果蝇唾液腺染色体观察

二实验原理本世纪初，D.Kostoff用压片法首先在果蝇（Drosophilamelanogaster）幼虫的唾液腺细胞核中发现了特别巨大的染色体——唾液腺染色体（salivaryglandchromosomes）。由于它具有许多重要特点而成为细胞遗传学、发生遗传学、进化遗传学和分子遗传学研究中不可多得的好材料。果蝇是双翅目昆虫，幼虫期具有很大的唾腺细胞，其中的染色体是巨大的唾液腺染色体。唾液腺染色体不断地进行自我复制而不分开，经过许多次的复制形成约1000～4000拷贝的染色体丝，合起来达5mm宽，400mm长，比普通中期相染色体大得多（约100～150倍），所以又称为多线染色体。唾液腺染色体具有许多重要特征，为遗传学研究的许多方面，如染色体结构、化学组成、基因差别表达等提供了独特的研究材料。

果蝇种间或种内不同品系与近缘种之间的遗传差异常表现为唾液腺染色体不联会，形成泡（puff）、缢痕（constrictions）、间带区（interband）的伸缩性以及顶体（telomere）的形态等多方面的变异，特别重要的是可观察是否产生了倒位、染色体的断裂、融合或重排，据此研究其基因序列的差异。因此，无论从细胞遗传学的角度研究基因与突变性状之间的关系，还是从进化遗传学方面研究染色体的系统发育，探讨近缘种间的遗传差异和生殖隔离机制等，唾液腺染色体的分析研究都是十分重要的。果蝇唾液腺染色体已广泛用于种内系统发育和种间亲缘关系的研究中。

普通果蝇（2n=2x=8）唾腺染色体的特点表现在：各染色体着丝点附近异染色质区相互结合形成染色很深的染色中心，第Ⅱ、Ⅲ对染色体呈Ｖ形（中着丝粒），各有两臂，Ｘ染色体呈棒状，第Ⅳ对染色体呈粒状，观察时可见五条臂由染色中心向外蜿蜒伸展。三实验材料果蝇三龄幼虫活体。四实验器具、药品试剂显微镜，生化培养箱；果蝇培养瓶，镊子，解剖针，载玻片，盖玻片，吸水纸等。

0.7％氯化钠（NaCl），1mol/LHCl；改良苯酚品红染色液；果蝇培养基等。五实验方法1．培养果蝇三龄幼虫将果蝇放在营养丰富的培养基中，15℃～18℃下饲养，幼虫要生长肥大，才能获得较大的唾腺。培养要求：①饲料松软，含水量较高，营养丰富，发酵良好（建议配方：玉米粉10g，红糖13g，琼脂1g，酵母粉2g，丙酸3～4滴，加蒸馏水100～120ml）。②追加酵母液。在一龄幼虫出现后，将成虫移入另一培养瓶中，在饲料表面滴加低浓度的酵母液（2％～4.5％），每天滴加1～2滴；2龄～3龄幼虫时期适当增加酵母液的浓度（约10％左右）；滴加的量以覆盖在饲料表面薄薄的一层为宜。③控制幼虫的密度。一般情况下，半磅牛奶瓶中10对成虫交配后在12h左右必须将成虫转移，一般要求每cm2培养基表面20～40只幼虫左右。④低温培养：稍低的温度有利于幼虫的充分生长发育，一般15℃～18℃较为合适。2．取唾腺

挑选生长肥大的三龄幼虫放入表面皿中用0.7％的生理盐水尽量洗去幼虫体表所沾附的培养基，然后将幼虫置载玻片上，滴１～2滴0.7％生理盐水，找到具有口器的头部（有一小黑点），一手用解剖针刺入（或压住）头部，将虫固定，一手用摄子夹紧幼虫下半部（尾端1/3处），轻轻向两端拉开，唾腺随头部拉出。唾腺是一对透明的棒状腺体，外有白色的脂肪组织（不透明）。去除幼虫其它组织部分，并把唾腺周围的白色脂肪剥离干净。唾液腺解剖针解剖针

在低倍显微镜下，调节好光亮度观察，可见一对半透明、隐约可见细胞界限的囊状物——唾腺。移去虫体其余部份，用解剖针剔除附在唾腺一侧深色泡沫状的脂肪体，以保证制片质量。若载片上杂质较多，可用生理盐水适当冲洗，用吸水纸吸去多余的生理盐水。注意：在整个剥离过程中，不能让载片上的生理盐水干涸，否则唾腺收缩而不易剥离；冲洗残渣和吸去多余水液时，要避免唾腺被吸水纸吸走。3．解离

将剥好的唾腺移到载片中央，加一滴1mol/LHCl于腺体上，解离２～３min，使组织疏松，以便压片时细胞分散，染色体展开。4．染色

用吸水纸吸去HCl，加1滴蒸馏水轻轻冲洗后，小心吸干。加1～2滴改良苯酚品红或其它染液，染色10～15min。5．压片

染色完成后，盖上干净的盖片，并覆一层滤纸。将片子放在实验台上，用大拇指均匀用力压片。（注意不要使盖片移动。）

注意：压片时适当多加些染液有利于染色体臂的伸展，但要防止染液过多而造成材料随染液而溢出。6．镜检在低倍镜选择唾腺细胞多且染色体分散好的视野，换高倍镜仔细观察唾腺染色体的染色中心、染色体臂和横纹以及可能有的疏松区、裴氏环、或因易位而形成的十字形图象和因倒位而形成的倒位环等各种结构。六注意事项1.一定加生理盐水，否则唾腺易干。2.将脂肪组织清除干净。3.水不可太多，否则幼虫会漂浮而且活跃。4.染色时间不可过长，否则背景也着色。5.压片时要揉，用