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文档简介

中间层（目的蛋白中间层（目的蛋白的液体可分3上层（絮状物，油脂、核酸A液=200㎕*（8+样品数*2*3+1）“3”指的是10X、50X、100X三个稀释倍数，如果只有1个96“3”指的是10X、50X、100X三个稀释倍数，如果只有1个96孔板第一列为蛋白标准品一共8个

多配1个孔的液体，“1④37℃恒温箱放置30min，类型”选“未知”，点“未知样点击“操作点击“运行”点击“自定义区域”选择所有加样点“光度测量”，改波长为562”，类型”选“未知”，点“未知样点击“操作点击“运行”点击“自定义区域”选择所有加样点“光度测量”，改波长为562”所以原样本的浓度为51700μg/ml，换算单位为μg/㎕所以原样本的浓度为51700μg/ml，换算单位为μg/㎕凝胶百分百凝胶百分百8后再倒入槽中（尽量把也倒入，里面含有上样（小枪头）上样前准备好最大量程为2㎕、10㎕、㎕的移液枪。蛋白标准品（Marker）和5Xbuffer，蛋白样2㎕1212121212121212预电泳：70V，30min 染了两片蓝色保护纸中间的膜。将膜放在甲醇溶液中，泡④做转膜三明治，顺序是：7层与膜等大的滤纸（用电转液浸湿）→（大分子量在上在上放到转膜托盘中→盘上多余的电转液→”” 2个，海绵4块）、甲醇、滤纸、NC膜或PVDF膜（前者便宜，1×transBuffer（10×transBuffer80ml+甲醇160ml+dH2O剪8用镊子将做好标记的膜浸泡在1×transBuffer中（PVDF膜需要先用甲醇浸泡 放在盛有1×transBuffer的托盘中，黑色朝下（负极），放上 海绵→4层滤纸→胶→PVDF膜→4层滤纸→海绵；依次放入后边浇水边用离心管赶走气泡，夹好转膜夹，放入转膜槽（注意 朝上，黑对黑），倒入1×transBuffer，时间由蛋白大小决定，需要摸索条件（一般95KD以②4℃冰箱中取出显影液，A、B各取“AVFluorChemQ”点击左上角“Acquire“AVFluorChemQ”点击左上角“Acquire吸取少量混合好的显影液加在显影点击红色的“Acquire将膜放置

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