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文档简介

1、探讨转基因显微注射中的基因装液方法改良<        摘要:目前常用的转基因动物制备方法有显微注射法、逆转录病毒感染法、精子载体法、胚胎干细胞介导法、人工酵母染色体法及电转移法等16。其中显微注射仍是最可靠、最广泛使用的一种方法,因其外源基因整合效率高,对目的基因无大小限制,且可以直接获得纯系78,但其过程烦琐且要求严格,将基因液装入微注射针是其成功的关键前提910。当前各实验室普遍使用可编程微量注射仪,该仪器要求将基因液面倒吸至注射针的直管部以获得稳定平衡压力,但仅用其吸入功能无法达到,导致培养液倒吸,基

2、因液被稀释,从而大大影响了转基因成功率。笔者建立一种简单有效的方法以克服这一缺点。 关键词:  动物 遗体修饰 小鼠 转基因 显微注射 基因转移技术1  材料与方法1.1  仪器和材料  PN30拉针仪,MF900煅针仪,IM300可编程微量注射仪(日本Narishige公司);倒置显微镜,显微操作仪(日本Olympus公司),G100薄壁毛细玻璃管(1×90 mm,日本Narishige公司)或BJ40        【内容导航】   

3、;      第1页:探讨转基因显微注射中的基因装液方法改良        第2页:探讨转基因显微注射中的基因装液方法改良            第3页:探讨转基因显微注射中的基因装液方法改良             &

4、#160;      原核显微注射法制备转基因小鼠是一个严格而烦琐的过程,其中将基因液装入注射针是显微注射之前必不可少的关键一步。目前完成该步骤的方法有3种:针背虹吸法、针背填充法以及针尖倒吸法。前2种方法均需要特殊的毛细管,且操作过程中极容易污染基因液,每次操作基因液的用量大,成本较高。而针尖倒吸法是利用可编程微量注射仪的“FILL”功能将基因液直接从注射针针口倒吸进入注射针。该法将基因液从针口倒吸进入注射针,既不需要使用昂贵的微载管,且每次只须<1 L的基因液,可以很大程度地节约基因液的用量;另外,每次吸取少量基因液做成基因液滴的方法

5、可以很大程度地保持基因液的纯度,在操作过程中也不会对基因液造成污染。因此,使用倒吸法装载基因液是最经济、简便的一种方法。3.1  A法的缺陷  笔者使用A法进行转基因动物实验的过程中发现,按压“FILL”按键,当液面上升到注射针尖细部一定位置后,再按压“FILL”按键多次,注射针内液面没有明显变化,表明A法不能通过人为控制吸入足够量的基因液。装好基因液的注射针下降进入培养液后,在显微镜下可以观察到针内液面缓慢下降,说明显微注射仪提供的平衡压力能够抵消培养液的虹吸效应,产生使基因液缓慢外流的正压。而在模拟显微注射过程中,连续按压数次显微注射仪的“INJ”和“CLR”键后,在注

6、射仪提供的平衡压力不变的情况下,针内液面开始缓慢上升,说明原来的平衡压力已经不能抵消虹吸效应,使得培养液倒吸进入注射针,从而稀释针内的基因液,影响转基因动物制备的成功率。注射针的内径越小,其虹吸效应就越强,当基因液液面处于针的尖细部时,随着注射过程进行,液面不断向针尖方向移动,抵消虹吸效应所需的平衡压力就越高,这就需要在注射过程中时时调节“BALN”的压力,这既增加了显微注射的困难度,而且实际上也不大可能实现。并且,使用该法仅能倒吸入少量基因液,在注射过程中,需要经常按压“CLR”键(10次)来保证注射针口的通畅,在这个过程中会损失大量的基因液,导致吸入的基因液不足以完成一盘受精卵(2030个

7、)的注射量,增加了装载基因液的频率,亦会大大影响转基因实验的成功率。3.2  B法的改良  本实验采用先从注射针背部装入适量石蜡油的方法(即B法)解决以上问题。在基因液装载的过程中发现,按压“FILL”按键数次,石蜡油与基因液的交界面仍然可以上升,表明B法可以通过增加“FILL”的次数来装入足够量的基因液,以保证顺利完成一盘受精卵的注射,从而节约注射时间。而在模拟显微注射过程中,连续按压数次显微注射仪的“INJ”和“CLR”键后,在注射仪提供的平衡压力不变的情况下,针内液面仍然缓慢下降,这说明只要石蜡油的上液面仍然处于注射针的直管部,即使基因液面在细管部移动,仍然不会影响抵

8、消虹吸效应所需的平衡压力,因此连续按压数次显微注射仪的“INJ”和“CLR”键后,原来设定的平衡压力仍然能够产生使基因液缓慢外流的正压,消除了压力不稳定给转基因动物实验带来的影响因素。此外,由于石蜡油稳定、无毒、非亲水的特性,已被广泛应用于细胞培养的实验中,相对于高度提纯的基因液来说,石蜡油更加经济且易于获得。由于石蜡油的非亲水性,在基因液后端装上石蜡油可以防止溶液蒸发导致基因浓度升高,保持基因注射过程中基因液的正常浓度。且由于该操作的简便、无菌,在显微注射过程中可以重复装载基因液,毋需更换新的注射针,减少注射针使用量。用于装载石蜡油的微载管可以反复使用,也减少其用量。【参考文献】 

9、 1 Koo B C,Kwon M S,Choi B R, et alRetrovirusmediated gene transfer and expression of EGFP in chickenJ. Mel Reprod, 2004,68(4):4294342 Lavitrano M,Camaioni A,Fazio V M, et alSperm cells as vector for introducing foreign DNA into eggs:genetic transformation of miceJ .Cell,1989,57(5):7177233 Zhao J,Li

10、u B,Ren W Z, et alProduction of transgenic mice by in vivo spermatogoniamediated gene transferJ. Shi Yan Sheng Wu Xue Bao, 2003,36(3):197201.4 Gerald D,Fischbach,Ruth L, et alStem cells:science,policy,and ethicsJ. J Clin Invest, 2004,114(10):136413705 MacKenzie AProduction of yeast artificial chromo

11、some transgenic mice by pronuclear injection of onecell embryosJ. Methods Mol Biol, 2006,349:l391506 Osumi N,Inoue T. Gene transfer into cultured mammalian embryos by electroporationJ. Methods, 2001,24(1): 3542.7 Wong R W, Sham M H,Lau Y L, et al. An efficient method of generating transgenic mice by

12、 pronuclear microinjectionJ. Mol Biotechnol, 2000,15(2):155.8 Juhila J,Roozendaal R,Lassila M, et al. Podocyte cellspecific expression of doxycycline inducible Cre recombinase in miceJ. J Am Soc Nephrol, 2006,17(3):648654.9 Nagy A, Gertsenstei M, Vintersten K, et al. Manipulating the Mouse Embryo: A Laboratory ManualM. Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2004:312313.10 李建秀,胡卫江,胡以平. 小鼠受精卵显微操作方法的改进J. 第二军医大学学报, 2002,23(9):10321033.<P        【内容导航】         第1页:探讨转基因显微注射中的基因装液方法改良  

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