YYT 0870.2-2013 医疗器械遗传毒性试验 第2部分体外哺乳动物染色体畸变试验_第1页
YYT 0870.2-2013 医疗器械遗传毒性试验 第2部分体外哺乳动物染色体畸变试验_第2页
YYT 0870.2-2013 医疗器械遗传毒性试验 第2部分体外哺乳动物染色体畸变试验_第3页
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文档简介

中华人民共和国医药行业标准I本部分为YY/T0870的第2部分。ⅡGB/T16886.3中给出的检测潜在遗传毒性物YY/T0870的本部分参照OECDNo.473(1997)方法,在有或无代谢活化系统的情况下,将培养YY/T0870的本部分的目的是为了筛选医疗器械/材料中具有导致哺乳动物细胞中染色体结构畸预示毒性物质可能诱导染色体数目畸变。然而,YY/T0870的本部分不适用于检测染色体数目畸变。YY/T0870的本部分需要使用体外代谢活化系12规范性引用文件GB/T68861医疗器械生物学评价第1部分风险管理过程中的评价与试验GB/T16886.3医疗器械生物学评价第3部分遗传毒性、致癌性和生殖毒性试验GB/T16886.5医疗器械生物学评价,第5部分体外细胞毒性试验GB/T16886.12医疗器械生物学评价第12部分GB/Tas860、GB/T1686.3和CBFio2试验用活化系统(S9和S9混合液)、培养液和试剂按附录A和附录B的规定制备或购买市售可选用中国仓鼠肺细胞(CHL)或中国仓鼠卵巢细胞(CHO),推荐首选CHL。需定期检查试验所用细胞核型和有无支原体污染。细胞应置于-80℃与试验和对照样品接触的所有器具应采用可靠方法灭菌,置压力蒸汽灭菌器内121℃30min,或置电热干燥箱内160℃2h。宜根据GB/T16886.12的原则制备试验液。可采用生理盐水和/或其他适宜溶剂作为浸提介质。3见表1。也可采用其他适宜的阳性对照品。表T阳性对照物质举例阳性对照物甲磺酸甲酯(methylmethanesulphonate,MMS)乙基亚硝基脲(ethylnitrosourea)丝裂霉素C(mitomycinC)4-硝基喹啉-N-氧化物(4-nitroquinoline-N-oxide)苯并(a)芘(benzo(a)pyrene)如不能证实所用浸提介质不具有致突变性还应设空白对照。对怀疑有细胞毒性反应的试验样品应进行预试验。取试验细胞株按GB/T16886.5中步骤进行。毒性从最大到小或无细胞毒性,一般至少包括5个试验浓度梯度,并以小或无细胞毒性的浓度进行10.2.1试验分别在加入或不加入S9的条件下进行。按10.2.2~10.2.4步骤操作。4Hanks液洗细胞3次,加入新鲜细胞培养液继续培养,并在接触开始后约1.5倍的正常细胞周期时采10.2.4于收获前2h~4h加入细胞分裂中期阻断剂(如秋水10.3.2低渗:加入0.075mol/L氯化钾溶液5mL~7mL,用滴管将细胞轻轻地吹打混匀,放入37℃水浴中低渗处理10min~20min,加入1mL~2mL固定液(甲醇:冰醋酸,3:1)混匀。以1500r/10.3.3固定:加入5mL~7mL固定液,混匀后固定10min~20min,以1500r/min离心5min~在光学显微镜下每一试验组至少选择200个分散良好的中期分裂相(染色体数为2n±2)进行染色56A.1大鼠肝S9液续冲洗数次,以便除去能抑制微粒体酶活性的血红蛋白。每克肝(湿重)加Q,1mgI/L氯化钾溶液3mL,连同烧杯移人冰浴中,用灭菌剪刀剪碎肝脏,在玻璃匀浆器(低于40000r/mir往复1min~2min),或组织匀浆器(20000rmn,1min)中制成肝匀浆。以上操作需注意无菌和局部冷环境磷酸二氢钠(NaH₂PO₄·H₂O)(13.8存(-20℃以下)。8磷酸氢二钠(Na₂HPO·12H₂O)2.85gNaClNaHCO甲醇(分析纯):冰乙酸(分析纯

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