DB32-T 3104-2016红掌种苗组培快繁技术规程

ICS65.020.20

B62

备案号：51449-2016DB32

江苏省地方标准

DB32/T3104-2016

红掌种苗组培快繁技术规程

TechnicalregulationfortissuecultureseedlingsofAnthura

2016-09-20发布2016-11-20实施

江苏省质量技术监督局发布

DB32/T3104-2016

红掌种苗组培快繁技术规程

1范围

本标准规定了红掌种苗组培快繁的设施设备和操作流程。

本标准适用于红掌组培苗的生产。

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的，凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文

件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。

GB/T8321（所有部分）农药合理使用准则

JB/T10594-2006日光温室和塑料大棚结构与性能要求

3设施设备

3.1场地

选择交通便捷、地势平坦、光照充足、通风良好、水电配套、排灌便利的场地进行设施建设。

3.2主要设施

3.2.1准备室

用于玻璃、塑料器皿及其他实验用具的清洗、干燥和保存，药品的称量、溶解、配制，培养基的

配制、分装、包扎和灭菌，以及植物材料的预处理、培养材料的观察分析等。

3.2.2接种室

放置超净工作台，开展植物材料的无菌操作，包括外植体的消毒、接种、培养物的转移和试管苗

的扩繁、生根等。

3.2.3培养室

用于接种材料的无菌培养和观察，一般要求温度在25±2℃，光照强度1500Lux～3000Lux，光照

周期12h/12h（光/暗）。

3.2.4温室

1

DB32/T3104-2016

用于试管苗的炼苗、移栽和生长，根据实际情况可选择玻璃温室或薄膜温室，必须具备夏季可调

节室内温度至32℃以下，冬季可调节室内温度至15℃以上的条件，可以喷水补湿，并且具有良好的防

虫隔离条件。

设施建造按JB/T10594-2006中规定执行。

3.3主要设备

3.3.1准备室设备

蒸馏水器、冰箱、培养箱、天平、电热磁搅拌器、酸度计、高压蒸汽灭菌锅、烘箱。

3.3.2接种室设备

超净工作台（水平送风）、双筒实体显微镜或生物显微镜、空调、紫外灯或空气净化装置。

3.3.3培养室设备

培养架、紫外灯或空气净化装置、空调、自动记录温度、湿度计。

4操作流程

4.1接种前准备工作

4.1.1培养基配制和灭菌

以MS培养基为基本培养基，添加琼脂6.0g/L～6.5g/L，蔗糖30g/L，调节PH值为5.6～5.8；

诱导愈伤培养基：MS+BA0.2mg/L～0.5mg/L+2.4-D2.0mg/L～3.0mg/L+NAA0.1mg/L～0.2mg/L；

分化培养基：MS+BA0.5mg/L～1.0mg/L+NAA0.2mg/L；

芽增殖培养基：MS+BA0.1mg/L～0.5mg/L+NAA0.1mg/L～0.2mg/L；

生根培养基为：1/2MS+NAA0.1mg/L～0.3mg/L+IBA0.1mg/L～0.3mg/L。

培养基配制完毕后，分装至组培瓶中。在121℃下高压灭菌15min～20min，并尽快取出使其冷却备

用。

4.1.2超净工作台消毒

接种前半小时用70%酒精喷雾、擦洗超净工作台；然后打开用紫外灯照射20min并通风。

在点燃酒精灯的情况下严禁用酒精喷雾。

4.1.3接种人员的准备

①入无菌室前洗手，洗净指甲中的污物。

②入室时穿戴上经过消毒的工作服、帽子、口罩和鞋子等。

③操作前和操作中经常用70%酒精棉球擦手。

2

DB32/T3104-2016

4.2外植体接种

4.2.1外植体选取和清洗

选择生长健壮、无病虫害的植株作为母株，以其幼嫩的叶片为外植体。

外植体在加有适量洗衣粉的自来水中浸泡后，用自来水冲洗20min～30min。

4.2.2接种工具的消毒

将刀和镊子等接种工具浸入95%酒精中，使用之前进行燃烧灭菌，然后放凉备用。

燃烧时应注意浸入酒精的一端斜向下进行，不可倒置，防止烧伤。

4.2.3外植体的灭菌

将外植体置于已灭菌的超净工作台上，用无菌的吸水纸吸去水分，放入70%酒精中表面灭菌15秒，

然后再用0.1%的升汞灭菌8min～10min，无菌水浸洗3次～5次。

消毒时间应根据生长季节和材料的带菌程度灵活调整，如果接种后污染严重则相应增加灭菌时间。

4.2.4材料切割

将叶片平放在无菌滤纸上进行切割操作，先用解剖刀沿主脉切开叶片，再将两侧纵切成3mm左右宽

的条形，然后横切，使外植体保持3mm左右见方块待用。

4.2.5接种

接种时以左手拿培养瓶，用右手轻轻取下盖子；将培养瓶口靠近酒精灯火焰处，保存瓶口倾斜，然

后用镊子将材料送入瓶中。

接种外植体所用培养基为诱导愈伤培养基。接种时，使接种块和培养基紧密接触，并使其在培养容

器内分布均匀。接种完毕立即盖好瓶盖并作好标记，注明材料名称、接种日期等事项。

接种结束后将组培瓶整齐、均匀摆放在培养架上。

培养期间定期观察培养物的生长情况，并作好记载；如发现污染物，应立即取出，待高压灭菌后清

洗或丢弃。

4.3培养

4.3.1分化培养

愈伤组织生长50d左右可将愈伤组织切割成2mm～3mm的小块，均匀接种于分化培养基表面。

4.3.2增殖培养

将分化的不定芽从愈伤组织上切下，并使芽的基部插入增殖培养基中；一般4周～5周继代一次。

3

DB32/T3104-2016

4.3.3生根培养

将增殖的芽丛切割成单个完整的幼芽，并使其基部插入生根培养基中；一般生根培养3周～4周能

发育出完整的根系，即可用于炼苗和移栽。

4.4炼苗移栽

4.4.1炼苗

移栽前3天，打开根系发育良好组培苗的瓶盖，加注少量无菌水（水深0.5cm左右）炼苗。

移栽前1天，将培养瓶移至温室中接受散射阳光的照射。

4.4.2移栽基质

使用专用育苗基质，提前1天填充穴盘并喷水备用。

4.4.3移栽

取出试管苗，以一手的拇指和食指轻捏茎叶部，在流水下轻轻洗净根部附着的琼脂。一定要尽量

减少对根系的伤害。移栽时每穴栽1苗，栽后及时浇透水。根据季节情况，刚出瓶移栽的小苗应加遮

阳网，光照强度在10000lux～20000lux。

4.4.4消毒

移栽后立即喷施一遍800倍～1000倍的多菌灵、百菌清或托布津等水溶液，以防小苗感病。

_________________________________

4

DB32/T3104-2016

前言

本标准按GB/T1.1-2009《标准化工作导则第1部分：标准的结构和编写》的规定编写。

本标准由江苏省农业科学院提出。

本标准起草单位：江苏省农业科学院。

本标准主要起草人：叶晓青、佘建明、梁丽建、贾新平、邓衍明、孙晓波、汤日圣。

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DB32/T3104-2016

红掌种苗组培快繁技术规程

1范围

本标准规定了红掌种苗组培快繁的设施设备和操作流程。

本标准适用于红掌组培苗的生产。

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的，凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文

件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本标准。

GB/T8321（所有部分）农药合理使用准则

JB/T10594-2006日光温室和塑料大棚结构与性能要求

3设施设备

3.1场地

选择交通便捷、地势平坦、光照充足、通风良好、水电配套、排灌便利的场地进行设施建设。

3.2主要设施

3.2.1准备室

用于玻璃、塑料器皿及其他实验用具的清洗、干燥和保存，药品的称量、溶解、配制，培养基的

配制、分装、包扎和灭菌，以及植物材料的预处理、培养材料的观察分析等。

3.2.2接种室

放置超净工作台，开展植物材料的无菌操作，包括外植体的消毒、接种、培养物的转移和试管苗

的扩繁、生根等。

3.2.3培养室

用于接种材料的无菌培养和观察，一般要求温度在25±2℃，光照强度1500Lux～3000Lux，光照

周期12h/12h（光/暗）。

3.2.4温室

1

DB32/T3104-2016

用于试管苗的炼苗、移栽和生长，根据实际情况可选择玻璃温室或薄膜温室，必须具备夏季可调

节室内温度至32℃以下，冬季可调节室内温度至15℃以上的条件，可以喷水补湿，并且具有良好的防

虫隔离条件。

设施建造按JB/T10594-2006中规定执行。

3.3主要设备

3.3.1准备室设备

蒸馏水器、冰箱、培养箱、天平、电热磁搅拌器、酸度计、高压蒸汽灭菌锅、烘箱。

3.3.2接种室设备

超净工作台（水平送风）、双筒实体显微镜或生物显微镜、空调、紫外灯或空气净化装置。

3.3.3培养室设备

培养架、紫外灯或空气净化装置、空调、自动记录温度、湿度计。

4操作流程

4.1接种前准备工作

4.1.1培养基配制和灭菌

以MS培养基为基本培养基，添加琼脂6.0g/L～6.5g/L，蔗糖30g/L，调节PH值为5.6～5.8；

诱导愈伤培养基：MS+BA0.2mg/L～0.5mg/L+2.4-D2.0mg/L～3.0mg/L+NAA0.1mg/L～0.2mg/L；

分化培养基：MS+BA0.5mg/L～1.0mg/L+NAA0.2mg/L；

芽增殖培养基：MS+BA0.1mg/L～0.5mg/L+NAA0.1mg/L～0.2mg/L；

生根培养基为：1/2MS+NAA0.1mg/L～0.3mg/L+IBA0.1mg/L～0.3mg/L。

培养基配制完毕后，分装至组培瓶中。在121℃下高压灭菌15min～20min，并尽快取出使其冷却备

用。

4.1.2超净工作台消毒

接种前半小时用70%酒精喷雾、擦洗超净工作台；然后打开用紫外灯照射20min并通风。

在点燃酒精灯的情况下严禁用酒精喷雾。

4.1.3接种人员的准备

①入无菌室前洗手，洗净指甲中的污物。

②入室时穿戴上经过消毒的工作服、帽子、口罩和鞋子等。

③操作前和操作中经常用70%酒精棉球擦手。

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DB32/T3104-2016

4.2外植体接种

4.2.1外植体选取和清洗

选择生长健壮、无病虫害的植株作为母株，以其幼嫩的叶片为外植体。

外植体在加有适量洗衣粉的自来水中浸泡后，用自来水冲洗20min～30min。

4.2.2接种工具的消毒

将刀和镊子等接种工具浸入95%酒精中，使用之前进行燃烧灭菌，然后放凉备用。

燃烧时应注意浸入酒精的一端斜向下进行，不可倒置，防止烧伤。

4.2.3外植体的灭菌

将外植体置于已灭菌的超净工作台上，用无菌的吸水纸吸去水分，放入70%酒精中表面灭菌15秒，

然后再用0.1%的升汞灭菌8min～10min，无菌水浸洗3次～5次。

消毒时间应根据生长季节和材料的带菌程度灵活调整，如果接种后污染严重则相应增加灭菌时间。

4.2.4材料切割

将叶片平放在无菌滤纸上进行切割操作，先用解剖刀沿主脉切开叶片，再将两侧纵切成3mm左右宽

的条形，然后横切，使外植体保持3mm左右见方块待用。

4.2.5接种

接种时以左手拿培养瓶，用右手轻轻取下盖子；将培养瓶口靠近酒精灯火焰处，保存瓶口倾斜，然

后用镊子将材料送入瓶中。

接种外植体所用培养基为诱导愈伤培养基。接种时，使接种块和培养基紧密接触，并使其在培养容

器内分布均匀。接种完毕立即盖好瓶盖并作好标记，注明材料名称、接种日期等事项。

接种结束后将组培瓶整齐、均匀摆放在培养架上。

培养期间定期观察培养物的生长情况，并作好记载；如发现污染物，应立即取出，待高压灭菌后清

洗或丢弃。

4.3培养

4.3.1分化培养

愈伤组织生长50d左右可将愈伤组织切割成2mm～3mm的小块，均匀接种于分化培养基表面。

4.3.2增殖培养

将分化的不定芽从愈伤组织上切下，并使芽的基部插入增殖培养基中；一般