植物体细胞杂交的研究进展

植物体细胞杂交的研究进展1.本文概述简要介绍植物体细胞杂交的概念和重要性。植物体细胞杂交是一种将来自不同植物的体细胞融合在一起，形成新的杂种细胞的技术。这一技术对于植物遗传学、育种学以及生物技术领域具有重要的意义，因为它不仅有助于研究植物的遗传特性，还能够创造出具有新性状的植物品种。概述植物体细胞杂交技术的发展历史。自20世纪60年代以来，随着细胞生物学和分子生物学的发展，植物体细胞杂交技术得到了显著的进步。从最初的物理和化学诱导方法，到后来的电融合和激光诱导融合技术，科学家们不断探索和优化体细胞杂交的方法，以提高杂种细胞的生成效率和稳定性。再次，强调当前研究的热点和挑战。尽管植物体细胞杂交技术已经取得了一定的成果，但仍然面临着许多挑战，例如杂种细胞的存活率低、杂种植株的染色体稳定性问题以及杂交后的性状表达不一致等。当前的研究热点主要集中在提高杂交效率、优化杂交后的植株再生体系以及探索新的杂交诱导技术等方面。阐述本文的结构和主要内容。本文将首先回顾植物体细胞杂交的基本原理和方法，然后介绍近年来在该领域取得的重要进展，包括新的诱导技术、杂种细胞的筛选和鉴定方法以及杂种植株的表型和遗传特性分析。文章还将讨论目前存在的主要问题和未来的研究方向，以期为相关领域的研究者提供参考和启示。2.体细胞杂交的技术方法体细胞杂交是一种重要的生物技术手段，它通过将两个不同物种或品种的植物体细胞融合，产生具有双亲特性的杂种植物。这种方法在植物育种、基因工程以及基础研究中具有重要意义。本节将详细介绍体细胞杂交的技术方法，包括融合前处理、融合方法以及融合后的筛选和培养。原生质体制备：通过酶解法（如纤维素酶和果胶酶）去除植物细胞的细胞壁，获得保持活性的原生质体。原生质体纯化：通过离心等方法去除酶解液和未酶解的细胞壁残片，获得纯净的原生质体。原生质体活化：通过高渗溶液处理，使原生质体恢复活性，提高融合效率。化学融合：使用聚乙二醇（PEG）作为融合剂，在高渗环境下诱导原生质体融合。电融合：通过电脉冲诱导原生质体膜破裂和融合。这种方法融合效率高，但对设备要求较高。培养：将筛选出的杂种细胞通过液体悬浮培养或固体培养基培养，诱导其分化成植株。尽管体细胞杂交技术在植物育种中具有重要应用，但仍面临一些挑战，如融合效率低、筛选困难以及再生植株的遗传稳定性问题。未来的研究需要进一步优化融合和培养条件，提高融合效率，同时发展更高效的筛选技术，确保获得的杂种植株具有稳定且有用的遗传特性。体细胞杂交技术为植物育种和基因工程提供了强大的工具。通过不断优化融合前处理、融合方法和融合后的筛选培养技术，可以提高体细胞杂交的成功率和应用价值。未来的研究有望克服现有挑战，使体细胞杂交技术在植物科学和农业生产中发挥更大的作用。3.体细胞杂交的生物学基础植物体细胞杂交（PlantSomaticHybridization）的生物学基础主要涉及细胞融合、遗传重组、细胞再生和分化等过程。这些基础过程不仅揭示了植物细胞杂交的可行性，而且对于理解植物生长发育、遗传改良以及生物多样性具有重要意义。细胞融合是植物体细胞杂交的第一步，也是整个杂交过程的关键。它涉及到两个不同植物细胞的质膜和细胞壁的融合，从而形成一个新的杂交细胞。这一过程通常需要外部刺激，如电脉冲、化学物质（如聚乙二醇）或病毒载体等。细胞融合的机理包括质膜融合、细胞质融合以及随后发生的核融合。质膜融合使两个细胞的质膜结合在一起，细胞质融合使两个细胞的细胞质混合，而核融合则将两个细胞的细胞核融合为一个。细胞融合后，两个不同来源的细胞核必须进行遗传重组，以形成稳定的杂种细胞。遗传重组涉及到DNA的交换和重组，这是通过同源重组、非同源末端连接和微同源介导的重组等机制实现的。这些机制使得杂交细胞能够整合来自两个不同亲本的遗传信息，从而形成具有新遗传特性的细胞。在遗传重组之后，杂交细胞需要通过细胞再生和分化过程形成完整的植物个体。这一过程涉及到细胞分裂、细胞分化和器官发生等生物学过程。细胞再生通常通过组织培养技术实现，如愈伤组织的诱导和芽、根的形成。分化过程则涉及到细胞特化，形成各种不同的细胞类型和组织，最终形成具有新遗传特性的植物个体。植物体细胞杂交不仅能够产生新的遗传组合，而且还能够产生新的遗传特性。这些特性可能包括对环境胁迫的耐受性、对病虫害的抗性、改良的产量和品质等。这些新特性对于植物育种和农业生产具有重要意义。总结起来，植物体细胞杂交的生物学基础主要包括细胞融合、遗传重组、细胞再生和分化等过程。这些过程不仅揭示了植物细胞杂交的可行性，而且对于理解植物生长发育、遗传改良以及生物多样性具有重要意义。4.体细胞杂交在植物育种中的应用植物育种中，体细胞杂交技术的应用具有重要意义。它克服了传统有性杂交的局限性，如远缘杂交的不亲和性、双亲花期不遇、雌雄不育等问题。体细胞杂交技术可以实现不同物种甚至不同属之间的杂交，从而创造出新的植物品种。核质替换：通过体细胞杂交技术，可以实现植物细胞核和细胞质的替换，从而获得具有新性状的植物品种。细胞质杂种的获得：体细胞杂交技术可以用于获得具有不同细胞质的杂种植物，这些杂种植物可能具有更好的抗病性、抗逆性等特性。远缘杂交创造新物种：通过体细胞杂交技术，可以实现远缘植物之间的杂交，从而创造出新的植物物种。细胞器的互作研究：体细胞杂交技术还可以用于研究植物细胞器之间的相互作用，从而为植物育种提供新的思路和方法。一个典型的例子是马铃薯和番茄的体细胞杂交，通过这种技术，地上可以结番茄，地下可以长马铃薯，实现了两种作物的优势互补。体细胞杂交技术在植物育种中的应用前景广阔，有望为农业生产带来新的突破。5.体细胞杂交面临的挑战与问题a.杂交效率低下：讨论影响植物体细胞杂交成功率的技术因素，如细胞融合和再生技术的不稳定性。b.细胞融合的选择性：分析如何提高特定细胞融合的选择性，以及现有技术的局限性。c.再生能力限制：探讨不同植物种类在再生能力上的差异，以及这些差异如何影响杂交结果。a.基因组兼容性：讨论植物基因组间的兼容性问题，以及如何克服这些障碍以实现成功的杂交。b.遗传稳定性：分析杂交植物在遗传上的稳定性，以及如何确保杂交后代的遗传稳定性。c.功能基因组表达：探讨杂交植物中功能基因组表达的调控机制及其对植物性能的影响。a.商业化应用：讨论植物体细胞杂交技术在商业化应用中的限制和挑战。b.环境和伦理问题：分析植物体细胞杂交技术对环境可能产生的影响，以及相关的伦理问题。c.法规和政策限制：探讨不同国家和地区在植物体细胞杂交技术方面的法规和政策限制。a.技术创新：提出技术上的创新方向，以提高杂交效率和成功率。b.基础研究：强调加强基础研究，以更好地理解植物体细胞杂交的生物学机制。c.应用拓展：讨论如何拓展植物体细胞杂交技术的应用范围，以解决农业生产中的实际问题。通过这个大纲，可以确保文章的这一部分内容全面、深入，并且具有逻辑性和条理性。每个小节都可以扩展成一段或几段，详细阐述相关挑战和问题，以及可能的解决方案或未来研究方向。6.未来发展趋势与展望技术的进一步创新与优化：随着分子生物学和细胞生物学技术的不断发展，植物体细胞杂交技术有望得到进一步的优化。例如，通过基因编辑技术精确调控参与细胞融合的基因，提高杂交效率。利用合成生物学方法，设计新型的融合系统，可能为植物体细胞杂交带来革命性的变化。拓宽杂交亲本的种类和范围：目前植物体细胞杂交主要在近缘物种间进行。未来，通过改进杂交技术和理解杂交障碍的分子机制，有望实现远缘物种甚至不同界植物之间的杂交，这将极大地扩展植物遗传资源的利用范围。功能基因组学在杂交中的应用：随着基因组学和转录组学技术的发展，将杂交过程中的基因表达变化与杂交结果相关联，可以更深入地理解杂交的分子机制。这种理解对于提高杂交成功率、改善杂交后代的表现具有重要意义。杂交技术在农业和生物工程中的应用：植物体细胞杂交技术在作物改良、生物制药、生态环境修复等领域具有广泛的应用前景。未来，通过杂交技术培育出的新作物品种，可能具有更好的抗病性、适应性以及更高的产量和品质。伦理与环境保护的考量：随着植物体细胞杂交技术的发展，其可能带来的生态安全和伦理问题也需要被重视。例如，杂交植物可能对自然环境造成影响，杂交过程中的基因流动也可能带来不可预见的生态风险。未来杂交技术的发展应兼顾环境保护和伦理考量。植物体细胞杂交作为一种充满潜力的生物技术，其未来的发展前景是广阔的。随着技术的不断进步和对杂交机制更深入的理解，我们有理由相信，植物体细胞杂交将在未来的农业、医药和环境修复等领域发挥更加重要的作用。这一过程也伴随着伦理和环境挑战，需要在科学研究和技术应用中予以充分考虑。参考资料：体细胞杂交又称体细胞融合，指将两个原生质体不同的体细胞融合成一个体细胞的过程。融合形成的杂种细胞，兼有两个细胞的染色体。体细胞是生物体除生殖细胞外的所有细胞。将从身体分离的体细胞做组织培养进行遗传学研究的学科称为体细胞遗传学（somaticgenetics）。体外培养细胞可人为控制或改变环境条件，并可建立细胞株，长期保存，进行各种正常和病理研究。与基因定位有关的是体细胞杂交（somaticcellhybridization）。细胞杂交又称细胞融合（cellfusion），是将来源不同的两种细胞融合成一个新细胞。大多数体细胞杂交是用人的细胞与小鼠、大鼠或仓鼠的体细胞（hybridcell）进行杂交。细胞融合后，要进行异核体的筛选。所用方法是：①根据双亲细胞的形态特征，用不同荧光染料标记，人工挑选或用荧光激活细胞分拣机分离。或通过显微操作直接挑选。②在合适的选择压下，只允许杂种细胞生长，淘汰双亲和同源融合细胞。如生长激素自主选择、代谢互补选择、白化互补选择、营养缺陷型互补选择、药物抗性互补选择等。融合后的杂种细胞的异核体，多数情况下在第一次有丝分裂期即发生两个亲本核的融合，如果两个核在杂种细胞中位置较近，也可能在有丝分裂前就发生融合。如果两个核不融合，有可能发育成嵌合体。如果两核既相互辅助又相互排斥，从而导致染色体丢失，经常还会伴随着染色体重排、染色体碎片、染色体环、染色体桥等形成。融合后的两个原生质体的细胞质，可能均匀混合，细胞器也均匀分布，因此双方的叶绿体及线粒体基因都得到遗传。也有人认为在两个原生质体融合时，质体会随机丢失。融合后的细胞是否为杂种，多用染色体形态比较法和同工酶分析法来鉴定，也有用花器官的形态颜色来检测的。一般来说，植物有性杂交只能在同种或在系统分类上相近种的亲本间进行，核性状按孟德尔遗传规律分离，而核外基因则大多数为母性遗传。体细胞杂交能克服有性杂交的配子不亲合性，获得一些含有另一亲本非整倍体的杂种或胞质杂种。它们的遗传变异范围极广，大大丰富了育种的原始材料，从而创造出自然界中没有的新物种。如马铃薯与番茄融合得到的薯番茄和番茄薯。没有壁的裸露细胞，有利遗传操作，转移部分基因或基因组，已成功的如胡萝卜一S欧芹融合。因此体细胞杂交在物种改良上有着广阔前景。另外甘蓝与白菜融合，人工合成的甘蓝型欧洲油菜，在实验室中短时间内重复出现了自然界的进化过程，使芸苔属的三角进化关系又一次得到验证。体细胞杂交技术也为细胞生物学研究及遗传学分析提供了一个新的研究途径。新产生的融合细胞称为杂种细胞（hybridcell），含有双亲不同的染色体。杂种细胞有一个重要的特点是在其繁殖传代过程中出现保留啮齿类一方染色体而人类染色体则逐渐丢失，最后只剩一条或几条，其原因至今不明。这种仅保留少数甚至一条人染色体的杂种细胞正是进行基因连锁分析和基因定位的有用材料。由于人和鼠类细胞都有各自不同的生化和免疫学特征，Miller等运用体细胞杂交并结合杂种细胞的特征，证明杂种细胞的存活需要胸苷激酶（TK）。但凡含有人第17号染色体的杂种细胞都因有TK活性而存活，反之则死亡。从而推断TK基因定位于第17号染色体上。这是首例用细胞杂交法进行的基因定位。由此可见，研究基因定位时，由于有杂种细胞这一工具，只需要集中精力于某一条染色体上，就可找到某一基因座位。辐射性杂交(radiationhybridRH)制图技术是1975年由Goss和Harris创立的一种体细胞杂交技术，适用于构建人类基因组长范围内的高分辨率连续物理图谱。成熟的辐射性杂交制图技术是由CoxVR等人于1990年建立的。利用高剂量的射线将候选染色体打断成若干片段，含有这种片段的细胞可与仓鼠细胞形成杂交克隆。在这种杂交中，人类染色体片段被插入到仓鼠染色体的中间部分，因此大部分克隆片段在进行有丝分裂时处于稳定的状态。利用类似于遗传重组原理和最大似然性的统计学方法来计算存在于DNA片段上的多态性或非多态性标记之间的断点频率，以此估计标记之间的距离，并建立人类基因组拷贝库---体细胞杂交系统。可根据不同要求构建出断裂程度不同的多套拷贝，从而得到不同分辨率的放射杂交图。辐射性杂交是建立在受到射线照射的供体细胞与非放射线处理的受体细胞融合基础上的一种体细胞遗传学方法，是利用两个标记之间被射线打断的概率来计算标记之间距离，通过类似于减数分裂连锁制图的方法来确定标记之间的顺序。G3嵌板的产生→确定STSs→PCR体系及反应条件→构建RH图谱.荧光原位杂交(FISH)法和辐射杂种细胞系(RH)技术是国际上最常用的基因定位的两种方法，各有优缺点。FISH可以定位基因组中多个同源位点，结果直观、可靠，而RH法则很困难。但是FISH法检测步骤繁杂，尤其受探针大小的影响较大，2kb以下的cDNA序列很难定位，而且结果需要有经验的细胞遗传学家进行分析。RH法简单易行，定位精度高，适合小于lkb--2kb以下的序列，根据统计学方法可直接定位。其结果也便于不同实验室间比较。和其他作图法相比，RH作图法是依赖于辐射引起的断点而不是靠减数分裂重组得到的断点，是一种完全独立的方法，所以是一个互补的作图方法，可利用所有不同的STSs，具有巨大的DNA补充潜力，从而有利于整合不同的遗传和转录图以及所有基因组位标(无名序列、中心粒和端粒)。缺点但是RH法也受到某些自身条件的限制，RH嵌板中每个杂交克隆均包括仓鼠和人的基因组DNA，可以看作是在仓鼠基因组DNA背景下相区别。如有些基因无法定位的原因即在于它的序列包括阅读框架以及3，UTR区域与仓鼠的相似性高达90%以上。做ESTs或全长cDNA定位的引物为cDNA序列，而RH法是在基因组DNA上扩增出相应的片断，由于内含子序列的存在，扩增结果与引物设计的部位直接有关，一般应选用3，UTR部位的序列。还应指出，用RH法能否成功定位，依赖于该基因所在染色体区域上合适位标的存在。如果现有的RH图中此区域分布的合适位标过少，可改用位标位点多的嵌板。因此随着今后RH图精度的提高，越来越多的STSs被放置于染色体上，有望弥补这个缺陷。辐射性杂交技术是继荧光原位杂交后新近建立的染色体定位方法，RH作图法提供了一种联系物理图和遗传图的方法，已成为当今构建人类基因组大尺度、高密度、连续的染色体图的常用方法之一。其用途主要有：EST定位、基因克隆、基因组作图、测定距离、寻找新基因等。植物体细胞杂交是在原生质体培养技术的基础上，借用动物细胞融合方法发展起来的一门新型生物技术。植物体细胞杂交的过程包括原生质体的制备，原生质体融合的诱导，杂种细胞的筛选和培养，以及杂种植株的再生与鉴定等环节。下面以烟草和大豆的体细胞杂交为例，简要介绍植物体细胞杂交的过程。原生质体制备选取烟草植株上的幼嫩叶片和培养好的大豆细胞，用酶解法制备原生质体。烟草的原生质体呈绿色，大豆的无色，在显微镜下很容易将二者区别开来。原生质体融合取等量的烟草和大豆的原生质体混合后，加入聚乙二醇溶液。在显微镜下观察，可以看到原生质体相互黏集在一起。隔一段时间后，加入高钙、高pH的溶液，这时原生质体才开始融合。原生质体融合包括膜融合和核融合两个过程。诱导融合只能诱导细胞膜的融合，两个核的融合是在杂种细胞第一次有丝分裂时进行的。杂种细胞的筛选和培养烟草与大豆的原生质体融合后，将原生质体转移到适当的培养基上培养，使原生质体再生出细胞壁。这时，在细胞混合物中，不仅有烟草—大豆杂种细胞，还有烟草细胞、大豆细胞、烟草—烟草细胞、大豆—大豆细胞。杂种细胞的筛选，可以用机械方法，也可以用生理学或遗传学的方法。以机械方法为例，根据两种亲本细胞在形态、色泽上的差异，将细胞分别接种在带有小格的培养皿中，每个小格中约放1～3个细胞。在显微镜下找出杂种细胞，并且标定位置。等杂种细胞分裂成细胞团时，转移到培养皿中，培养成愈伤组织。杂种植株的再生与鉴定杂种植株的再生是指从愈伤组织培养出杂种植株的过程。由于烟草和大豆分别属于茄科和豆科，二者的原生质体融合后，至今只能长成杂种愈伤组织，还不能分化，因此谈不上杂种植株的再生和鉴定。对于能够再生出杂种植株的，如烟草—海岛烟草、白菜—甘蓝、胡萝卜—羊角芹等，长出的植株究竟是不是杂种，还需要经过鉴定才能确定下来。杂种植株的鉴定方法有形态学方法、生化方法(如电泳)、细胞学方法(如染色体组型分析)、分子生物学方法(如分子杂交)等了解用聚乙二醇PEG方法诱异同种植物原生质体融合的技术，并能根据新本原生质体的形态樗来鉴别杂种细胞。不同种植物的原生质体可在人工诱导条件下融合，所产生的杂种细胞，即异核体经过培养可再生新壁，分裂形成愈伤组织，进而分化产生杂种植株。由于进行融合的原生质体来自体细胞，故该项技术也叫体细胞杂交。原生质体融合能使有性杂交不亲合的植物种间进行广泛的遗传重组，因而在农业育种上具有巨大的潜力。在植物遗传操作研究中也是关键技术之一。人工诱导原生质体融合可使用物理学方法，如运用细胞融合仪，在电场诱因导下实现融合，然而至今广为使用的仍是聚乙二醇（PEG）溶液引起原生质体的聚集和粘连，然后用高pH钙溶液相处理的化学方法（Kao等，1974）。该法应用分子量至为1500~6000的聚乙二醇（PEG）溶液引起原生质体的聚集和粘连，然后用高pH的钙溶液稀释时，就产生了高频率的融合，融合的频率和省略常与所有PEG的分子量、浓度，作用时间，原生质体的生理状态与密度以及操作者的细心程度有关。2．将收集的两种不同材料的原生质体分别悬浮在16mol/L的CaCl2·2H2O（pH8~2）原生质体密度调整为2×105/ml左右（用血细胞计数板统计原生质体密度）。4．用刻度吸管将混合的原生质体悬液滴在直径为60mm的平皿中，每皿滴7~8滴，每滴约1ml。然后静置10in，使原生质体巾在皿底上，形成一薄层。（应有3~5个平皿的重复）。5．用吸管将等量的PEG溶液缓慢地加在原生质体液滴上，再静置10~15min。此时可取一个平皿在倒置显微镜上观察原生质体间的粘连。6．用刻度吸管向原生质体液滴慢慢地加入高pH、商钙稀液。第一次加5ml，第2次1ml，第4次各2ml，每次之间间隔5min。将平皿稍微倾斜，吸去上清液，再缓缓加入4ml稀释液。5min后，再倾斜平皿，吸去上清液注意吸去上清液时勿使原生质体漂浮起来。用蜡膜密封平皿。置260下进行24h暗培养，然后转到弱光条件下培养。1．在倒置显微镜下观察异源融合。在培养3天以内，可根据双新原生质体的形态特征来鉴别异核体。因为来自叶肉组织的原生质体具有明显绿色叶绿粒，而来自培养细胞的原生质体无色，但具浓密原生质丝，并可看到显示的核区。植物体细胞杂交（plantsomatichybridization）,又称原生质体融合（Protoplastfusion）是指将植物不同种、属，甚至科间的原生质体通过人工方法诱导融合，然后进行离体培养，使其再生杂种植株的技术。植物细胞具有细胞壁，未脱壁的两个细胞是很难融合的，植物细胞只有在脱去细胞壁成为原生质体后才能融合，所以植物的细胞融合也称为原生质体融合。1960年，Cocking用酶法制备高等植物原生质体首次获得成功；1970年，Power首次用硝酸钠进行为诱导剂进行了较大规模的原生质体诱导融合；1971年，Nagata和Takebe首次从离体烟草原生质体培养中获得再生完整植株；1972年，Carlson首次获得粉蓝烟草和郎氏烟草的细胞杂种，这也是第一个植物细胞杂种；1974年，Kao将聚乙二醇诱导融合法应用于植物细胞融合并建立了相应的融合技术；1978年，Melchers获得了第一个属间细胞杂种（番茄+马铃薯）；1981年，Zimmerman发明了电融合仪，并首次提出了电融合概念；1991年，R.Wiegand和R.W.Steubing等利用光镊将大鼠的B-淋巴细胞与骨髓瘤细胞对接，形成预杂种，再利用UV激光微束照射，使膜消失并完全融合，形成杂交细胞。对称融合（symmetricfusion）－即两个完整的细胞原生质体融合。非对称融合（asymmetricfusion）－利用物理或化学方法使某亲本的核或细胞质失活后再进行融合，它可以分为几种：物理方法常采用射线处理，如射线、射线等，它们能使细胞核失活；还有离心，振动，电激等。化学处理常用的试剂有聚乙二醇（PEG）诱导融合，核失活－碘乙酰胺（IOA）、碘乙酸(Iodoacetate)；质失活－罗丹明（一种能够抑制线粒体的氧化磷酸化过程而达到失活作用的亲脂染料）将植物细胞A与植物细胞B用纤维素酶和果胶酶处理，得到不含细胞壁的原生质体A和原生质体B，运用物理方法或是化学方法诱导融合，形成杂种细胞，再利用植物细胞培养技术将杂种细胞培养成杂种植物体。①杂交时间：植物细胞杂交是从细胞融合开始，到培育成的新植物体结束。b.原生质体融合：膜融合（高钙、高pH诱导融合）、核融合（杂种细胞第一次有丝分裂时融合）PEG诱导融合的特点：其优点是融合成本低，勿需特殊设备；融合子产生的异核率较高；融合过程不受物种限制。其缺点是融合过程繁琐，PEG可能对细胞有毒害。PEG的作用机理：Kao等认为，由于PEG分子具有轻微的负极性，故可以与具有正极性基团的水、蛋白质和碳水化合物等形成H键，从而在原生质体之间形成分子桥，其结果是使原生质体发生粘连进而促使原生质体的融合；PEG能增加类脂膜的流动稀释液：A液（g/100ml）pH0B液（g/100ml）pH5与PEG融合比较起来，电融合有三大优点：一是不存在对细胞的毒害问题；二是融合效细胞膜的接触：当原生质体置于电导率很低的溶液中时，电场通电后，电流即通过原生质体而不是通过溶液，其结果是原生质体在电场作用下极化而产生偶极子，从而使原生质体膜的击穿：原生质体成串排列后，立即给予高频直流脉冲就可以使原生质膜击穿，从而关于融合参数：电融合中的主要参数包括交流电压、交变电场的振幅频率、交变电场的原生质体质量对细胞的融合起着至关重要的作用，高质量的原生质体是细胞融合如果细胞分裂而核不发生融合，在以后的发育过程中就会有两种结果，一是细胞分裂几次以后即停止生长从而导致死亡；二是在发育过程中某一亲本的细胞核部分或全部丢失。如果这样就会产生几种情况：A细胞+B细胞质；A细胞+B细胞质和部分染色体或基因。由于染色体的部分丢失，常常使某个亲本的部分或个别基因与另一亲本的染色体发生整合，其结果是实现了亲本间的基因转移。基因转移通常是在后代中某些性状得以表达，有体细胞杂种后代在遗传上常常不稳定，这可能涉及到多方面的因素，如亲缘关系的远②优点：克服远缘杂交不亲和的障碍，扩大杂交亲本范围，培育新优良品种。③举例：“白菜-甘蓝”同白菜相比，具有生长期短，耐热性强，和易储藏等优点。植物体细胞胚发生是植物发育生物学和细胞生物学领域的重要研究课题。它涉及到从一个单一的植物细胞如何发展成为一个完整的胚胎的过程，这一过程涉及到复杂的细胞分裂、分化和基因表达调控。本文将概述植物体细胞胚发生的细胞生物学研究进展，并讨论未来可能的挑战和研究方向。植物体细胞胚发生涉及一系列复杂的分子和生化过程。近年来，利用基因组学、转录组学和蛋白质组学技术，科学家们已经鉴定出许多