RT-PCR详细图文解析

一、实时荧光定量PCR原理〔一〕定义：在PCR反响体系中参加荧光基团，利用荧光信号累积实时监测整个PCR进程，最后通过标准曲线对未知模板进展定量分析的方法。〔二〕实时原理1、常规PCR技术：对PCR扩增反响的终点产物进展定量和定性分析无法对起始模板准确定量，无法对扩增反响实时检测。2、实时定量PCR技术：利用荧光信号的变化实时检测PCR扩增反响中每一个循环扩增产物量的变化，通过Ct值和标准曲线的分析对起始模板进展定量分析3、如何对起始模板定量？通过Ct值和标准曲线对起始模板进展定量分析.4、几个概念：〔1〕扩增曲线：〔2〕荧光阈值：〔3〕Ct值：CT值的重现性：5、定量原理：理想的PCR反响：*=*0*2n非理想的PCR反响：*=*0(1+E*)nn：扩增反响的循环次数*：第n次循环后的产物量*0：初始模板量E*：扩增效率5、标准曲线6、绝对定量1〕确定未知样品的C(t)值2〕通过标准曲线由未知样品的C(t)值推算出其初始量7、DNA的荧光标记：二、实时荧光定量PCR的几种方法介绍方法一：SYBRGreen法〔一〕工作原理1、SYBRGreen能结合到双链DNA的小沟部位2、SYBRGreen只有和双链DNA结合后才发荧光3、变性时，DNA双链分开，无荧光4、复性和延伸时，形成双链DNA，SYBRGreen发荧光，在此阶段采集荧光信号。PCR反响体系的建立及优化:1、SYBRGreen使用浓度:太高抑制Taq酶活性，太低，荧光信号太弱，不易检测2、Primer：引物的特异性高，否则扩增有杂带，定量不准3、MgCl2的浓度:可以降低到1.5mM,以减少非特异性产物4、反响Buffer体系的优化5、反响温度和时间参数:由酶和引物决定6、其他与常规PCR一样〔二〕应用围1、起始模板的测定；2、基因型的分析；3、融解曲线分析：可以优化PCR反响的条件，对常规PCR有指导意义，如对primer的评价；可以区分单一引物、引物二聚体、变异产物、多种产物。〔三〕优点及缺点优点：对DNA模板没有选择性；适用于任何DNA；使用方便；不必设计复杂探针；非常灵敏；廉价。缺点：容易与非特异性双链DNA结合，产生假阳性；但可以通过融解曲线的分析，优化反响条件；对引物特异性要求较高。方法二：TaqMan---水解型杂交探针**5′端标记有报告基团(Reporter,R)，如FAM、VIC等**3′端标记有荧光淬灭基团(Quencher,Q)

**探针完整，R所发射的荧光能量被Q基团吸收，无荧光，R与Q分开，发荧光**Taq酶有5′→3′外切核酸酶活性，可水解探针〔一〕工作原理注意：每扩增一条DNA分子，释放一个荧光信号，可以在循环过程中任一点检测荧光PCR反响的建立：1、引物、探针的设计：探针Tm为68-70℃，<30bp,5’不能有G，G可能会淬灭荧光素，引物尽量靠近探针，扩增片段<400bp，引物Tm为59-60℃2、反响参数确实定：一般为：94℃，10-20S

60℃，30-60S〔Taq酶5′→3′外切核酸酶活性在60℃最高〕也可通过温度梯度优化退火温度72℃，45S，3、优化引物和探针浓度：获得最小Ct值，信号/背景比值的最大值引物浓度：50-900nM

探针浓度：50-250nM4、其他与常规PCR一样〔二〕优缺点优点：对目标序列的高特异性------阴性结果确定设