标准解读
《GB/T 18648-2002 非洲猪瘟诊断技术》是中国关于非洲猪瘟诊断方法的一项国家标准,旨在为兽医、实验室技术人员及动物防疫相关部门提供一套统一、规范的非洲猪瘟检测与确认流程。该标准详细阐述了多种诊断技术及其应用要求,确保诊断结果的准确性和可靠性,对防控非洲猪瘟疫情具有重要意义。以下是该标准的主要内容概览:
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范围:规定了非洲猪瘟的实验室诊断方法,包括临床症状观察、病理解剖学检查、免疫学检测和分子生物学检测等,适用于疑似非洲猪瘟疫情的诊断与确认。
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规范性引用文件:列出了执行本标准时所依据或参考的其他标准文件,确保诊断过程的标准化和兼容性。
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术语和定义:明确了非洲猪瘟、抗原、抗体等专业术语的具体含义,为标准的准确理解和执行奠定基础。
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诊断原则:强调了综合分析临床症状、流行病学调查信息及实验室检测结果的重要性,提倡采用多种诊断方法相互验证的原则。
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临床症状与病理变化观察:描述了非洲猪瘟感染猪只可能出现的典型临床表现和病理学特征,如高热、皮肤发绀、脾脏肿大等,作为初步判断依据。
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免疫学检测方法:
- 间接酶联免疫吸附试验(ELISA):用于检测血清中的特异性抗体,适用于流行病学调查和大规模筛查。
- 免疫荧光试验(IFAT):利用荧光标记抗体检测组织切片或细胞培养物中的非洲猪瘟病毒抗原,具有较高的敏感性和特异性。
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分子生物学检测方法:
- 聚合酶链反应(PCR):包括常规PCR和实时荧光定量PCR,能够直接检测样本中的病毒核酸,是目前最常用的快速诊断方法之一。
- 核酸序列分析:通过测序确定病毒的基因型,有助于追踪疫情来源和病毒变异情况。
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样品采集、保存与运输:详细说明了不同样本类型(如血液、组织、分泌物)的采集方法、保存条件及运输要求,以保证样本质量满足检测需求。
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实验室生物安全:强调了在进行非洲猪瘟检测时应遵循的生物安全操作规程,防止病毒扩散和人员感染。
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诊断结果判定与报告:制定了诊断结果的判定标准,要求明确记录检测方法、结果及结论,并按规定格式出具正式报告。
如需获取更多详尽信息,请直接参考下方经官方授权发布的权威标准文档。
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文档简介
ICS.11.220B41中华人民共和国国家标准GB/T18648—2002非洲猪癌诊断技术DiagnostictechniquesforrAfricanswinefever2002-02-19发布2002-05-01实施中华人民共和国发布国家质量监督检验检疫总局
中华人民共和国国家标准非洲猪诊断技术GB/T18648-2002中中国标准出版社出版发行北京西城区复兴门外三里河北街16号邮政编码:100045电话:63787337、637874472002年7月第一版2004年11月电子版制作书号:155066·1-18544版权专有侵权必究举报电话:(010)68533533
GB/T18648-2002非洲猪癌(Africanswinefever,简称SF)是由非洲猪癌病毒(ASFV)引起的猪的一种急性、热性高度接触传染性疾病。其特征为病程短·病死率高·临床症状和病理变化均类似于急性猪癌,表现高热皮肤充血、流产、水肿及脏器出血。为世界动物卫生组织WorldOrganizationforAnimalHealth(英)OfficeIntentionaldesEpizootic(法),OIE和我国规定的动物一类疾病。病毒在鲜肉和腌肉中能存活数ASF的实验室诊断分为两类:第一类包括病毒分离、病毒抗原和基因组DNA的检测;第二类包括抗体的检测。试验方法的选择主要依据本国或本地区的疾病情况而定。在没有ASF但又怀疑该病存在的国家,实验室诊断必须应用无感染性的诊断方法,即应用聚合酶链反应(PCR)检测病毒基因组DNA和应用酶联免疫吸附试验(ELISA)检测血清抗体。我国是无ASF国家,目前尚无ASF的检疫方法。农业部动物检疫所于1997年与美国梅岛动物病研究中心进行了ASF的无感染性快速检测方法的合作研究,建立了适合于我国使用的由可疑感染动物血液和内脏器官中直接检测ASFVDNA的PCR技术.以及检测血清中ASFV抗体的ELISA方法。本标准对这两种方法技术要求作了规定。本标准的附录A、附录B和附录C都是标准的附录。本标准由中华人民共和国农业部提出。本标准由全国动物检疫标准化技术委员会归口。本标准起草单位:农业部动物检疫所。本标准主要起草人:蒋正军、王树双、尹燕博、蔡丽娟、郭福生、陆明哲、孙淑芳、龚振华
中华人民共和国国家标准GB/T18648-2002非洲猪癌诊断技术DiagnostictechniquesforAfricanswinefever1范围本标准规定了非洲猪癌(ASF)聚合酶链反应(PCR)和酶联免疫吸附试验(ELISA)的技术要求本标准适用于生猪和野猪等易感动物及其产品ASF的诊断和检疫,2PCR试验2.1材料准备2.1.1样品DNA制备方法见附录A(标准的附录)2.1.2电泳液缓冲液的配制方法见附录B(标准的附录)2.1.3标准ASFV-BA株DNA、引物1、引物2、1.25mmol/LdNTP和载样缓冲液2.1.4台克(Taq)DNA聚合酶、分子量为100碱基对(bp)Ladder(标准DNAMarker)0和10倍浓度的聚合酶链反应(PCR)扩增缓冲液。2.1.5自动DNA热循环仪2.2操作方法2.2.1将下列试剂按要求量加入到0.75mL的离心管中:灭菌蒸留水(24.5PL.);10倍浓度的PCR扩增缓冲液(5PL):1.25mmol/LdNTP存液(8PL);引物1(1L);引物2(1PL);样品DNA溶液(10L)见附录A):TaqDNA聚合酶(0.5L)。2.2.2设定两个对照,阳性对照为标准的ASFV-BA株的10LDNA含量为10{g:阴性对照为不含DNA的灭菌蒸留水10/L。2.2.3取50″L矿物油覆盖在混合液上。2.2.4将加有样品或对照混合物的Eppendorf管放入自动DNA热环仪中按下述程序和条件进行DNA扩增:94C5min.50C2min.72C3min循环一次94C1min.50C2min.72C3min循环30次94C1min.50C2min,72C10min循环一次,最后置于4C保存2.2.5上述步骠完成后,从矿物油下小心取出每种反应混合物20“L·放入另一支干净的Eppendorf管中并加2载样缓冲液,2.2.6将所有样品按编号加入到对应2%琼脂凝胶(见附录B1)板的各孔中.其中一孔加标准阳性DNA样品,在凝胶的边孔中加入标准分子量DNAMarker。2.2.7将凝胶在150V恒定电压下电泳2h。2.2.8结果判定:用紫外光源检查凝胶。如为阳性样品则出现一条孤立的、与阳性对照PCR产物的同步迁
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