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37TechnicalspecificationforearlypreventionofAureliacoeruleablooms本文件按照GB/T1.1—2020《标准化工作导则第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定海月水母暴发早期防控技术规范GB/T12763.6海洋调查规范第6部分:海洋3.13.23.35.3重点考虑在受灾单位周边的封闭或半封闭港口、人工湖、养殖区及跨海大桥等大型沿海工程附近5.4站位布设宜充分考虑受灾单位周边海流、潮汐及风等水文气象因素。网采集碟状体。样品采集后用中性甲醛溶液固定,加入量为样品体积的5%,通过体视显微镜观察碟状E——碟状体丰度,单位为个每立方米(ind•m-3P——全网碟状体个数,单位为个(ind6.3根据碟状体丰度时空分布初步推断受灾单位周边海域海月水母暴发的潜在源头,即其螅状体栖息7.1.1于初步拟定的海月水母螅状体栖息地站位附近区域通过水肺潜水肉眼观察搜寻其螅状体。水肺7.1.2海月水母螅状体栖息地站位附近搜人工鱼礁及养殖网衣等水下人工基质,螅状体通常高密度倒挂附着于上述基质表面的下表面),7.2.4根据每张样方框照片,计数螅状体数量,填写螅状体调查记录表(见附录D)。基质表面螅状·······················································D——基质表面螅状体密度,单位为个每平方米(ind•m-2Nn——第n个样方内螅状体数量,单位为个(indS——样方框面积,单位为平方米(m2)。T——基质表面螅状体总数量,单位为个(indD——基质表面螅状体密度,单位为个每平方米(ind•m-28.2螅状体清除遵循生态环境保护优先的原则,应根据其附着基质的可移除性选择清除方式,宜选择8.3对于不可移除的基质,选择以下清除方式。a)水下清除:利用空化射流喷射清除基质表面螅状体,喷射压力宜选b)陆基清除:当基质易于移动时,除采用水下清除外,也可将基质转移至陆基,按照水下清除8.4对于可移除的基质,宜直接将基质从海水中移除。9清除后管理10.1评估内容分别比较站位周边基质表面螅状体清除率和螅状体清除前后水母体丰度/生物量变化,评估螅状体10.2螅状体清除率基质表面附着的螅状体清除后,应当场按7.2监测其表面剩余螅状体密度和总数量,通过螅状体清×100%····················×100%······················R——螅状体清除率;TDo——清除前基质表面螅状体密度,单位为个每平方米(ind•m-2螅状体清除记录表见附录E。螅状体清除率越高, (ρ):······························································ρ——水母体丰度/生物量,单位为个或千克每平方千米(ind•km-2或kg•km-2);C——平均每小时底拖网获得水母数量或重量,单位为个或千克每网每小时[ind•(net•h)-1或kg•-1];),——若螅状体清除后水母体丰度/生物量与清除前差异不显著,或显著高于螅状体清除前丰度/生物量,则早期防控效果不好;需防范外源海月水母的入侵,考虑扩大螅状体清除范围一步确认布设站位周边是否仍有大量螅状体未发现海月水母螅状体、碟状体和水母体代表性图a)螅状体b)碟状体注:海月水母螅状体呈倒圆锥形,身体柔软,呈乳白色,口盘阔,口柄短。叉,长而尖;两个缘瓣顶端相互靠拢;每对缘瓣之间有1个感觉棍(rhopalia刺胞不规则分散于伞表面;伞径大小约2mm~4mm。海月水母水母体透明胶质,圆盘状,伞中间通常包含4个马蹄形的生殖腺,腹面有4个a)螅状体附着于基质底部无大型污损生物区域bc)螅状体附着于基质底部苔藓虫表面利用解剖针随机挑取基质表面少量螅状体(10个~30个),使用CTAB法或者DNA提取试C.3.1反应体系为50μL,包括1.25U~2.5U的TagDNA聚合酶,10mol/L的正反向引物各2μL,2.5m阴性对照用来检测是否存在污染。C.3.4所有PCR均在PCR仪上完成。扩增产物经纯化后利用测序仪进行双向测将COI基因序列在GenBank和BOLDSystem中进行核苷酸序列比对,将16SrRNA基因序列在GenBank1234I…):水深(m)水温(℃)盐度
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