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文档简介
蚈氯化钠法:取3mL精练棉子油,加入 3mL正己烷,芆加入3mLNaCl(1.4mol#L-1),继续于旋转搅拌器上振荡混合1h;12000r#min-1离心20min,使有机相和水相分离,小心取出下层水相;加入与水相溶液等体积的异丙醇,轻缓颠倒混匀,室温放置40min后,12000r/min-1离心20min,弃上清液,保留沉淀;待沉淀稍微干燥后用1mLTE溶解沉淀,加入1mL异丙醇,轻缓颠倒混匀,室温放置10min,后,12000r#min-1离心20min,弃上清液,保留沉淀;待沉淀稍微干燥后加入60LLTE,充分溶解沉淀,2min过后generaybiotech琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒(离心柱型)GK204150次(仅进行纯化部分),最后将离心获得的溶液(经核酸蛋白浓度检测仪检测浓度)取5微升进行琼脂糖凝胶电泳,同时可作为PCR反应的模板[5-6]。建议一个PCR反应使用1微升DNA。螁纯化部分: 1.从琼脂糖凝胶中切下含有目的片段的凝胶,估计重量羀或精确称量重量。膆2.每 100mg琼脂糖凝胶加入 100μlBindingSolution ,肅于50~60℃水浴 3~5min,期间每 2~3min间断轻微袁颠倒混匀,直至胶块完全融化。莁注:为操作方便,可统一加入 400μlBindingSolution。袇3.将上述混合液转移至套有 2ml收集管的吸附柱 GC-3u袄中,室温放置 2min,6,000rpm室温离心 1min,取出羁吸附柱 GC-3u,并倒掉收集管中废液。薇4.将将吸附柱 GC-3u重新放回收集管中,加入 500μlWA芅Solution,于 12,000rpm,室温离心 1min,倒掉收集管薂中废液。羁5.将吸附柱 GC-3u重新放回收集管中,加入 500μlWash羈Solution,于 12,000rpm,室温离心 1min,倒掉收集管肇中废液。蚅6.重复步骤
5一次。肁7.将吸附柱
GC-3u
重新放回收集管中,
12,000rpm,室荿温离心
1min,之后,打开吸附柱
GC-3u
的盖子,室温蒅放置5~10min或50℃放置3~5min,以彻底去除 Wash莄Solution。膁8.将吸附柱GC-3u放入干净的1.5ml收集管中(用户自螀备),对膜中央悬空加入 25~30μlElutionBuffer,盖膇好盖子,37℃放置 2min,12,000rpm离心 1min,离膃心管中的液体即为包含目的 DNA 片段的溶液。芀PBS和正己烷法:取500ml精炼大豆油加入500ml正己烷,在磁力搅拌器中充分混匀,4h;加入1000mlPBS缓冲溶液在磁力搅拌器中充分混匀,6h;12000×g离心20min,小心取出下层水相;加入(NH)4SO4沉淀过夜。12000×g离心20min,保留沉淀;在沉淀膁中加入800μlH2O, 充分溶解沉淀后,加入等体积的酚和氯仿抽提, 12000×g离心10min,取上清,加入二倍体积的无水乙醇,4℃20min,12000×g离心10min,保留沉淀,自然风干后,加入50μl水溶解沉淀,电泳定量。蚅SDS法:待检样品的制备[2]在1.5mLEP管中加入1mL食用油及400μLTE缓冲液,颠倒混匀5min,室温下离心 13000r/min3min,去除上层油脂层;再次向同一支管中加入 1mL膆食用油,颠倒混匀,离心,去除上层油脂层,反复
20次。取水相用于提取
DNA
。莀A.
400LTE缓冲液中加入
1mL棉籽油,上下颠倒混匀
5min,离心3min;
去上层油脂
;重复20次,得约 400L水相;B.水相中加入 200L20%SDS,水浴;C.加入100L5mol/LNaAc,轻轻摇匀,冰上放置 30min,离心10min;D.将上清移至新离心管,加入 1g担体等体积无水乙醇和 0.1倍体积3mol/LNaAc(pH5.2),颠倒混匀后,- 20℃放置2h;离心,弃上清;E.沉淀用500L70%乙醇洗涤两次,干燥15min;F.加入30L0.1×TE。芈SDS法也是一种分子生物学中常用的DNA提取方法。与CTAB不同,SDS是一种阴离子去垢剂,在高温条件下能裂解细胞,使染色体离析、蛋白变性,同时及多糖结合成复合物,释放出核酸。通过提高盐浓度并降低温度,使
SDS能与蛋白质SDS-蛋白质复合物的溶解度变得更小DNA。传统的
,从而使蛋白质及多糖杂质沉淀。上清液经酚SDS提取缓冲液,包含 Tris-HCl,EDTA,
/氯仿反复抽提后用乙醇沉淀莇NaCl,巯基乙醇和 SDS[23]。羅CTAB法:待检样品的制备[2]在1.5mLEP管中加入1mL食用油及400μLTE缓冲液,颠倒混匀 5min,室温下离心 13000r/min3min,去除上层油脂层;再次向同一支管中加入 1mL蒀食用油,颠倒混匀,离心,去除上层油脂层,反复
20次。取水相用于提取
DNA
。虿在制样获取的水相中,加入 400μLCTAB提取液漩涡振荡 1s~3s,置于65℃水浴30min;加入等体积。三氯甲烷 /异戊醇(24:1),轻缓颠倒数次后室温静置 5min;13000r/m室温下离心5min,转移并等分上清液于两个 1.5mL离心管;加入 0.6倍体积预冷的异丙醇,颠倒混匀后于-20℃静置过夜沉淀 DNA;13000r/min室温离心 10min,弃去上清液;用 70%乙醇洗涤沉淀两次,干燥沉淀物(注意不应过于干燥,否则沉淀难溶解) ;每个离心管中加入 30μL~50μLTE
缓冲液溶解沉淀,
4℃保存备用。聿CTAB 法被广泛的应用于植物叶子、 种子、微生物以及加工食品中的 DNA 提取,是一种经典的 DNA提取方法[14-15]。其基本原理是 :CTAB 是一种阳离子去污剂,它能与核酸形成复合物,这些复合物在 低盐溶液中因溶解度的降低而沉淀 ,而在高盐溶液中可螄解离,从而使 DNA 与多糖等杂质分开, 再用乙醇沉淀 DNA 而除去 CTAB。自从 Murray等人[16-17]首次使用 CTAB 法成功的提取植物基因组 DNA,CTAB 发展迅速,不断得到改进,已经成为分子生物学中提取 DNA 的最常用的方法之一[ 18-20]。以下无正文仅供个人用于学习、研究;不得用于商业用途。Forpersonaluseonlyinstudyandresearch;notforcommercialuse.仅供个人用于学习、研究;不得用于商业用途。Nurfürdenpers?nlichenf ürStudien,Forschung,zukommerziellenZweckenverwendetwerden.Pourl' étudeetlarechercheuniquement àdes
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