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文档简介
1、 仓鼠胰腺癌原位模型的建立及生物学特性(1) 】目的: 建立仓鼠胰腺癌原位模型,并研究其生物学特性. 方法: 将仓鼠胰腺癌细胞株pGHAM1接种于仓鼠胰腺背膜下,分别于第7, 14, 21, 28日各剖杀10只,肉眼及光学显微镜下观察原位肿瘤的生长、淋巴结转移及肝转移,同时观测腹水量. 结果: 仓鼠胰腺癌原位模型成活率达95%,生长迅速. 接种后第7, 14, 21, 28日原位肿瘤大小分别为(16±6),(173±44),(369±87),(974±226) m
2、m3. 第21日,毛细淋巴管内可见癌细胞团,部分淋巴结有癌细胞转移,可见少量淡血性腹水. 第28日,淋巴结阳性率进一步增加,可见血性腹水,量明显增多;部分仓鼠发生了肝转移. 结论: 仓鼠胰腺癌细胞株 pGHAM1原位模型建立方法简便,易复制,而且肿瘤保持了胰腺癌的生物学特性,是理想的胰腺癌研究模型.【关键词】 胰腺肿瘤;疾病模型,动物;金仓鼠0引言胰腺癌是一种恶性程度高、预后极差的肿瘤1. 其原因是胰腺癌发病隐匿,很难早期诊断,而即便早期诊断,部分患者也已经发生肝脏转移、腹膜播散或者局部复发2. 基于为胰腺癌研究提供一个肿瘤的试验系统目的,已有大量胰腺癌动物模型建立,但很多是裸鼠模型. 在肿瘤
3、研究方面,由于裸鼠没有正常的免疫系统,其发病机制可能与人有所不同3. 而叙利亚金色仓鼠在形态学、生物学以及免疫学等方面与人相似. 我们拟建立仓鼠胰腺癌原位模型,并研究其生物学特性.1材料和方法1.1材料雌性叙利亚金黄仓鼠40只,45周龄,纯近交系,体质量4050 g,购自中国兰州生物制品研究所. 饲养条件:温度(22±3),相对湿度为(40±5)%,光/暗周期为12 h/12 h,按照标准食物喂养,自由饮水;DMEM培养液为Gibcol BRL产品;胎牛血清购自杭州四季青生物工程公司.1.2方法1.2.1仓鼠胰腺癌细胞株pGHAM1的建立用甲硝二胺诱导叙利亚金黄色仓鼠胰腺导
4、管癌4. 肿瘤组织用剪刀剪成1 mm×1 mm×1 mm并用套针植入仓鼠肩胛区皮下,68 wk后处死动物,切除肿瘤自治后反复继代种植,第8次种植后切除肿瘤组织,用0.5 g/L的胰蛋白酶消化,37下EDTA处理10 min, 1000 r/min离心10 min,收集细胞,于含100 mL/L胎牛血清的DMEM培养液中培养,并加 100 U/L青霉素链霉素,100 mg/L卡那霉素以及100 mg/L两性霉素B,反复传代培养60代,建立pGHAM1细胞株.1.2.2仓鼠胰腺癌原位模型的建立PGHAM1细胞株于DMEM培养液中稳定传代56代. 观察细胞增殖旺盛时终止培养,用无
5、血清DMEM培养液制备细胞悬液,调整细胞密度至1×1010/L,备用. 以60 mg/kg腹腔注射戊巴比妥钠,取腹部正中切口,牵出胰腺,于脾门较宽大处胰腺背膜下注射1×106/L PGHAM1细胞悬液后常规关腹. 于术后7, 14, 21, 28 d分别剖杀10只. 切除原位肿瘤,用测径器测量肿瘤大小,按公式V=/6×长×宽×高计算肿瘤体积,同时观察腹水的质与量、有无淋巴结、大网膜、壁层腹膜及肝脏转移.1.2.3病理学检查切除大网膜,平铺在蜡片上,“卷席法”处理大网膜标本;40/L甲醛固定原位肿瘤、壁层腹膜、肝脏及可疑淋巴结,石蜡包埋切片,HE
6、染色,光学显微镜观察. 2结果2.1原位肿瘤及转移情况接种后第7日,可见胰内原发灶大小(16±6) mm3,侵至背膜,10只仓鼠中有5只管状斑处有癌细胞团;壁腹膜镜检显示间皮细胞部分正常(Fig 1A),而部分间隙增宽;肝脏及淋巴结未见转移,无腹水. 第14日,胰腺内原发灶大小(173±44) mm3,侵至背膜;10只仓鼠中9只管状斑处可见癌细胞团,且较原来增大;壁腹膜间皮细胞开始增生脱落(Fig 1B);未检测到淋巴结和肝脏转移,未见腹水. 第21日,肿瘤进一步增大至(369±87) mm3,侵至背膜;有少量淡血性腹
7、水;10只仓鼠管状斑均可见癌细胞团,同时毛细淋巴管中亦可见癌细胞团;壁腹膜间皮细胞大片脱落;10只仓鼠有4只检测到淋巴结转移;肝脏未见转移. 第28日,原位肿瘤大小为(974±226) mm3,与周围脏器或组织粘连(Fig 1C);腹水呈血性,量较大;10只仓鼠有1只死亡,8只检测到淋巴结转移;5只肝脏表面出现大小较一致的多发转移结节.2.2病理学特征原位移植瘤呈圆形或椭圆形,表面凹凸不平,外观呈粉红色(Fig 1C),切面呈灰白色,部分中心有坏死,肿瘤组织质地较脆;镜下可见肿瘤细胞呈多角形、梭形或不规则形,胞质淡染,胞核大而圆,异形性明显,核分裂相多见,肿瘤细胞结节状生长,排列成实
8、性巢状,内有小的血窦,无腺腔样结构,与低分化胰腺腺癌一致(Fig 1D). 转移肝脏表面可见多发结节,部分已经发生融合(Fig 1E);镜下可见肝小叶结构遭破坏,取而代之的为癌细胞团,癌细胞特征与胰腺原位肿瘤细胞特征一致(Fig 1F). 【关键词】,胰腺肿瘤Establishment of orthotopic model of hamster pancreatic cancer and its biologic cha
9、0; 本篇论文是由3COME文档频道的网友为您在网络上收集整理饼投稿至本站的,论文版权属原作者,请不用于商业用途或者抄袭,仅供参考学习之用,否者后果自负,如果此文侵犯您的合法权益,请联系我们。3讨论近年来,胰腺癌的发病率在世界范围内呈明显上升趋势5. 同时,也是我国人口死亡的十大恶性肿瘤之一. 由于其恶性度高,发病隐匿,易早期转移,加上对放化疗不敏感等特性,使得即使成功地进行了手术切除,术后5 a生存率也不到20%6,7. 裸鼠是最多用来建立肿瘤模型的动物,由于裸鼠缺乏胸腺,不具备T细胞免疫力,故对异种移植不产生排斥反应,成活率高,容
10、易建立胰腺癌动物模型8. 但是,由于其缺乏免疫功能,使得裸鼠胰腺癌模型的发病机制可能与人有所不同. 除此之外,许多裸鼠胰腺癌模型是将癌细胞接种在皮下建立的,它的优点是便于观察,但是这样做却改变了解剖与生理条件. 由于裸鼠胰腺癌模型存在以上不足,因此它并不是最理想的研究模型.叙利亚金色仓鼠在形态学、生物学以及免疫学等方面与人有相似之处3. 例如,人大网膜上广泛分布着管状斑,网膜上的管状斑是腹腔淋巴系统的末梢吸收装置,与毛细淋巴管相连,在生理情况下,其主功能是吸收腹水和腹水中的有形成分9. 而当腹水中有癌细胞时,可能就会被网膜管状斑吸收,导致肿瘤的早期淋巴转移和随后的血行转移. 仓鼠网膜上的管状斑
11、与人的大网膜上的管状斑解剖结构相似.我们利用高恶性度的仓鼠胰腺癌细胞株建立的胰腺癌原位模型,经过35 d潜伏期后逐渐增大;第21日,镜下可检测到淋巴结转移;第28日,部分肝脏表面有大小较一致的转移结节. 但是在淋巴结转移之前,首先检测到的是网膜管状斑有癌细胞团,随后毛细淋巴管中可检测到癌细胞团,最后才检测到淋巴结转移. 这一现象说明网膜管状斑与胰腺癌的转移关系密切. 该模型的特点是潜伏期短、生长迅速、转移早且转移率高,同时还保持了胰腺癌的生理和解剖特性. 因此,仓鼠胰腺癌原位模型是体内研究的理想模型.【参考文献】1 Alexakis N, Halloran C, Raraty M, et al
12、. Current standards of surgery for pancreatic cancer J. Br J Surg, 2004;91(11):1410-1427.2 Matsushita A, Onda M, Uchida E, et al. Antitumor effect of a new selective matrix metalloproteinase inhibitor, MMI166, on experimental pancreatic cancer J. Int J Cancer, 2001;92(3):434-440.3 Yamamura S, Onda M
13、, Uchida E. Two types of peritoneal dissemination of pancreatic cancercells in a hamster mode J. Nippon Ika Daigaku Zasshi, 1999;66(4):253-261.4 Yanagi K, Onda M, Uchida E. Effect of angiostatin on liver metastasis of pancreatic cancer in hamsters J. Jpn J Cancer Res, 2000;91(7):723-730.5 Hiroi M, O
14、nda M, Uchida E, et al. Antitumor effect of N3,4dimethoxycinnamoylanthranilic acid on experimental pancreatic cancer J. J Nippon Med Sch, 2002;69(3):224-234.6 Link KH, Gansauge F, Pillasch J, et al. Multimodal therapies in ductal pancreatic cancer J. Int J Pancreatol, 1997;21(1):71-83.7 Hawes RH, Xi
15、ong Q, Waxman I, et al. A multispeciality approach to the diagnosis and management of pancreatic cancer J. Am J Gastroenterol, 2000;95(1):17-31.8 高进,李敏民. 中国人类恶性肿瘤在免疫缺陷动物体内的模型建立及现存问题J. 中华肿瘤杂志,1999;21(1):69-72.Gao J, Li MM. Establishment and question of Chinese malignant tumor in immunodeficiency animals
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