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文档简介

·1·T淋巴细胞转化试验于彬E-mail:yubin@淋巴细胞在体外培养时,受到刺激物的刺激后可表现为细胞体积增大、代谢旺盛、蛋白质和核酸合成增加,即向淋巴母细胞转化和增殖。此现象称为淋巴细胞转化现象(简称为淋转)。淋巴细胞转化率的高低可以反映机体的免疫水平,因此可作为测定机体免疫功能的指标之一。淋巴细胞转化概念·3·检查患者细胞免疫功能估计疾病的疗效及预后细胞配型抗原的检查:移植免疫免疫药理学:具有免疫调节的药物、保健品、中草药及生物制品卫生毒理学的研究淋巴细胞转化实验的应用·4·实验分组及材料实验原理主要操作步骤检测方法实验主要内容·5·实验分组及材料器材75%酒精 若干无菌纱网 1块/组无菌平皿 1块/组无菌96孔培养板 1块/组细胞计数板 1套/组显微镜 1台/组可调微量加样器 1套/4人无菌吸头(大、中、小)1套/4人EP管 25个/4人眼科剪、小镊子 1饭盒/4人5ml注射器1个/组100ml烧杯1个/组细胞培养箱(37℃5%CO2)酶标仪1台离心机 2个/room超净台 2个/room分组:每组4人

动物及试剂小鼠1只/组培养液(1640)无FCS10ml/组

培养液(1640)10%FCS10ml/组

50ml灭菌离心筒1个/组ConA(200ug/ml)200ul/组MTT(5mg/ml)

0.7ml/组滤纸一块二甲亚砜(DMSO) 3ml/组·6·Lymphocytes(B/T)mitogensSpecificityAgProliferationtransformationlymphoblastNucleic

Acid↑Protein↑T细胞、B细胞表面具有识别抗原的受体和有丝分裂原受体,在特异性抗原刺激下可使相应淋巴细胞克隆发生增殖。原理·7·有丝分裂原(mitogen)来自植物蛋白或细菌产物,它能与多种细胞膜糖类及寡糖基分子结合,后者为丝分裂原受体、结合后能促使细胞活化和诱导细胞分裂。T和B细胞表面都有丝裂原受体,在体外可非特异性刺激静止淋巴细胞向淋巴母细胞转化。这种转化细胞DNA合成增加,出现细胞体积增大,胞浆增多,嗜碱性以及产生有丝分裂等形态变化。有丝分裂原·8·Tcellproliferation植物血凝素(phytohemagglutinin,PHA)(人T)刀豆素A(concanavalin,ConA)(鼠T)美洲商陆(pokeweedmitogen,PWM)B

cellproliferation脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)(鼠B)金黄色葡萄球菌A蛋白(staphylococcalproteinA,SPA)(人B)美洲商陆(pokeweedmitogen,PWM)常用的丝裂原·9·形态学观察法3H-TdR(3H-胸腺嘧啶核苷)掺入法MTT法(四甲基偶氮唑盐微量酶反应比色法)本次实验采用MTT法常用的检测方法·10·淋巴母细胞主要表现有体积明显增大,是成熟淋巴细胞的3~4倍;染色质疏松,核仁清晰可见;胞浆丰富并形成空泡。根据细胞的大小,核与胞浆的比例,胞浆的染色性和核结构以及有无核仁等特征,分别计数淋巴母细胞、过渡型母细胞和核丝分裂相细胞以及成熟的小淋巴细胞,以前三者为转化细胞,每份标本计数200个细胞,按下式计算转化率:

形态学检测方法·11·G0G1有丝分裂原特异性抗原SPr,RNA,DNA前体物质DNA↑↑NewDNA3H-TdRTdR3H-TdRcpm3H-TdR掺入法·12·T细胞在PHA或ConA刺激下转化为淋巴母细胞,同时DNA和RNA合成明显增加,此时将同位素3H标记的胸腺嘧啶核苷(3H-TdR),加入培养液内,则被作为DNA原料摄入到转化的细胞内,测定细胞内掺入DNA中的3H-TdR的放射性相对数量(以脉冲数cpm表示)可用来表示转化率的高低。测定低能量3H的放射性需用液体闪烁计数器。3H-TdR掺入法·13·活/增殖期的细胞线粒体能量代谢琥珀酸脱氢酶MTTMTT掺入还原甲臢颗粒formazan细胞内/周围溶解测OD490值MTT法DMSO·14·MTT法即四甲基偶氮唑盐微量酶反应比色法。MTT是一种噻唑盐,化学名3-(4,5-二甲基-2-噻唑)-2,5-二苯基溴化四唑,水溶液为黄橙色。小鼠脾细胞受到ConA作用后发生增殖活化,其胞内线粒体琥珀酸脱氢酶活性相应升高,MTT作为其底物参与反应,形成蓝色的甲臜(Formazan)颗粒沉积于细胞内或细胞周围,用二甲亚砜(DMSO)溶解所生成的甲臜颗粒,其生成量与细胞数目和/或细胞活性呈正相关,通过检测490nm处光密度值变化,可间接反映细胞生长及增殖活性。MTT法·15·第一天杀鼠取脾捣碎获得细胞计数细胞稀释(1×107)上样(100ul/孔)ConA的梯度稀释上样(100ul/孔)将96孔板置于细胞培养箱,做好标记,5%CO237℃培养48小时第三天取出96孔板加入MTT(5mg/ml)20ul/孔5%CO237℃,继续培养2小时。2000rpm,离心10min。小心弃去上清,加入100ul/孔DMSO振荡,使颗粒全部溶解。酶标仪测吸光度值:OD490nm结果判定:SI=ConA孔OD值/对照孔OD值实验步骤·16·1W无菌取脾研磨成单细胞悬液+1640(无FBS)细胞计数【?/ml】取20ul细胞+980ul的1640混匀后取出20ul细胞+20ul台盼蓝加板(三复孔)(加法见附图)调细胞浓度1×107个/ml5%CO237℃培养48小时培养终止前2小时加入MTT(5mg/ml)20ul/孔5%CO237℃继续培养2小时2000rpm10min小心弃去上清,加入100ul/孔DMSO振荡,使颗粒全部溶解酶标仪测吸光度值:OD490nm结果判定:SI=ConA孔OD值/对照孔OD值实验流程·17·单细胞悬液的制备小鼠脱臼处死,75%酒精浸泡消毒2-3分钟。于超净台内取出脾组织,放入预先盛有5ml无血清1640培养液的平皿内。用纱网包裹住脾组织,将脾剪成小块,用5ml注射器塞轻压使脾细胞透过纱网。然后用1000ul加样器隔着纱布将脾细胞悬液吸出,放入50ml无菌离心管中,再分别用1ml培养液冲洗纱网和平皿,并将细胞悬液吸出,放入同一50ml离心管中,剩余3ml培养液备用。2000rpm,常温离心6分钟,弃上清,加3ml含血清1640培养液重悬细胞。细胞计数取上述制备好的细胞悬液混匀后取出20ul,加到盛有980ul计数液的EP管中,混匀后取出20ul到一个新的EP管中,再向其中加入20ul台盼蓝染料,混匀后取20ul计入到细胞计数版上,在显微镜下计数,计数方法见后。用含血清1640培养液调细胞浓度至1×107/ml,每组所需总量为4ml(此步可使用之前装无血清培养液的离心管)。详细实验步骤·18·细胞计数板查出四个大方格(16个小方格/大格)的总细胞数(X);算出每个大方格的细胞数:A=X/4每个大方格的体积为:V=1mm×1mm×0.1mm=0.1mm3=10-4ml制备的细胞悬液的细胞浓度(/ml)=A×104×稀释倍数(100)4·19·细胞培养按图所示加板。将板做好标记,在倒置显微镜下观察细胞,然后放于37℃5%CO2培养箱中,培养48小时。MTT掺入:在终止培养前2小时,在显微镜下观察细胞转化情况。每孔内加入MTT(5mg/ml)20ul,加完后轻轻搕板,使MTT和细胞混匀。在37℃5%CO2培养箱中继续培养2小时,取出板,观察颜色变化,然后离心2000rpm,10min,轻轻吸去上清,注意不要将孔底部的颗粒物吸出)观察板底是否有蓝色的颗粒。加入100ul二甲亚砜(DMSO),轻轻晃板,将颗粒完全溶解。结果测定:结果测量:用酶标仪测定490nm处光密度值(OD490nm),记录结果。结果判定:SI(刺激指数)=ConA刺激孔值/对照孔值详细实验步骤·20·100µL

ConA200ug/mlConA的倍比稀释400µL含10%血清的1640400µL400µL400µL400µL400µL400µL1234567900µL含血清的1640201052.51.250.6250.3130.157ug/ml0400µL含10%血清的1640·21·12354760111每个样品设置三复孔

100ulspleen

Cell+100ul

ConA20ug/ml100ulspleencell+100ulConA10ug/ml100ulspleenCell+100ulConA5ug/ml100ulspleenCell+100ulConA2.5ug/ml100ulspleenCell+100ulConA1.25ug/ml100ulspleenCell+100ulConA0.625ug/ml100ulspleenCell+100ulConA0.313ug/ml100ulspleen

Cell+100ul10%1640“0”

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