醋酸纤维薄膜电泳原理步骤详细

第一页，共三十三页，编辑于2023年，星期二讲课内容

醋酸纤维素

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醋酸纤维薄膜的特点

2

影响电泳结果的因素

3

血清蛋白醋酸纤维素薄膜电泳

4第二页，共三十三页，编辑于2023年，星期二一、醋酸纤维素（Celluloseacetate）

是纤维素醋酸酯(acetateesterofcellulose)，由纤维素的羟基进行乙酰化后制得，将它溶于有机溶剂涂抹成均匀的薄膜，待有机溶剂挥发后，即为白色不透明的醋酸纤维薄膜厚度：0.15mm第三页，共三十三页，编辑于2023年，星期二MagnificationofCelluloseAcetatefilter

第四页，共三十三页，编辑于2023年，星期二讲课内容

醋酸纤维素

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醋酸纤维薄膜的特点

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影响电泳结果的因素

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血清蛋白醋酸纤维素薄膜电泳

4第五页，共三十三页，编辑于2023年，星期二二、醋酸纤维薄膜的特点

CharacteristicsofCelluloseAcetateMembrane

1.吸附作用小2.电渗(electroosmosis)作用小3.需加样量少4.亲水性较小

第六页，共三十三页，编辑于2023年，星期二血清蛋白质各组分的相对分子重量及等电点

MolecularweightandisoelectricpointofserumproteinsserumproteinMW

pIAlb12

6624813000020000013000001500000

4.865.025.025.126.8～7.3

第七页，共三十三页，编辑于2023年，星期二Amidoblack10B第八页，共三十三页，编辑于2023年，星期二氨基黑10B染色洗脱法结果蛋白组分

平均值（%）

参考范围

（%）Alb1265.593.126.169.0917.4057.45～71.731.76～4.484.04～8.286.79～11.3911.85～22.97第九页，共三十三页，编辑于2023年，星期二PonceauS第十页，共三十三页，编辑于2023年，星期二丽春红S染色扫描法结果

蛋白组分

g/L

占蛋白百分数（%）

Alb

35～5257～681

1.0～4.01.0～5.72

4.0～8.04.9～11.2

5.0～10.07.0～13

6.0～13.09.8～18.2第十一页，共三十三页，编辑于2023年，星期二Schematicrepresentationofaproteinelectrophoresis

第十二页，共三十三页，编辑于2023年，星期二几种疾病的蛋白电泳变化

Abnormalserumproteinelectrophoresis病名

Alb

1

2

肾病肝硬化原发性肝癌多发性骨髓瘤慢性炎症无丙种球蛋白症双白蛋白血症↓↓↓↓↓↓↓

↑↓AFP

↑↑↑↓

↑

↑-桥

↑

↓↑↑↑↑↑↑↓↓

第十三页，共三十三页，编辑于2023年，星期二第十四页，共三十三页，编辑于2023年，星期二-桥第十五页，共三十三页，编辑于2023年，星期二第十六页，共三十三页，编辑于2023年，星期二双白蛋白血症第十七页，共三十三页，编辑于2023年，星期二讲课内容

醋酸纤维素

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醋酸纤维薄膜的特点

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影响电泳结果的因素

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血清蛋白醋酸纤维素薄膜电泳

4第十八页，共三十三页，编辑于2023年，星期二三、影响电泳结果的因素

Factorsaffectingresults1.

电泳图谱不齐①点样时血清点加不均匀②薄膜局部干燥③电泳时供给薄膜的液量不均匀或过少④缓冲液变质⑤电泳时薄膜位置不正,与电流方向不平行

第十九页，共三十三页，编辑于2023年，星期二2.电泳图谱分离不清①标本加量过多②电流过低③薄膜结构过分致密，透水性差④薄膜表面干燥第二十页，共三十三页，编辑于2023年，星期二3.

电泳速度慢①电流过低②供给薄膜的液量不足③电泳时温度过低④缓冲液离子强度过高⑤薄膜中杂质多第二十一页，共三十三页，编辑于2023年，星期二4.

白蛋白（Albumin)区带中间部分不着色，染色不足可能为染料使用过久或加血清(Serum)过多5.γ球蛋白(γ-globin)向反方向移动主要因为电渗（electro-osmosis）现象可升高缓冲液液面或加大电流量加以改进，并注意两侧电泳槽内缓冲液液面是否在同一水平。第二十二页，共三十三页，编辑于2023年，星期二讲课内容

醋酸纤维素

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醋酸纤维薄膜的特点

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影响电泳结果的因素

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血清蛋白醋酸纤维素薄膜电泳

4第二十三页，共三十三页，编辑于2023年，星期二血清蛋白质醋酸纤维薄膜电泳

Separateserumproteinincelluloseacetatemembraneelectrophoresis

第二十四页，共三十三页，编辑于2023年，星期二[原理]CAME是以醋纤膜（CAM）作支持物的一种区带电泳技术。将血清样品点样于醋纤膜上，在pH8.6的缓冲液中电泳时，血清蛋白质均带负电荷移向正极。由于血清中各蛋白组分等电点不同而致表面净电荷量不等，加之分子大小和形状各异，因而电泳迁移率不同，彼此得以分离。Ionshavedifferentmigrationratesdependingontheirtotalcharge,size,andshape,andcanthereforebeseparated.

第二十五页，共三十三页，编辑于2023年，星期二EQV=————6r

第二十六页，共三十三页，编辑于2023年，星期二[器材和试剂]1.器材（1）醋酸纤维薄膜（8×2mm）（2）点样器（3）染色皿，漂洗器，镊子（4）722型分光光度计（5）电泳仪：直流电源整流器，水平电泳槽2.试剂（1）巴比妥缓冲液（pH8.6I=0.06）（2）氨基黑10B染色液（3）漂洗液：95%乙醇、冰醋酸、H2O（4）洗脱液：0.4mol/LNaOH第二十七页，共三十三页，编辑于2023年，星期二[操作]1.将电泳槽置于水平平台上。将缓冲液注入电泳槽中两边的电极槽缓冲液的高度要在同一点平面上2.在醋纤膜一端欲点样处作好标记，然后将薄膜放进缓冲液中，湿润速度按膜吸收缓冲液的快慢而定，应让其自然浸润3.将充分浸透（指膜上没有白色斑痕）的薄膜取出，用滤纸吸去膜上过多的缓冲液4.用加样器蘸取血清（约5ul）,垂直印在CAM粗糙面上，待样品全部渗入薄膜内后，移开点样器第二十八页，共三十三页，编辑于2023年，星期二醋酸纤维素薄膜规格及点样位置示意图第二十九页，共三十三页，编辑于2023年，星期二5．电泳(Electrophoresis)（1）加样后，将薄膜条架于支架两端，无光泽面朝下（点样面），点样侧置于阴极端，膜两侧分别塔上纱布，纱布一端垂入缓冲液中。薄膜应位正，平直无弯曲，加上槽盖平衡5分钟后通电电泳（2）正确连接电泳槽与整流器对应的正负极。开启电源通电。电压10~15V/cm膜总宽。电泳40~60分钟，泳动距离约达3.5~4cm时即可断电第三十页，共三十三页，编辑于2023年，星期二醋酸纤维素薄膜电泳装置示意图第三十一页，共三十三页，编辑于2023年，星期二6.染