～×10

5个/ml

2ml

4×10

41ml12孔板～×10

5个/ml1ml

6～8×10

4700ul24孔板～×10

5个/ml4～5×10

4300ul96孔板

×10

5个/ml

1×10

4

50ul

细胞冻存1、冷冻前一日前更换半量或全量培养基，观察细胞生长情形。欲冷冻保存之细胞应在生长良好（logphase）且存活率高之状态，约为80–90％致密度。2、依细胞传代培养之操作，收集培养之细胞于试管中，取少量细胞悬浮液，计数细胞浓度，普通冻存细胞浓度约1～5×106

cells/ml，依细胞种类而异。3、用试管塞塞住试管，配平，800rpm

离心3mi