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文档简介

单克隆抗体药物不稳定性因素和改善措施,生物制药论文摘要:单克隆抗体药物是生物药物的重要分支,因其靶向性、特异性高而遭到广泛关注。随着单克隆抗体技术的不断发展,抗体药物在疾病预防、诊断和治疗方面发挥着举足轻重的作用。但是,抗体药物作为一种人工合成蛋白质的天然属性,其在生产、储存及体内使用经过中,容易遭到体内外复杂环境的物理和化学方面的影响,发生多种形式的理化性质改变,进而导致其免疫原性增加,半衰期缩短,甚至失效。因而怎样提升抗体药物的稳定性,降低免疫原性,延长半衰期,提高其体内生物利用度是当前抗体药物应用中亟待解决的关键问题。本文从影响抗体稳定性的因素〔构造、环境及制备工艺〕、理化机制以及提高抗体稳定性的方式方法等几个方面,对最近文献报道的相关研究进行扼要的综述。本文关键词语:单克隆抗体;理化因素;稳定性提高;生物制药;Abstract:Monoclonalantibody(mAb)drugshaveattractedwidespreadattentionfortheirhightargetingandspecificityasanimportantbranchofbiopharmaceutics.WiththerapiddevelopmentofmAbdrugs,theyplayanirreplaceableroleindiseaseprevention,diagnosisandtreatment.Whileasakindoflargesyntheticmolecule,duetoitsnaturalattribute,themAbiseasytobeaffectedinstabilitybythephysicochemicalfactorsinvitroandvivoduringmanufacturing,storageandapplication.VariousformsofphysicalandchemicalpropertieschangeofmAbwillleadtoincreasedimmunogenicity,shortenedhalf-life,andevenfailure.Therefore,howtoimprovethestability,reduceimmunogenicity,extendhalf-life,andthenincreasebioavailabilityisakeyissuethatneedstobeurgentlysolvedintheapplicationofantibodydrugs.Thisarticlereviewthelatestresearchaboutthefactorsincludingproteinstructure,environmentalstress,manufacturingtechniquethataffecttheantibodystability.Besides,themechanismandthemethodsofoptimizationarealsoreferred.Keyword:Monoclonalantibody;Physicochemicalfactors;Stabilityimprovement;Biopharmaceutical;在过去的30年里,单克隆抗体〔monoclonalanti?body,mAb〕的研发和优化技术已经获得了长足的发展,现前阶段治疗性单克隆抗体药物已经广泛应用于本身免疫病、肿瘤以及病毒感染等疾病的临床治疗或预防,且已成为生物制品类药物中发展最快的一类。学者们在长期研究中除了重点关注抗体构造的优化,还针对抗体稳定性的各种影响因素提供了众多解决方案,以此降低抗体药物的开发、储存成本,并提高其临床疗效[1,2,3]。本文扼要回首了近些年单克隆抗体稳定性的影响因素和理化机制以及抗体稳定性改造方案等方面的研究进展。1、抗体分子构造及稳定性研究意义1.1、抗体分子构造抗体是指由机体产生能与抗原特异性结合的免疫球蛋白。抗体由B淋巴细胞转化而来的浆细胞分泌产生,每个B淋巴细胞株只能产生一种它专有的、针对一种特异性抗原决定簇的抗体。这种从一株单一细胞系产生的抗体就叫单克隆抗体〔mAb〕,简称单抗。常规的单抗分子是由两条重链〔HC〕及两条轻链〔LC〕通过链间二硫键连接成“Y〞形构造〔图1〕,它又可分为3个功能组分:两个抗原结合片段〔Fab〕和一个结晶区〔Fc〕,两个Fab通过铰链区连接到Fc,且构象变化相比于Fc更为灵敏。来历自重链和轻链的一对可变区〔VH和VL〕组成Fab的Fv区,通常Fv区被糖基化修饰,是决定抗体怎样与适应性免疫及体液免疫系统中的其他成分互相作用的关键。1.2、稳定性研究意义研究发现,某些单克隆抗体药物固然在体外实验中表现出良好的药物活性,但在进入临床试验阶段却会遭碰到体内活性降低的问题[4]。因而在药物研发的初期就要兼顾其药效动力学的问题。抗体药物的稳定性是影响抗体药效动力学的关键因素之一,首先抗体的高亲和力与高特异性都需要以稳定的构造为基础,这是其正确行使生物学功能的保障。其次,抗体的稳定性越高,则其新生肽链在细胞内装配时产生错误折叠〔mis-folding〕的概率越低,可溶性表示出量也越高[5]。良好的热稳定性所带来的紧凑构造使抗体的蛋白酶切位点更不易暴露,并其影响药品保质期及存放条件,关系到药物成本。当前,提高蛋白质热稳定性的方式方法主要有非共价修饰、化学修饰、添加蛋白质稳定剂、蛋白质工程,以及在液体状态利用矿化技术直接在蛋白外表构成磷酸钙矿化外壳以提高蛋白质的稳定性[6]。由此可见,在保证抗体亲和力及表示出量等性质不受太大影响的情况下,最大程度上提高其稳定性,对抗体药物的研发具有重要的现实意义。图1完好IgG抗体带状图[蛋白构造数据库〔PDB);ID:1igt]Fig.1CompletestructureofIgG[From:ProteinDataBank(PDB);ID:1igt]2、影响抗体稳定性的因素2.1、抗体分子本身性质抗体分子一级构造〔蛋白序列〕对其聚集性有着重要影响,例如当抗体分子的等电点〔pI〕过高或过低时决定簇互补区〔com?plementarity-determiningregion,CDR〕都会促进聚集,不同的是较低pI的分子所产生的分子间静电互相作用构成了可溶的聚集物,而较高pI的分子,尤其是当和带有负电荷的容器外表接触时,则会构成沉淀性聚集[7]。例如有研究比拟了英夫利昔单抗〔infliximab〕及其仿制药在强迫性降解试验〔forceddegradation〕中的表现[8],发现二者尽管在生产工艺和制造经过上有些许不同,但在该试验中并未表现出明显差异,讲明一级构造仍然在很大程度上决定了抗体分子的稳定性。还有研究比拟了IgG分子的3个亚型〔IgG1、IgG2、IgG4〕在分别经过酸性处理〔pH=3.3〕之后的表现,结果IgG1保持了单体形式,而另外两个亚型均表现出二聚化倾向,且当恢复到正常pH时导致IgG4构成聚集体[9]。该结果与pH在4~7范围内IgG亚型聚集性〔IgG1IgG2IgG4〕的强弱比照相印证[10]。KERR等[11]通过高分辨率质谱分析了治疗性抗体高级构造〔HOS〕对曲妥珠单抗、贝伐珠单抗及利妥昔单抗药物储存的影响,发现贝伐珠单抗可变区和恒定区在特定温度下存在肽键水解。2.2、环境应力因素温度:高温能够毁坏单抗构造,且通常不可逆,进而导致聚集;同时伴随温度增高,脱酰胺和氧化反响发生的概率也增加[12]。当环境温度下有50%左右的蛋白天然构造展开时,将该温度定义为熔解温度〔meltingtemperature,Tm〕,每种蛋白都有其Tm,一般该温度范围为40℃~80℃之间,而通常生物药品储存运输的温度在2℃~8℃之间,远低于该温度[13]。除此之外过低温也会引起蛋白变性,尤其是在反复冻融的情况下。随着冻融次数增加,会出现缓冲液pH值下降、溶质分子浓缩、水冰界面构成等因素的影响[14]。当0.5mg/ml贝伐珠单抗〔bevacizumab〕溶液经受1~30次冻融循环时,其单体峰通过〔sizeexclusionchromatography,SEC〕分析,发现随着循环次数的增加而降低。在类似的研究中,对于固定数量的循环冻融〔10个循环〕,单体峰值随着贝伐珠单抗浓度的增加而降低,这表示清楚在较高浓度下冻融循环的稳定性有所提高[15]。光照:蛋白质的芳香族残基〔以色氨酸残基为主〕对光照非常敏感,易发生光氧化构成氧化自由基,随后发生断裂和交联,尤其是紫外光相较于白光影响更大[16]。有研究证实光照对蛋白质二级和三级构造的影响取决于其存在形式,通常冻干粉比液体制剂更能耐受光照。LUIS等[17]通过采用ICHQ1B(InternationalCouncilforHarmonisation,ICHQ1Bconditions〕推荐值〔132万勒克斯小时〕和环境光照强度〔24万勒克斯小时〕评估了两种单克隆抗体的光稳定性,结果显示出宏大的差异,表示清楚单抗药物的光稳定性取决于总的曝光量而不是光强度。SHAH等[18]发现了在ICH光照条件下固然总体上未观察到明显的抗体构造变化,但CH2构造域仍然存在降解。蛋白质药物主要的光暴露发生在储存运输和给静脉输液患者用药期间,因而在药品应用阶段躲避这一因素的影响就显得尤为重要。机械应力:在单抗药物生产使用经过中还会遭到机械应力〔如搅拌或剪切力〕的影响。研究证实由于疏水性基团〔主要是巯基〕暴露,在该经过中构成了大量规格在1.5~80μm不等的聚集体,且聚集水平与气-液界面积呈指数关系[19]。药物制剂在通过输液管或注射器时会产生剪切力作用,已有研究报道了高浓度单抗溶液的剪切稀化现象〔剪切力下黏度的降低〕,这可能与本身聚集的单抗分子解离有关,但当前尚不清楚过滤经过中的剪切力能否会引起其他改变[20]。2.3、存储方式因素浓度:高浓度下的单抗制剂由于黏度增加,分子间互相作用加强也会促进聚集[21]。HAUPTMANN等[22]发现高浓度仅仅会增加制剂中小颗粒的数量,而分子量大的聚集物反而减少了;NICOUD等[23]则观察到聚集物随浓度增加而增加的现象。有研究指出,固然降低抗体浓度能够使结合性较弱的聚集体解离,但若不同时改变抗体分子与辅料的比例,则会稀释药物制剂中的辅料〔具有保卫性的糖类、外表活性剂或精氨酸〕,影响了溶液本身的pH值和离子强度,导致抗体分子化学稳定性降低[24]。除此之外,蛋白质分子本身具备聚合倾向,是由分子间的电荷互相作用所主导,且受溶液的离子强度影响[25]。包装:除对单抗药物固有属性及构造的优化外,也不能忽略在现有生产条件下包装存储方式的影响。蛋白质作为外表活性分子,有吸附到疏水界面的倾向进而导致产品损失、效力降低和潜在的剂量缺乏[26]。KUMRU等[27]的研究结果表示清楚聚氯乙烯〔PVC〕材质的输液袋〔Ⅳ-bags〕相较于聚烯烃材质对1mg/ml的IgG4溶液吸附效果更明显,且颗粒物和浑浊度明显增加,而在参加聚山梨酯20后两种输液袋中的颗粒数降低至接近阴性对照。3、影响抗体不稳定性的机制造成抗体不稳定性的因素大致划分为化学不稳定性因素和物理不稳定性因素。它们各自对抗体性质产生影响,且相互互相作用:相关化学反响可导致物理不稳定性[13],物理不稳定性又可使某些活泼踊跃的化学基团产生变化,或将有可能互相作用的基团间距离拉近[28]。3.1、化学不稳定性的作用机制氧化作用:化学降解不仅不利于抗体药物的储存,在应用中还会使药物有效性发生损耗。氧化反响〔包括二硫键的构成〕是最常见的引起化学降解的因素,这种氧化能够发生于氧化剂〔例如:光照、过氧化物或者活泼金属〕存在的情况下,可以以自发氧化的形式产生[29]。抗体分子中相当一部分氨基酸基团易被氧化,例如甲硫氨酸、组氨酸和半胱氨酸[29,30]。二硫键的构成即发生在两个半胱氨酸的巯基之间,且类似的氧化不仅可发生在单个分子内部,可以在分子间产生。脱酰胺作用:另一个引起降解的因素便是脱酰胺化,牵涉含天冬酰胺〔Asn〕和谷氨酰胺〔Gln〕残基的位点。脱酰胺化类似于酸碱反响,是在邻近反响位点的质子供体〔通常为丝氨酸或者苏氨酸〕介入下构成环酰亚胺中间物,进而毁坏抗体本身的构造[31]。例如Asn经脱酰胺化往往生成琥珀酰亚胺,之后很快自发水解为天冬氨酸或异天冬氨酸〔Asp〕。水解作用:在抗体分子中另一大化学性质不稳定因素便是二硫键或肽键的断裂[29]。华而不实在单抗药物正常使用经过中“单价抗体〞的构成就是由二硫键断裂导致[29]。而肽键断裂则构成大量性质和大小不一的小分子量片段,且尚不能确定该现象是由酶解导致。同样的,抗体分子中铰链区的水解机制亦不明确,例如在研究木瓜蛋白酶对单抗裂解的经过中参加蛋白酶抑制剂并不能改变抗体分子的断裂,因而揣测可能是由某种非酶解机制导致的该现象。尽管详细机制尚不明确,但抗体分子这一降解途径通常发生在强酸或者高温环境中[30]。辅料作用:除了上述可能由环境影响发生的降解外,糖类作为常用的辅料亦会对抗体分子产生影响。研究发现蛋白质在复原糖作用下可发生糖基化〔glycosylation〕,最终构成酮胺而导致褐变,且从抗体在胞内克隆直至静脉注射,该反响都有可能发生[31,32]。固然如今大多厂商以非复原糖作为辅料,但其仍然能够降解为复原糖进而影响单抗药物构造和功能[32]。化学修饰对于单抗药物性质的影响程度取决于其修饰位点[33]。例如,脱酰胺化在Fc段发生所造成的影响很小,但若发生在CDR上则会降低单抗的亲和力及效价;同样的,氧化反响若是发生在Fc段则不仅会降低结合亲和力,更会增加单抗在人体内的去除率进而降低血药浓度[34]。一些研究表示清楚,化学不稳定性还会导致蛋白构象的改变和分子聚集,例如甲硫氨酸氧化易引起二级构造稳定性改变。3.2、物理不稳定性相关机制蛋白质变性往往意味着高级构造的展开,上述化学不稳定性改变、环境因素〔温度及pH〕等都有可能导致这一结果,并随之降低抗体铰链区的活动性,增加聚集性[29]。聚集性增加是最主要的物理不稳定性改变,聚集体由多个蛋白质分子通过非共价键〔范德华力、氢键、疏水和静电互相作用〕相链接,而不牵涉一级构造和蛋白序列的变化。除此之外还有部分聚集体是通过二硫键等共价键相缔合,称为共价聚集[13]。这两种聚集最终都有可能构成可溶性或不可溶性聚集物。抗体的聚集大多都是不可逆的,尤其是在后期当构成的聚集物是由大量非天然构造的抗体分子组成的时候[35]。有学者提出了抗体聚集物有可能通过两种途径使正在接受单抗类药物治疗的患者产生免疫原性:T细胞依靠途径以及细胞因子激活途径。而且分子量越大的聚集物其免疫原性越强,且糖基化程度、聚集产物来源等亦对其有影响[2,36,37]。最终,免疫原性反响不仅大幅降低了药物的体内疗效,而且易引发Ⅰ型超敏反响。当然,上述现象仅在体外实验及动物模型中观察到,并预测了聚集物在人体内的风险效应,其详细的机制仍然有待探究[38]。4、抗体稳定性评估方式方法生物技术产品稳定性评估通常包括生物活性分析、分子构造和纯度分析〔含降解产物的定量检测〕以及相关参数的监测〔如外观、pH值等〕,综合以上数据来对样品的热稳定性、聚集性和分子间作用力大小做出评估。在对抗体效价和稳定性进行评估的方式方法中,除了最常用的间接ELISA法外,还常应用差示扫描量热仪〔DSC〕测量蛋白质热稳定性,其不仅能够得到熔化温度,还能够得到与熔化有关的焓、熵和自由能[39]。进一步发展而来的差示扫描荧光法〔DSF〕、圆二色〔CD〕光谱法、动态光散射〔DLS〕检测技术都朝着高通量、高精度或者对蛋白质水动力学监测等方向改良[40]。除此之外在蛋白质溶解性预测方面,研究者们相继提出了穿插作用色谱法〔CIC〕、亲和捕获本身互相作用-纳米粒子光谱法〔AC-SINS〕或克隆本身互相作用-生物层干预法〔CSI-BLI〕等技术,获得了一定的进展,这些方式方法评估单克隆抗体在低蛋白浓度下的穿插或本身互相作用的可能性,进而预测单克隆抗体在高浓度下的特性。随着计算机辅助设计在生物大分子开发中的应用,对不确定晶体构造的分子,能够利用大量的建模和仿真软件来预测抗体-抗原复合物的三维构造;可以使用不同的力场进行分子动力学〔molec?ulardynamics,MD〕模拟[41],获得更多有关结合互相作用、稳定性的具体信息,并使非共价键能〔疏水能、静电能、非极性能和结合能〕的计算变得更容易。5、稳定性改造方案5.1、抗体分子构造改造基于抗体分子易受化学修饰位点进行构造改造,一直以来是其稳定性优化的重要方向。华而不实抗体CDR区的去酰胺作用可能导致对抗原结合功能丧失,已有研究逐步说明去酰胺化和化学修饰的机制以及它们的影响。且有研究证实Gln的脱酰胺速率比Asn慢得多,因而,通过将Asn突变为Gln来移除脱酰胺位点或者降低脱酰胺效应的发生概率被视为一种解决方案[42]。研究还发如今一级序列中紧跟在Asn后面的氨基酸类型被以为是脱酰胺倾向的重要决定因素,若采用侧链较大的氨基酸〔通常为缬氨酸和异亮氨酸〕替代能够使得Asn对脱酰胺作用的抵抗力更强[42]。本课题组前期工作中利用计算机分子模建系统发现HER2抗体赫赛汀〔Herceptin)LC-Asn30和HC-Asp102两个脱酰胺和异构化的降解热门,经同性突变为LC-Gln30和HC-Glu102后,抗体稳定性得到明显提高且原有生物学活性没有发生改变[43]。除此之外,抗体特定位点的糖基化修饰,决定其不同效应配体的功能,同时糖基化能够加强单克隆抗体药物的稳定性和溶解性,并能降低单克隆抗体药物的聚集趋势[44]。HIGEL等[44]使用多变量数据分析评估了单克隆抗体糖基化与培养液中氨基酸种类及数量的关系,为今后在细胞培养经过中进行控制糖型的研究提供了新思路。THARMALINGAM等[45]通过一种新型的实时糖基化监测仪器〔微量顺序注射系统与超高效液相色谱相结合〕研究Mn2+浓度对抗体糖基化的影响,实现了通过调节培养基中Mn2+浓度来控制产物糖型构造,为糖基化研究提供了新方式方法。SHA等[46]基于生产工艺的改良,通过代谢分析和数学模型相结合的方式方法进一步控制了重组蛋白的糖基化程度,实现了对产物效应功能的优化。5.2、生产工艺优化有研究指出,过酸或过碱条件下抗体都会发生不同途径的降解[47]。在pH6.8静脉注射用免疫球蛋白〔IGIV〕制剂中,这种由pH导致的不稳定性通过参加麦芽糖稳定剂能够得到改善;而在以CHO细胞系为表示出系统的体系中,HOGIRI等[48]建立以活细胞数、凋亡细胞数、死细胞数、产物量〔mAb〕,培养体积和pH值等6大参数为主体的pH依靠性动力学模型,用数值优化方式方法来估计整个细胞培养时间内的pH值变化规律,进而在生产阶段制定出有效的pH优化策略。外表活性剂通常被添加到单抗药物配方中,以减少疏水区的暴露,或者通过竞争吸附位点进而减少蛋白质互相作用和界面诱导的聚集,华而不实常用的非离子外表活性剂有聚山梨酯20和聚山梨酯80[49]。除此之外,某些氨基酸也常被作为赋形剂用以保卫聚集,常用的精氨酸〔Arg〕能够增加蛋白质的溶解度,并能保卫其免受光照和高温诱导的聚集。TOTH等[50]证实了〔Arg〕氢氯化物能够提升热稳定性,同时减少搅拌诱导的聚集。脯氨酸〔Pro〕作为一种环状氨基酸,被以为通过与芳香残基和暴露的疏水区结合而加强mAb的溶解,进而降低蛋白质-蛋白质的互相作用和溶液黏度,减少其pH值在pI附近时的聚集[51]。而通过对抗体药物成品在储存或包装方式上的改良往往更具经济性。SREEDHARA等[52]研究表示清楚,去除输液袋的顶部空隙能够减少搅拌诱导的聚集体构成;除此之外容器对药物溶液中的辅料〔缓冲液、外表活性剂、防腐剂、其他稳定剂等〕的吸附也会导致它们浓度的降低进而不再知足单抗药物稳定性的要求。迄今为止防止蛋白质与容器外表互相作用的方式方法是对外表进行涂层,即外表钝化。涂层大致可分为两类:单层涂层〔较常用〕和多层涂层〔不太可控〕,较常用的涂层聚合物包括乙二醇或环氧乙烷[53]。除此之外,若使用带极性或中性电荷的聚合物涂层也能够减少蛋白质的吸附[54]6、结束语治疗性单克隆抗体药物是当下生物医药领域的研发热门,且以此为基础开发出的单链抗体〔scFv〕、单域抗体、抗体-药物偶联物〔ADC〕等应用于各器官系统疾病的药物也相继获批上市。怎样在不改变药物靶向性、兼顾疗效和免疫原性的同时提高药物本身稳定性,尽可能延长药物半衰期,保持有效的血药浓度是当下亟待解决的问题。抗体稳定性遭到环境、配方、本身构造及生产操作等多种因素影响,而对抗体稳定性的有效评估是进行个体化改造的前提。稳定性评估不应仅仅根据有无降解产物或稳定性分子的浓度来定义,而应该包含下面3方面:物理稳定性研究的评估应该涵盖聚集体和碎片数目以及单抗构造;化学稳定性研究应关注蛋白降解情况;生物稳定性研究应保证单克隆抗体对靶点的活性与其物理化学稳定性保持一致。深切进入讨论抗体稳定性影响因素及评估方式方法,有助于抗体药物的合理优化以及新药的研发。以下为参考文献[1]MANNINGMC.,CHOUDK,MURPHYBM,etal.Stabilityofproteinpharmaceuticals:Anupdate[J].PharmRes,2018.27(4):544-575.DOI:10.1007/s11095-0090045-6.[2]UCHIYAMAS.Liquidformulationforantibodydrugs[J].BiochimBiophysActa,2020,1844(11):2041-2052.DOI:10.1016/j.bbapap.2020.07.016.[3]WADAR,MATSUIM.KAWASAKIN.InfuenceofN-glycosylationoneffectorfunctionsandthermalstabilityofglycoengineeredlgG1monoclonalantibodywithhomogeneousglycoforms[J].MAbs,2022.11(2):350-372.DOI:10.1080/19420862.2021.1551044.[4]GRAWERW,KNOTTSTAT.Theeffectsoftetherplacementonantibodystabilityonsurfaces[].JChemPhys,2021,146(21):215102.DOI:10.1063/1.4983705.[5]WUSJ,LUOJ,ONEILKT,etal.Structure-basedengineeringofamonoclonalantibodyforimprovedsolubiliy[J.ProteinEngDesSel,2018.23(8)643-651.DOl:10.1093/protein/gzq037.[6]闵娅君,肖云菊。肖江明,等通过矿化提高蛋白疫苗稳定性的研究[J]中国免疫学杂志,2020,36(13):1545-1557.DOl:10.3969/j.issn.1000-484X.2020.13.002.[7]FUKUDAJ,IWURAT,YANAGIHARAS,etal.Factorstogovernsolubleandinsolubleaggregate-formationinmonoclonalantibodies[J].AnalSci,2021,31(12):1233-1240.DOl:10.2116/analsci.31.1233.[8]PISUPATIK,BENETA.TIANY,etal.Biosimilarityunderstress:AforceddegradationstudyofRemicade@andRemsima“[J].MAbs.2021,9(7):1197-1209.D0l:10.1080/19420862.2021.1347741.[9]SKAMRIST,TIANX.THOROLFSSONM.etal.MonoclonalAntibodiesfllwdistinctaggregationpathwaysduringproductionrelevantacidicincubationandneutralization[J].PharmRes,2021,33(3):716-728.DOI:10.1007/s11095-015-1821-0.[10]WENJ,BATABYALD,KNUTSONN,etal.AComparisonbetweenemergingandcurrentbiophysicalmethodsfortheassessmentofhigher-orderstructureofbiopharmaceuticals[J].JPharmSci,2020,109(1):247-253.DOl:10.1016/j.xphs.2022.10.026.[11]KERRRA,KEIREDA,YEH.Theimpactofstandardacceleratedstabilityconditionsonantibodyhigherorderstructureasassessedbymassspectrometry[J].MAbs,2022,11(5):930-941.DOl:10.1080/19420862.2022.1599632.[12]KHODABANDEHLOOA.CHENDD.Particlesizingmethodsforthedetectionofproteinaggregatesinbiopharmaceuticals[J]Bioanalysis,2021,9(3):313-326.DOl:10.4155/bio-2021-0269.[13]MAHLERHC,FRIESSW,GRAUSCHOPFU,etal.Proteinaggregation:Pathways,inductionfactorsandanalysis[J].JPharmSci,2018,98(9):2909-2934.DOl:10.1002/ips.2156[14]FALCONERRJ.Advancesinliquidformulationsofparenteraltherapeuticproteins[J]BiotechnolAdv,2022,37():107412.D0l:10.1016/j.biotechadv.2022.06.011.[15]HAGEMANT,WEIH,KUEHNEP,etal.Impactoftryptophanoxidationincomplementarity-determiningregionsoftwomonoclonalantibodiesonstructurefunctioncharacterizedbyhydrogen-deuteriumexchangemassspectrometryandsurfaceplasmonresonance[J].PharmRes,2021,36(1):24.DOl:10.1007/s11095-018-2545-8.[16]LEIM,QUANC,WANGYJ,etal.Light-inducedcovalentbufferadductstohitidineinamodelprotein[J].PharmRes.2021,35(3):67.DOl:10.1007/s11095-017-2339-4.[17]LUISLM.HUY,ZAMIRIC.etal.Determinationoftheacceptableambientlightexposureduringdrugproductmanufacturingforlong-termstabilityofmonoclonalantibodies[J].PDAJPharmSciTechnol,2021,72(4):393-403.DOl:10.5731/pdajpst.2021.008581.[18]SHAHDD.ZHANGJ,MAITYH,etal.Effectofphoto-degradationonthestructurestabilityaggregation,andfunctionofanlgG1monoclonalantibody[J].IntJPharm,2021.547(1-2):438-449.DOl:10.1016/j.ipharm.2021.06.007.[19]DOBSONJ,KUMARA,WILLSLF,etal.Inducingproteinaggregationbyextensionalflow[J].ProcNatlAcadSciUSA,2021.114(18):4673-4678.DOl:10.1073/pnas.1702724114.[20]ALLMENDINGERA,MUELLERR,HUWYLERJ,etal.Sterileflrationofhighlyconcentratedproteinformulations:lmpactofproteinconcentration,formulationcomposition,andfiltermaterial[J].JPharmSci,2021,104(10);3319-3329.DOl:10.1002/jps.24561.[21]SCHERMEYERMT.WOLLAK,KOKKEB,etal.Characterizationofhighlyconcentratedantibodysolution-Atolboxforthedescriptionofproteinlong-termsolutionstability[J].MAbs,2021,9(7):1169-1185.DOI:10.1080/19420862.2021.1338222.[2]HAUPTMANNA,PODGORSEKK,KUZMAND,etal.Impactofbuffer,proteinconcentrationandsucroseadditinontheaggregationandparticleformationduringfreezingandthawing[J].PharmRes,2021,35(5):101.DOl:10.1007/s11095-018-2378-5.[23]NICOUDL,JAGIELSKIJ,PFISTERD,etal.Kineticsofmonoclonalantibodyaggregationfromdilutetowardconcentratedconditions[J].JPhysChemB,2021,120(13):3267-3280.D0l:10.1021/acs.jpcb.5b11791.[24]BLAFFERTJ,HAERIHH,BLECHM,etal.Spectroscopicmethodsforassessingthemolecularoriginsofmacroscopicsolutionpropertiesofhighlyconcentratedliquidproteinsolutions[J].AnalBiochem,2021,561-562:70-88.DOl:10.1016/j.ab.2021.09.013.[25]KALONIAC,TOPRANIV,TOTHR,etal.Effectsofproteinconformation,apparentsolubility,andprotein-proteininteractionsontheratesandmechanismsofaggregationforanIgG1monoclonalAntibody[J].JPhysChemB,2021,120(29):7062-7075.DOl:10.1021/acs.jpcb.6b03878.[26]RICCIMS,FRAZIERM,MOOREJ,etal.In-usephysicochemicalandmicrobiologicalstabilityofbiologicalparenteralproducts[J].AmJHealthSystPharm,2021,72(5):396-407.DOl:10.2146/ajhp140098.[27]KUMRU0S,LIUJ,J1JA.etal.Compatibilityphysicalstability,andcharacterizationofanlgG4monoclonalantibodyafterdilutinintodiferentintravenousadministrationbags[J].JPharmSci,2020,101(10):3636-3650.DOl:10.1002/ps23224.[28]KANTRVANDER,KAROW-ZWICKAR,DURMEJVAN,etal.Predictionandreductionoftheaggregationofmonoclonalantibodies[J].JMolBiol,2021,429(8):1244-1261.D0l:10.1016/j.jmb.2021.03.014.[29]FINKLERC,KRUMMENL.IntroductiontotheapplicationofQbDprinciplesforthedevelopmentofmonoclonalantibodies[J].Biologicals.2021.44(5)-:282-290.DOl:10.1016/j.biologicals.2021.07.004.[30]MELSHEIMERR,CALMANNM,DERITISA.etal.Ensuringproductquality,consistencyandpatientsupplyovertimeforalarge-volumebiologicExperiencewithremicadel(R))[J].BioDrugs,2021,32(5):405414.DOI:10.1007/s40259-018-0300-7.[31]TOKHADZEN,CHENNELLP,LEBASLEY,etal.Stabilityofinfliximabsolutionsindifferenttemperatureanddilutionconditions[J].JPharmBiomedAnal,2021,150:386-395.D0l:10.1016/j.jpba.2021.12.012.[32]LEBLANCY,BIHOREAUN,JUBEM,etal.GlycationofpolyclonallgGs:Effectofsugarexcipientsduringstabilitystudies[J].EurJPharmBiopharm,2021,102:185-190.DOl:10.1016/j.ejpb.2021.03.016.[33]DUY,WALSHA.EHRICKR,etal.Chromatographicanalysisoftheacidicandbasicspeciesofrecombinantmonoclonalantibodies[J].MAbs,2020,4(5):578-585.DOl:10.4161/mabs.21328.[34]YANGR,JAINT,LYNAUGHH,etal.Rapidassessmentofoxidationviamiddle-downLCMScorrelateswithmethionineside-chainsolvent-accessiblesurfaceareafor121clinicalstagemonoclonalantibodies[J].MAbs,2021,9(4):646-653.DOl:10.1080/19420862.2021.1290753.[35]SVILENOVH.WINTERG.TheReFOLDassayforproteinformulationstudiesandpredictionofproteinaggregationduringlong-termstorage[J].EurJPharmBiopharm,2022,137:131-139.DOl:10.1016/j.ejpb.2022.02.018.[36]PANTUSOE,MASTROPIETROTF,BRIUGLIAML,etal.Ontheaggregationandnucleationmechanismofthemonoclonalantibodyanti-CD20nearliquid-liquidphaseseparation(LLPS)[J].SciRep,2020,10(1):8902.DOl:10.1038/s41598-020-65776-6.[37]KURIAKOSEA.CHIRMULEN,NAIRP.Immunogenicityofbiotherapeutics:Causesandassociationwithposttranslationalmodifications[J].JImmunolRes,2021,2021:1298473.DOl:10.1155/2021/1298473.[38]KRAUST,WINTERG.ENGERTJ.Testmodelsfortheevaluationofimmunogenicityofproteinaggregates[J].IntJPharm,2022,559:192-200.DOl:10.1016/j.ipharm.2022.01.015.[39]邵敏,王新颖,卢毓璁,等抗人蔗糖酶卵黄抗体的制备及其稳定性和体外活性研究[J]中国免疫学杂志,2021,32(12):1785-1789.DOl:10.3969.jissn.1000-484X.2021.12.013.[40]LIUWW,ZHUY,FANGQ.Femtomole.scalehigh-throughputscreeningofproteinligandswithdroplet-basedthermalshiftassay[J].AnalChem,2021,89(12):6678-6685.DOl:10.1021/acs.analchem.7b00899.[41]SALMASOV,MOROS.Bridgingmoleculardockingtomoleculardynamicsinexploringligand-proteinrecognitionprocess:Anoverview[J].FrontPharmacol,2021,9:923.DOl:10.3389/fphar.2021.00923.[42]VERMAA,BURNSDL.Improvingthestabilityofrecombinantanthraxprotectiveantigenvaccine[J].Vaccine,2021,36(43):6379-6382.DOl:10.1016/j.vaccine.2021.09.012.[43]YANGY,ZHAOJ,GENGS,etal.Improvingtrastuzumabsstabilityprofilebyremovingthetwodegradationhotspots([J.JPharmSci,2021.104(6):1960-1970.DOl:10.1002/jps.24435.[44]HIGELF,SEIDLA.SORGELF,etal.N-glycosylationheterogeneityandtheinfuenceonstructure,functionandpharmacokineticsofmonoclonalantibodiesandFcfusionproteins[J].EurJPharmBiopharm,2021.100:94-100.DOI:10.1016/j.ejpb.2021.01.005.[45]THARMALINGAMT,WUCH.CALLAHANS,etal.Aframeworkforreal-timeglycosylationmonitoring(RT-GMjinmammaliancellculture[J].BiotechnolBioeng,2021,12(6)1146-1154.DOI:10.10

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