渔业生物环境调查实验操作流程

渔业生物环境调查实验操作流程第一页，共二十七页，编辑于2023年，星期日提纲一.实习目的二.实习内容三.采样点布设四.标本固定保存药品五.实习器材及使用方法六.样品采集及分析方法七.实习报告的书写第二页，共二十七页，编辑于2023年，星期日一.实习目的1.巩固课堂教学理论知识、丰富教学内容，达到理论与实际相结合的目的。2.初步掌握一般水生生物的调查研究方法，培养独立工作能力的目的。3.使学生学会水生生物标本的采集、固定和鉴定方法，扩大知识范围。4.增强团队协作能力.第三页，共二十七页，编辑于2023年，星期日二.实习内容1.了解湖泊的一般形态和性质：

如湖泊四周的环境、面积和水深、底质、水源、进出水口的位置及数量、水温、pH、透明度及水色等。2.对湖泊的生物环境展开定性定量调查.

浮游生物、底栖生物的定性定量，叶绿素测定等3.对湖泊的理化环境因子进行测定.

如水深、水温、pH、透明度及水色等。4.对湖泊周边水域的生物多样性展开调查。

如水生微管束植物、水生昆虫等。第四页，共二十七页，编辑于2023年，星期日三.采样点布设第五页，共二十七页，编辑于2023年，星期日四.标本固定保存药品1.福尔马林(一般4%)

福尔马林即为36％的甲醛溶液，

4％的福尔马林溶液即96ml水+4ml福尔马林配制而成。2.碘液(鲁哥氏碘液Lugel’s)（15％）

6gKI+4gI2

配置成100ml溶液，碘液固定的标本形态构造保存较好。但易挥发，故最好在加入2－4％的福尔马林固定。3.苦味酸固定液(波恩氏固定液)100ml蒸馏水中溶入苦味酸晶体使之成饱和液，取75ml+25ml福尔马林+3ml冰醋酸即成。固定的标本组织保存较佳，细胞变态少。4.酒精(70-80%)

底栖动物如螺、蚌、虾、蟹等最好用70－80％的酒精固定保存。第六页，共二十七页，编辑于2023年，星期日五.调查所需器材及使用方法1.透明度盘

8.浮游植物计数框2.表面水温计

9.浮游动物计数框3.浮游生物网

10.目测微尺和台测微尺4.采水器

11.微量移液器5.三角拖网12.扭力或托盘天平6.采泥器

13.溶氧测定仪7.浮游生物浓缩器14.便携式pH计第七页，共二十七页，编辑于2023年，星期日1.透明度盘（萨氏盘）

用厚铁皮剪制成直径为20cm的圆板，板的一面用黑、白油漆涂成相互垂直、黑白相间的四等分，中心装一铁环，系上做好刻度标记的绳子。另一面加一个铅锤。

使用方法：

在背光处平放入水中，逐渐下沉至刚好不能看清盘面的白色时，记取其尺度就是透明度。用厘米表示。第八页，共二十七页，编辑于2023年，星期日2.表面水温计在湖泊水深10米以内测定。构造：

是由一支普通水银温度计安装在一个金属外壳内构成，外壳下部是一个直径为5厘米、高6厘米的金属筒，筒的上部有孔，水可以进出。测定方法：

把栓好标有刻度绳子的水温计放入需测的深度，5分钟后，提取读数，要求正确读出0.1度，温度表离水面到读完时间不超过20秒。第九页，共二十七页，编辑于2023年，星期日主要用来捞取浮游生物构造：

圆锥形，口径约20cm，网长60－90cm，用直径为4mm的铜条作网圈支持网口。网衣用筛绢缝制。网头用金属套（铜或铝）结在网底。使用方法：

关闭网底开孔，将网放入水中0.5m深处作横8字形来回拖动约3－5分钟，徐徐提起，将水滤去，打开开孔，使浮游生物流入瓶中（60ml）.3.浮游生物网第十页，共二十七页，编辑于2023年，星期日采集不同水层水样，用于浮游植物和浮游动物定量以及叶绿素的测定。采水器有瓶状采水器、筒状采水器和柱状采水器等。本调查采用5L筒状采水器：0.25m高，有机玻璃制作而成。4.采水器第十一页，共二十七页，编辑于2023年，星期日采集底栖动物定性样品构造：

用铜或铝做成一个每边长约30cm的三角形具齿的架子，套上三角形网袋，架子三个角都装上粗绳，结在一起，用长粗绳上用来拖取底栖生物。5.三角拖网第十二页，共二十七页，编辑于2023年，星期日

采集底栖动物定量样品:

利用一对颚瓣，以绳钩在活钩上，放入湖底。当两颚瓣与湖底接触时，放松拉绳，活钩自然脱落。向上拉绳时将颚瓣拉紧，由于重力关系，颚瓣自然夹拢，将湖泥及底栖生物夹在其中，提出水面，倒入底栖生物过滤网在水中淘洗，干净后倒入白色磁盘，用镊子挑拣全部生物，个体大的放入500ml塑料瓶中，身体柔软的如环节动物等另放在小塑瓶，用5％福尔马林固定，回室内换成75％的酒精保存。6.采泥器（彼得生采泥器）第十三页，共二十七页，编辑于2023年，星期日浓缩浮游生物定量样品1000ml柱形分液漏斗式的沉淀浓缩器，在1000ml,500ml,50ml,30ml处划有刻度。7.浮游生物浓缩器第十四页，共二十七页，编辑于2023年，星期日在一块较厚的载玻片上有2cm边长的正方形方框，每边长又划分成10等分成100个面积为4平方毫米的小格，四周由0.25mm高的玻璃框围成一个方框，框内体积正好0.1ml.使用时，取0.1ml沉淀的定量样品，盖上盖玻片，注意不要有气泡或使样品溢出。8.浮游植物计数框第十五页，共二十七页，编辑于2023年，星期日用于计数轮虫、桡足类的生物量。在一块较厚的载玻片上，有长5cm,宽2cm，高0.1cm的长方形方框，框内面积刚好1ml。9.浮游动物计数框第十六页，共二十七页，编辑于2023年，星期日目测微尺：一个可以放入显微镜中的圆形玻片，上面有一微形尺。台测微尺：在一特殊的载玻片上刻有1mm分100小格的微型尺。使用时，把目尺放入显微镜目镜内（有刻度的一面向下），台尺放在载物台上，然后计数不同倍数的物镜内，一个台尺的小格为目尺小格的几倍，由于台尺的长度是已知的，就可以推算出在某一放大倍数时目尺一小格的长度为多少。目尺每格长度(um)=（两重叠刻度间台微尺的格数×10um）/两重叠刻度间目微尺的格数。10.目测微尺和台测微尺第十七页，共二十七页，编辑于2023年，星期日垂直握住移液管，将按钮揿到第一停止点，并把吸液嘴浸入到液面下2－3mm，缓慢放松按钮，使之复原，等待1－2秒钟后从液体中取出，并避免碰撞任何东西。将吸液嘴移至加样容器壁上，缓慢地把按钮揿到第二停止点，排尽全部液体，吸嘴在容器壁向上滑动取出后再放松按钮，使之复位，即完成一次操作过程。11.微量移液器第十八页，共二十七页，编辑于2023年，星期日1.浮游生物定性2.浮游植物定量3.浮游动物定量4.底栖动物的定性5.底栖动物定量6.水生微管束植物的采集与标本制作7.标签书写六.样品采集及分析方法第十九页，共二十七页，编辑于2023年，星期日清洗浮游生物网,关闭网头开关.把浮游生物网放在0.5m水深处作横8字形来回拖动.注意不要有气泡,转弯处要圆滑,3-5min后起网.用60ml塑料瓶收集所有在网头的浮游生物,加2-3ml的福尔马林液固定,带回实验室,参照有关资料进行分类鉴定记录在本子上.1.浮游生物定性第二十页，共二十七页，编辑于2023年，星期日用5L的桶状采水器，采集0-0.5,1.0-1.5m水层的水样混合后，用1升塑料量杯量取1升入塑料瓶，加10ml碘液、20-30ml福尔马林固定带回实验室。回实验室后，转入1000ml沉淀器，静置沉淀24小时后，吸去上清液浓缩至50ml,取样计数。用0.1ml定量加液器吸取均匀浓缩液0.1ml,放在容积为0.1ml的正方形计数框内,用2.22.2cm的盖玻片盖好,注意不要有气泡,在显微镜下分种计数,一般取50个视野.按以下公式计算出浮游植物的密度(个/升)(进入公式)：2.浮游植物定量第二十一页，共二十七页，编辑于2023年，星期日

CsVN(个/升)=

PnFsFnvPn:Fn个视野中浮游植物的个数.Fn:视野数.(50)V:1升水样浓缩后的体积.(50ml)V:计数框体积.(0.1ml)Cs:计数框面积.(400mm2)Fs:每个视野面积.(D=?)第二十二页，共二十七页，编辑于2023年，星期日(1)原生动物,轮虫类,无节幼体:

取浮游植物的50ml浓缩匀液中的1ml放在长方形框中全片计数.

1升水样浓缩体积生物密度(个/升)=计数得到的生物个体数计数的标本体积(2)桡足类,枝角类:

把采水器采的10升混合水样,用浮游动物过滤网把浮游动物收集在250ml塑瓶中,用4%福尔马林固定.带回实验室后静置一段时间,吸取上清液,把剩下的水样放在长方形计数框全部计数.

生物密度(个/升)=全部计数个数(个)/10(升)

3.浮游动物定量第二十三页，共二十七页，编辑于2023年，星期日把三角拖网拉绳的一端固定在调查船上,然后把三角拖网抛入湖中，缓慢拖拉一定距离后提起，在水中摇动冲洗，干净后倒入白瓷盘中挑拣出生物样品，装入500ml塑料瓶中.重复拖2次，样品用5%福尔马林固定.水蚯蚓，蚂蟥等最好先用乙醚进行麻醉，然后用福尔马林固定在另外的小塑瓶内。回实验室进行鉴定后换用75%的酒精保存。4.底栖动物的定性第二十四页，共二十七页，编辑于2023年，星期日

用开口面积为1/16m2的彼得生采泥器采集底泥，倒入底栖动物网进行清洗。然后倒在白瓷盘上挑拣所有生物，用75%酒精固定。重复2次。带回实验室进行计数，称重。大个体生物用托盘天平称，小的如水蚯蚓等用扭力天平称。

生物密度(个/m2）=计数个体数（个）/（1/16m2

2)=计数个体数8

生物重量(g/m2）=称量重/（1/16m2

2）=称量重85.底栖动物定量第二十五页，共二十七页，编辑于2023年，星期日

采集时用竹竿扎上铁钩把水草从根部慢慢钩起，采集时注意保持植物体的完整（有根，茎，叶，花，果实），把采集到的植物体带回实验室逐一分类鉴定，选择一些完整的植株用清水漂洗后铺展在压榨纸上,用标本夹干,日换压榨纸,数日.

待标本干后,粘贴在白纸板上,贴上标签,作为永久性保存标本.

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