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文档简介

实时荧光定量PCR技术

RealTimeQuantitativePCR南开大学医学院lfnn实时荧光定量PCR技术

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RT-qPCR原理Contents1

RT-qPCR步骤2

SYBR实验步骤3LogoRT-qPCR原理Contents1RT-qPLogoRT-qPCR原理1定义:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实时监测整个PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,最后通过通过Ct值和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析的方法。1.荧光原理:SYBRGreen2.定量原理:(1)介绍三个概念:扩增曲线、荧光阈值、Ct值(2)定量原理:

绝对定量(标准曲线)、相对定量(2-ΔΔCt)

(3)融解曲线LogoRT-qPCR原理1定义:在PCR反应体系中加入荧非特异性荧光标记:

1、SYBRGreen

结合于双链DNA小沟之间,只有和双链DNA结合后才发荧光。(在变性过程中无荧光,在复性及延伸过程中发出荧光)RT-qPCR原理---荧光原理非特异性荧光标记:RT-qPCR原理---荧光原理特异性荧光标记:

1、TaqMan

水解型杂交探针。5′端标记有报告基团R,3′端标记有荧光淬灭基团Q。探针完整,R所发射的荧光能量被Q基团吸收,无荧光。Taq酶有5′→3′外切核酸酶活性,可水解探针R与Q分开,发出荧光。

2、MolecularBeacon

分子信标。标记荧光的发夹探针,环与目标序列互补,茎由互补配对序列组成。变性过程:产生非特异性荧光;延伸过程:不产生荧光;退火过程:产生特异性荧光,检测荧光信号。

3、Amplisensor

双链信号引物,进行半巢式扩增;随着PCR循环的重复进行,信号引物的双链结构被破坏,其中一条链参与到产物的合成中,荧光消失,产物量与荧光成反比。QQR特异性荧光标记:QQRLogoRT-qPCR原理----定量原理1扩增曲线图:横坐标:扩增循环数(Cycle)纵坐标:荧光强度每个循环进行一次荧光信号的收集Ct值的定义:PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经过的扩增循环次数。Ct值极具重现性。分析定量时多取15-35较好。荧光信号阈值(threshold):前15个循环信号作为荧光本底信号(baseline),即样本的荧光背景值和阴性对照的荧光值。荧光域值的缺省设置是3~15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍。LogoRT-qPCR原理----定量原理1扩增曲线图:CLogoRT-qPCR原理----定量原理1理想的PCR反应:

X=X0*2n非理想的PCR反应:

X=X0(1+Ex)nn:

扩增反应的循环次数X:

第n次循环后的产物量

X0:初始模板量

Ex:扩增效率

logX0=-log(1+Ex)*Ct+log

X

Log浓度与循环数呈线性关系,根据样品扩增达到域值的循环数即Ct值就可计算出样品中所含的模板量.1.绝对定量LogoRT-qPCR原理----定量原理1理想的PCR反LogoRT-qPCR原理----绝对定量1模板DNA量越多,荧光达到域值的循环数越少,即Ct值越小Log浓度与循环数呈线性关系,通过已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线,根据样品Ct值,就可以计算出样品中所含的模板量1.绝对定量LogoRT-qPCR原理----绝对定量1模板DNALogoRT-qPCR原理----绝对定量1R2为相关系数:R2>0.99时,认为两数值之间相关性好。E为扩增效率:一般认为在90%-110%之间数据可用。LogoRT-qPCR原理----绝对定量1R2为相关系数LogoRT-qPCR原理----相对定量12.相对定量病人内参基因病人目的基因对照内参基因对照目的基因Ctabcd结果表示病人的目的基因的表达是对照组目的基因表达的多少倍。LogoRT-qPCR原理----相对定量12.相对定量病RT-qPCR原理----融解曲线温度荧光强度TmTm值:DNA解链一半时的温度将温度与荧光强度的变化求导。(-dI/dT)融解曲线为单一峰,无非特异性荧光,定量准确。溶解峰反映反应中扩增到的产物的量。前面杂峰较多时可能原因为样品未混匀。RT-qPCR原理----融解曲线温度荧光强度TmTm值:RT-qPCR步骤----SYBRGreen法1.准备物品:检测样本、内参、引物、荧光染料、八连管、移液枪、Realplex软件2.将样本等稍许离心3.加样(可将所有共同物质加入同一管中,混匀后分散入其他管中)

反应体系:ddH2O10μL染料8μL引物上下游各0.5μL样本1μL4.将八连管标记后离心至无壁挂液体5.将其置入Realplex仪中,

设置程序:95℃15s95℃15s57℃30s74℃30s45循环,END后右键设置“insert---meltingcurve”,后绿色运行6、反应结束后将数据导出,分析数据。RT-qPCR步骤----SYBRGreen法1.准备物反应体系的建立及优化:SYBRGreen使用浓度:太高抑制Taq酶活性,太低,荧光信号太弱,不易检测Primer:引物的特异性高,否则扩增有杂带,定量不准MgCl2(多聚酶的激活剂)浓度:可以降低到1.5mM,以减少非特异性产物反应Buffer体系的优化反应温度和时间参数:由酶和引物决定其他与常规PCR相同RT-qPCR步骤----SYBRGreen法反应体系的建立及优化:RT-qPCR步骤----SYBR对DNA模板没有选择性----适用于任何DNA使用方便-----不必设计复杂探针非常灵敏便宜优点容易与非特异性双链DNA结合,产生假阳性,但可以通过融解曲线的分析,优化反应条件对引物特异性要求较高缺点对DNA模板没有选择性优点容易与非特异性双链DNA结ThankyouThankyou实时荧光定量PCR技术

RealTimeQuantitativePCR南开大学医学院lfnn实时荧光定量PCR技术

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RT-qPCR原理Contents1

RT-qPCR步骤2

SYBR实验步骤3LogoRT-qPCR原理Contents1RT-qPLogoRT-qPCR原理1定义:在PCR反应体系中加入荧光基团,利用荧光信号累积实时监测整个PCR扩增反应中每一个循环扩增产物量的变化,最后通过通过Ct值和标准曲线的分析对起始模板进行定量分析的方法。1.荧光原理:SYBRGreen2.定量原理:(1)介绍三个概念:扩增曲线、荧光阈值、Ct值(2)定量原理:

绝对定量(标准曲线)、相对定量(2-ΔΔCt)

(3)融解曲线LogoRT-qPCR原理1定义:在PCR反应体系中加入荧非特异性荧光标记:

1、SYBRGreen

结合于双链DNA小沟之间,只有和双链DNA结合后才发荧光。(在变性过程中无荧光,在复性及延伸过程中发出荧光)RT-qPCR原理---荧光原理非特异性荧光标记:RT-qPCR原理---荧光原理特异性荧光标记:

1、TaqMan

水解型杂交探针。5′端标记有报告基团R,3′端标记有荧光淬灭基团Q。探针完整,R所发射的荧光能量被Q基团吸收,无荧光。Taq酶有5′→3′外切核酸酶活性,可水解探针R与Q分开,发出荧光。

2、MolecularBeacon

分子信标。标记荧光的发夹探针,环与目标序列互补,茎由互补配对序列组成。变性过程:产生非特异性荧光;延伸过程:不产生荧光;退火过程:产生特异性荧光,检测荧光信号。

3、Amplisensor

双链信号引物,进行半巢式扩增;随着PCR循环的重复进行,信号引物的双链结构被破坏,其中一条链参与到产物的合成中,荧光消失,产物量与荧光成反比。QQR特异性荧光标记:QQRLogoRT-qPCR原理----定量原理1扩增曲线图:横坐标:扩增循环数(Cycle)纵坐标:荧光强度每个循环进行一次荧光信号的收集Ct值的定义:PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时所经过的扩增循环次数。Ct值极具重现性。分析定量时多取15-35较好。荧光信号阈值(threshold):前15个循环信号作为荧光本底信号(baseline),即样本的荧光背景值和阴性对照的荧光值。荧光域值的缺省设置是3~15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍。LogoRT-qPCR原理----定量原理1扩增曲线图:CLogoRT-qPCR原理----定量原理1理想的PCR反应:

X=X0*2n非理想的PCR反应:

X=X0(1+Ex)nn:

扩增反应的循环次数X:

第n次循环后的产物量

X0:初始模板量

Ex:扩增效率

logX0=-log(1+Ex)*Ct+log

X

Log浓度与循环数呈线性关系,根据样品扩增达到域值的循环数即Ct值就可计算出样品中所含的模板量.1.绝对定量LogoRT-qPCR原理----定量原理1理想的PCR反LogoRT-qPCR原理----绝对定量1模板DNA量越多,荧光达到域值的循环数越少,即Ct值越小Log浓度与循环数呈线性关系,通过已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线,根据样品Ct值,就可以计算出样品中所含的模板量1.绝对定量LogoRT-qPCR原理----绝对定量1模板DNALogoRT-qPCR原理----绝对定量1R2为相关系数:R2>0.99时,认为两数值之间相关性好。E为扩增效率:一般认为在90%-110%之间数据可用。LogoRT-qPCR原理----绝对定量1R2为相关系数LogoRT-qPCR原理----相对定量12.相对定量病人内参基因病人目的基因对照内参基因对照目的基因Ctabcd结果表示病人的目的基因的表达是对照组目的基因表达的多少倍。LogoRT-qPCR原理----相对定量12.相对定量病RT-qPCR原理----融解曲线温度荧光强度TmTm值:DNA解链一半时的温度将温度与荧光强度的变化求导。(-dI/dT)融解曲线为单一峰,无非特异性荧光,定量准确。溶解峰反映反应中扩增到的产物的量。前面杂峰较多时可能原因为样品未混匀。RT-qPCR原理----融解曲线温度荧光强度TmTm值:RT-qPCR步骤----SYBRGreen法1.准备物品:检测样本、内参、引物、荧光染料、八连管、移液枪、Realplex软件2.将样本等稍许离心3.加样(可将所有共同物质加入同一管中,混匀后分散入其他管中)

反应体系:ddH2O10μL染料8μL引物上下游各0.5μL样本1μL4.将八连管标记后离心至无壁挂液体5.将其置入Realplex仪中,

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