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黄顶菊的化感作用

黄顶菊的生物学特征:黄顶菊;英文名称:yeotoe;1)它是科其布彻的一级杂草。它来自印度支那半岛、墨西哥和美国南部。在那之后,它传播到了非洲的埃及和南非、英国和法国、澳大利亚和亚洲的日本和其他国家。2001年在衡水湖首次发现。2005年至2006年在河北省大面积扩散。株高25~260cm,茎直立,常带紫色,被微绒毛;叶交互对生,亮绿色,长5~12(~18)cm,宽1~2.5(~7)cm,无毛或密被短柔毛,披针状椭圆形,具锯齿或刺状锯齿,多数叶具0.3~1.5cm长的叶柄,叶柄基部近于合生,茎上部叶片无柄或近于无柄;头状花序多数于主枝驻分枝顶端密集成蝎尾状聚伞花序;总苞长圆形,具棱,长约5mm,黄绿色,总苞片3(~4),内凹,先端圆或钝,小包片1~2;边缘小花花冠短,长1~2cm,黄白色,舌片不突出或微突出于闭合的小苞片片外,直立,斜卵形,先端尖,长约1mm或较短,盘花(2~)3~8枚,花冠长约2.3mm,冠筒长约0.8mm,漏斗状,裂片长约0.5mm,先端尖;花药长约1mm;盘花的瘦果长约2mm,边缘花的瘦果较大,成熟早,长约2.5mm,倒披针形或近于棒状,无冠毛。花果期夏到秋,晚生的到初冬仍能生长存活,并开花结果。我们于2006年11月22日前去衡水湖,仍旧见到开花的黄顶菊。因此,黄顶菊的繁殖力很强,花期长,从6月~11月,8~9月为盛花期,有的整株花多达上万朵,花粉量大,提高了传粉和授粉的概率;种子数目多,提高了延续后代的概率。1小盘子思想培养模式滤纸,培养皿,培养箱,黄顶菊植株,量筒,滴管,烧杯,小盘子(培养皿不够),天平,剪子,狗尾草、绿豆、苋菜、藜、紫穗槐、芝麻种子,直尺2提取方法培养皿滤纸法,水浸提取法。3黄顶菊提取物的制备我们分别对黄顶菊的根、茎、叶、花水提取液进行化感研究。于2006年11月22日在衡水湖观光码头采集仍然生长的黄顶菊,此时黄顶菊高20~40cm,取回在本校生物实验室对它的根、茎、叶、花进行分离,称重后,分别剪碎,放入贴有相应标签的烧杯,按每100g浸泡于400ml蒸馏水中的比例,用量筒量取相应体积的蒸馏水倒入烧杯中,浸泡24h后,用双层纱布过滤两次后得到黄顶菊的提取母液,倒入贴有相应标签的磨口瓶中,放入冰箱4℃保存备用。配制不同浓度的黄顶菊浸提液,根据体积比,将母液分别配成不同浓度的黄顶菊提取液,与蒸馏水对照。4不同浓度黄顶菊种子发芽率试验发芽率=(发芽种子总数/供试种子总数)×100%(1)用黄顶菊叶子提取液,配成原液的30%、50%、70%,与蒸馏水对照,取苋菜种子,每50粒为一组,每个浓度做5组。放入烧杯中浸种24h后,放入双层滤纸的培养皿中,加入相应浓度的提取液浸过种子三分之一,放入培养箱,调到20℃进行培养。每天记录发芽数。(2)黄顶菊根、茎、叶的提取液1∶1∶1混合,用混合液做原液,配成10%、50%、100%三个浓度,用蒸馏水作对照。狗尾草、藜种子50~60粒为一组,每个浓度做5组,放入相应浓度的提取液中浸种24h后,放入培养箱中,调到28℃进行培养。每天记录发芽种子数,到27日停止萌发,计算发芽率。(3)黄顶菊茎、叶的提取液1∶1混合,用混合液做原液,分别配成10%、50%、100%三个浓度,与蒸馏水作对照。取绿豆、芝麻,50粒为一组,每个浓度做5组,在不同浓度的浸提液中浸种24h,1月2日放入双层滤纸的培养皿中,在培养箱中培养,温度调至28℃每天记录发芽数。4结果4.1黄顶菊提取物对种子萌发的影响黄顶菊根、茎、叶提取液对处理下狗尾草、藜的种子发芽率显著降低如图1。4.2黄顶菊叶提取物对幼苗生长的影响黄顶菊叶的提取液处理下狗尾草、苋菜的根的长度随黄顶菊叶提取液浓度增加而减小(表2,表3中为平均值,单位为cm)。5不同浓度黄顶菊种子萌发和幼苗生长的影响黄顶菊提取液可以降低种子发芽率(图1),胚根的长度(见表2、3),提取液浓度越高抑制作用越强。种子的萌发对物种更新至关重要,种子发芽率降低可能会降低植物在群落中的多度。从图1中可见,黄顶菊叶的提取液在100%对狗尾草抑制作用最强,几乎不萌发,50%的黄顶菊提取液对藜的抑制作用大于狗尾草。黄顶菊提取液对这几种杂草种子的萌发都有抑制作用。黄顶菊叶的提取液中化感物质对胚根生长也有抑制作用,从表2、3可以看出,各浓度处理种子萌发后长出的幼苗,胚根均小于对照。胚根发育迟缓,导致植株肥小、瘦弱,影响其对光的竞争,这些均会直接影响未来植株的生长发育及其在群落中的地位和作用。通过化感作用黄顶菊抑制其它植物种子萌发和幼苗生长,使其在竞争中处于优势地位。通过对衡水湖周围黄顶菊的生长情

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