辅助生殖PGD与PGS技术

植入前遗传学诊断及筛查技术临床应用谭跃球tanyueqiu@南大学生殖与干细胞工程研究所*人类干细胞国家工程研究中心*中信湘雅生殖与遗传专科医院目前一页\总数八十二页\编于十二点内容概要植入前遗传学诊断与筛查的概念PGD检测流程染色体易位携带者的PGD基于全染色体筛查的PGD(PGD-CCS)单基因病PGD背景介绍适应征及技术进展临床应用植入前诊断植入前遗传学诊断和筛查的概念植入前遗传学诊断的临床应用植入前遗传学筛查的临床应用目前二页\总数八十二页\编于十二点一、植入前遗传学诊断与筛查的概念PGD(PreimplantationGeneticDiagnosis)：又称为孕前诊断(preconceptiongeneticdiagnosis,PGD)。指在胚胎植入前，利用DNA分析技术对显微活检的胚胎细胞进行染色体异常或遗传性疾病进行诊断，选择正常的胚胎植入。第一部分植入前遗传学诊断和筛查的概念目前三页\总数八十二页\编于十二点第三代试管婴儿？PGD/PGS是以ICSI-ET为基础，结合显微操作技术和分子生物学研究的而发展起来的。目前四页\总数八十二页\编于十二点PGD的意义PGD可在孕前阶段杜绝X-连锁隐性遗传病、染色体病和基因病患儿的妊娠，避免人工流产终止异常妊娠给广大妇女的身心痛苦。理论上还可减少遗传病在人群中的遗传负荷。PGD是遗传性病防治的重要手段，是Edwards获诺贝尔奖的理由之一。植入前诊断传统的产前诊断目前五页\总数八十二页\编于十二点PGD发展历程最早于1965由Edwards提出。1968年Gardncr和Edwards在显微操纵下对兔囊胚进行活检，取出少量滋养外胚层细胞分析染色质来选择雌性胚胎。1990年Handyside报道了世界第一例植入前性别诊断婴儿的出生，开创了产前诊断的新纪元。1994年，Munne用FISH技术，在植入前诊断胚胎染色体非整倍体及性别获得成功。1999年，Terlin等用巢式PCR和单链多态性分析技术，对单细胞进行视网膜母细胞瘤的易感性分析，在植入前确定胚胎未来发生肿瘤的可能性大小，从而为PGD应用于人类胚胎基因表达的研究开辟了崭新的途径。2001年Verlinsky有报道对胚胎进行HLA选型以便于骨髓移植。进一步拓宽了该技术的研究和应用。目前六页\总数八十二页\编于十二点染色体异常（罗氏易位、相互易位、倒位等）染色体异常的筛查单基因病（一般的单基因病、性连锁遗传病等）单基因异常的筛查

PGD期望解决的问题目前七页\总数八十二页\编于十二点

植入前遗传学筛查的概念胚胎植入前遗传学筛查（PreimplantationGeneticScreening,PGS），是指胚胎植入着床之前，对早期胚胎进行染色体数目和结构异常的检测，通过一次性检测胚胎23对染色体的结构和数目，挑选正常的胚胎植入子宫，以期获得正常的妊娠，提高患者的临床妊娠率，降低多胎妊娠。PGS目前特指针对染色体数目异常，即非整倍体；PGS理论上将来可以应用于单基因病。PGS是低风险人群，夫妻双方的染色体或者基因是正常的。目前八页\总数八十二页\编于十二点二、PGD检测流程卵子精子ICSI活检取样胚胎冷冻遗传学检测选择胚胎胚胎植入遗传咨询知情谈话FISHCHIPPCRMPSIVF临床促排卵目前九页\总数八十二页\编于十二点极体活检活检第一极体和第二极体，检测母源性的染色体结构异常或基因突变，以及减数分裂异常造成的染色体非整倍体。优点：对卵母细胞的发育没有影响。

缺点：只能检测母源性的染色体异常；

不能检测受精后发生的染色体异常；

可检测细胞数少，易发生检测失败。（一）活检技术选择目前十页\总数八十二页\编于十二点卵裂球活检在D3胚胎发育到6-10细胞时活检出1-2个卵裂球，进行遗传学诊断。

优点：最成熟最常用的活检方法。

缺点：活检出卵裂球后降低了胚胎的发育潜能；

细胞数少，容易发生检测失败(细胞固定及

杂交失败，扩增失败，ADO等)。

目前十一页\总数八十二页\编于十二点囊胚活检D5-6天胚胎发育到囊胚阶段后，活检囊胚滋养层细胞进行遗传学检测。

优点：对滋养层细胞的活检不影响将要发育成胎

儿的内细胞团的发育；

可检测细胞数较多，检测失败概率降低。

对SNP-array而言，能大大减低费用。

缺点：大部分情况下（除非可以在24小时之内出结果）

需将活检后的囊胚冷冻保存。

目前十二页\总数八十二页\编于十二点染色体易位(Translocation):一种染色体结构异常，一条染色体的一段转移到同一条或另一条染色体上，导致易位片段基因的重排

(Thompson&ThompsonGENETICSINMEDICINE2010)易位是一种常见的染色体结构重排异常，新生儿中发病率0.2%.(Sternetal.,1999)临床上两种类型的易位最常见：罗氏易位和相互易位一、染色体易位携带者的FISH-PGD第二部分植入前遗传学诊断的临床应用目前十三页\总数八十二页\编于十二点4q2520q12相互易位：两条非同源染色体之间进行片段的交换，常常是整个末端的断裂并互换。--Thompson&ThompsonGENETICSINMEDICINE2010着丝粒→←着丝粒Derivativechromosome4Derivativechromosome20目前十四页\总数八十二页\编于十二点罗氏易位：这种类型的易位是在两组端着丝粒染色体(D组andG组,染色体13-15,21-22)间进行交换，往往在靠近着丝粒的区域断裂重组，导致易位的两条染色体随体的丢失--Thompson&ThompsonGENETICSINMEDICINE2010Centromere→Centromere→Chr21Chr14der(14;21)目前十五页\总数八十二页\编于十二点易位携带者的健康风险平衡的染色体易位个体往往没有明显的疾病表型，称为“易位携带者”。但却多存在生殖的障碍；易位携带者主要的遗传风险起源于配子减数分裂的过程，携带者可产生高比例的不平衡配子（精子和卵），可以导致流产，出生染色体异常患儿引起出生缺陷（特别是智力障碍），并可导致不孕和不育；目前十六页\总数八十二页\编于十二点平衡易位携带者的遗传风险四射体对于相互易位携带者，配子分离模式理论上产生18种配子类型：包括1种正常,

1种平衡易位型

和16种不平衡分离的配子。目前十七页\总数八十二页\编于十二点normalbalanceddisomy21disomy21nullisomy21Nullisomy14罗氏易位产生6种配子类型，包括1中正常，1中平衡易位型，其余4种不平衡分离配子，这类不平衡配子往往导致流产。罗氏易位的遗传风险目前十八页\总数八十二页\编于十二点染色体易位和生殖健康反复流产：

3-4%的反复流产患者存在染色体结构异常

相互易位占61%罗氏易位占16%--Cliffordetal.1994;Franssenetal.2005我院数据：共发现1425易位携带者，其中相互易位76.6%(1094/1428)，罗氏易位23.4%(334/1428).反复流产–

75.2%(1071/1425)严重男性因素–

17.2%

(245/1425)卵巢功能下降–1.2%

(18/1425)

目前十九页\总数八十二页\编于十二点PGD用于易位携带者治疗的历史产前诊断移植以来被有效的用来避免染色体异常患儿出现，但是诊断异常后流产给妇女带来心理和生理的负担，并可能导致生育障碍；第一例PGD的成功妊娠，利用Y染色体特异性DNA扩增技术成功对人胚胎性别进行诊断并获得妊娠。--Handyside,AH.Nature,19901998年，FISH技术被用于易位携带者的PGD诊断并获得成功

--ConnCMetal.1998;MunnéSetal.1998;PierceKEetal.1998

目前二十页\总数八十二页\编于十二点荧光原位杂交(FISH)荧光原位杂交技术（Fluorescenceinsituhybridization,FISH）是以利用荧光标记的特定基因或染色体片段作为探针，与染色体特定序列DNA分子杂交，可以确定分裂细胞或间期细胞对应染色体序列的位置及数目，以此检测染色体数目或结构异常。FISH技术有以下几个特点：①安全、快速、灵敏度高；②探针能较长时间保存；③多色标记，简单直观；④可用于中期染色体及间期细胞的分析人类干细胞国家工程研究中心*中信湘雅生殖与遗传专科医院目前二十一页\总数八十二页\编于十二点荧光原位杂交(FISH-PGD)技术流程目前二十二页\总数八十二页\编于十二点欧洲生殖与胚胎学协会(ESHRE)

---FISH-PGD实践指南目前二十三页\总数八十二页\编于十二点ESHRE要求：

实验室胚胎活检技术；遗传室细胞核玻片固定基础，并对固定程序有详细要求；选择合适的探针，对平衡易位患者需提前做好外周血淋巴细胞中期分裂相预实验；欧洲生殖与胚胎学协会(ESHRE)

---FISH-PGD实践指南目前二十四页\总数八十二页\编于十二点细胞核玻片固定程序：活检卵裂球(1枚或2枚)或囊胚滋养层细胞(TE)；低渗液滴中处理≥5min；在圆圈标记对应的玻片正面部位加固定剂(Tween-20/HC1)，将低渗好的细胞转至固定剂液滴中；待固定剂完全干燥后，可放在-20℃备用，或者直接进入下一步；60℃烤片，30min-3h；RNase消化，蜡膜封片，湿盒中37度孵育30min-1h；将RNase处理后的玻片依次过2xSSC、75%、90%、100%酒精，梯度脱水；将玻片放入变性液中，75℃预变性3-5min（目的是将DNA双链打开）；玻片依次过75%、90%、100%酒精梯度脱水，2min/浓度，完全风干；探针75℃变性5min；将探针加到风干的玻片样本上，双层蜡膜封片，置于湿盒中，37℃过夜（杂交4-6h）；玻片依次过洗涤液WS1三缸(45℃)，WS2两缸（室温），WS3一缸（室温）；75%、90%、100%酒精梯度脱水，风干；加入DAPI，处理3min后，直接荧光显微镜下观察。欧洲生殖与胚胎学协会(ESHRE)

---FISH-PGD实践指南目前二十五页\总数八十二页\编于十二点平衡易位探针选择和淋巴细胞预实验探针的选择：商业探针的使用需通过QC质控；自制探针也需要进行合适的QC/QA鉴定。所有探针在应用到临床检测前都需经过细胞杂交预实验，评估特异性、亮度及弥散度；对于所有平衡易位携带者，需要取用对应易位区段合适的探针以及探针组合对夫妻双方淋巴细胞中期分裂相及间期核进行预实验检测：至少分析20个中期分裂相，确保探针位置在正确的染色体上，易位片段能被正确指示；至少分析100个间期核，评估特异性、亮度及弥散度。欧洲生殖与胚胎学协会(ESHRE)

---FISH-PGD实践指南着丝粒探针位点特异性探针亚端粒探针目前二十六页\总数八十二页\编于十二点一例相互易位携带者PGD，核型为：46,XY,t(6;10)(q13;p15)，活检2枚胚胎，对单卵裂球进行FISH检测，发现1枚信号正常，移植1枚，妊娠单胎，产前诊断为正常核型，已出生正常婴儿。FISH-PGD举例：平衡易位携带者预实验结果：外周血淋巴细胞培养制备的一个中期分裂相和一个间期核FISH探针：易位片段的亚端粒探针（6q13→6qter，Tel6qSpectrumOrange；10p15→10pter，Tel10pSpectrumGreen）和10号着丝粒片段的着丝粒探针（10p15→10qter,blueCEP10alphasatelliteSpectrumAqua）。目前二十七页\总数八十二页\编于十二点一例相互易位携带者PGD，核型为：46,XY,t(6;10)(q13;p15)，活检2枚胚胎，对单卵裂球进行FISH检测，发现1枚信号正常，移植1枚，妊娠单胎，产前诊断为正常核型，已出生正常婴儿。FISH-PGD举例：平衡易位携带者FISH-PGD检测结果：不同通道滤光片下观察到的细胞核中的FISH探针荧光信号。a胚胎细胞核中每个探针均为2个杂交信号提示每个探针位点均为2个拷贝，表示易位相关的染色体组成为正常或平衡易位。b胚胎核中均为1个红色信号、3个绿色信号和2白色信号，分别提示6号易位片段为一个拷贝、10号易位片段为3个拷贝和10号着丝粒片段为2个拷贝，表示该胚胎为临近-1分离形成的6q13→6qter单体和10p15→10pter三体不平衡产物。临近-1分离模式图目前二十八页\总数八十二页\编于十二点ReciprocaltranslocationcarriersRobertsoniantranslocationcarriersBiopsiedcycles257149Oocytenumber14.53±6.5313.81±6.83NumberofgoodqualityembryosonD37.12±4.186.85±4.61NumberofgoodblastocystsonD50.93±1.501.04±1.71Biopsiedembryo(median(range))10(1-30)9(1-24)Biopsied

embryos27091420Normal/balanced17.5%(475)31.8%(451)Unbalanced69.5%(1882)56.3%(799)Testingfailure13.0%(352)12.0%(170)Cancelledcycles(rate)82(31.9%)24(16.1%)2006-2011年我院易位携带者进行d3

FISH-PGD结果正常或平衡易位胚胎比例低，尤其是相互易位目前二十九页\总数八十二页\编于十二点ReciprocaltranslocationcarriersRobertsoniantranslocationcarriersBiopsiedcycles257149Oocytenumber14.53±6.5313.81±6.83NumberofgoodqualityembryosonD37.12±4.186.85±4.61NumberofgoodblastocystsonD50.93±1.501.04±1.71Transferredembryo(median(range))2(1-3)2(1-3)Cyclesacceptedtransfer175125Clinicalpregnancyrateperbiopsiedcycle33.5%(68/257)32.2%(48/149)ClinicalpregnancyrateperET38.9%(68/175)38.4%(48/125)Implantationrate32.2%(86/267)28.1%(62/221)Miscarriagerate16.2%(11/68)16.7%(8/48)Live

birth

rateperBiopsy22.2%(57/257)26.8%(40/149)Healthbabies/deliveredbabies52/5235/352006-2011年我院易位携带者进行d3

FISH-PGD结果目前三十页\总数八十二页\编于十二点单卵裂球FISH几种风险可能导致没有准确结果：杂交背景干扰太强的情况杂交杂质信号干扰的情况杂交失败未见信号的情况固定或重杂交细胞核丢失的情况囊胚FISH相对卵裂期FISH更有优势？1.活检细胞数的增多有利于信号的判定；2.直观方便检出胚胎嵌合体。目前三十一页\总数八十二页\编于十二点胚胎序号Tel7p信号数Tel8q信号数CEP8结果提示11[6]3[6]2[6]异常21[7]3[7]2[7]异常31[5]3[5]2[5]异常42[7]2[7]2[7]正常或平衡易位51[4]3[4]2[4]异常62[7]2[7]2[7]正常或平衡易位71[7]3[7]2[7]异常81[4]3[4]2[]异常91[6]3[6]2[6]异常102[4]3[2]2[4]2[2]2[4]2[2]异常113[2]1[2]2[2]异常囊胚FISH-PGD举例：平衡易位目前三十二页\总数八十二页\编于十二点FISH面临的挑战目前三十三页\总数八十二页\编于十二点不同实验室FISH检出率和准确率波动较大着床率和妊娠率随着FISH检测错误率的上升而降低目前三十四页\总数八十二页\编于十二点FISH技术局限FISH技术仅能检测有限的染色体，因此患者经FISH-PGD成功妊娠，但仍不可避免因其它未检测的非整倍体异常妊娠而引发的早期流产或出生缺陷。FISH-PGD早期流产胚胎进行比较基因组杂交检测，检出5号染色体重复。需要全染色体筛查为基础的PGD技术？目前三十五页\总数八十二页\编于十二点二、基于全染色体筛查的PGD(PGD-CCS)PGDwithComperhansiveChromosomeScreening，避免了FISH仅能检测少数染色体的限制，采用全染色体筛查的方式对易位或倒位携带者进行PGD诊断，同时排除其它染色体非整倍体异常。目前三十六页\总数八十二页\编于十二点易位携带者的SNP-PGD临床情况总结1.囊胚+SNP活检分析增加PGD诊断的准确性2.基于SNP的PGD-CCS可以检测出除易位染色体外其他染色体的异常，减少流产目前三十七页\总数八十二页\编于十二点易位携带者SNP-PGD的临床结局总结目前三十八页\总数八十二页\编于十二点共分析360个患者年龄在20~44岁之间，平均新发生异常的几率是27.2%

Age是否SNP-PGD需要用于每个易位携带者?目前三十九页\总数八十二页\编于十二点ReciprocaltranslocationcarriersRobertsoniantranslocationcarriersD5-FISHSNParrayD3-FISHD5-FISHSNParrayD3-FISHTransfercycles29771751238125ClinicalpregnancyrateperET55.2%(16/29)63.7%(49/77)38.9%(68/175)83.3%(10/12)63.2%(24/38)38.4%(48/125)Implantationrate40%(16/40)59.5%(49/97)32.2%(86/267)59.1%(10/17)54.9%(28/51)28.1%(62/221)Miscarriagerate25.0%(4/16)8.16%(4/49)16.2%(11/68)0(0/10)12.5%(3/24)16.7%(8/48)ComparisonD5-FISHandd5-SNPresultsintranslocationcarriers<35yrs对于年轻的罗氏易位携带者，d5FISH能获得d5SNP相似的临床妊娠结局目前四十页\总数八十二页\编于十二点新一代测序技术(NGS)正逐步兴起婚前孕前植入前产前新生孕期指导新夫妇家庭计划指导低成本同时检测>40种代谢疾病，可覆盖大规模人群建立国家和地区发病率数据库

确认诊断疾病，特别是稀有疾病疾病亚型分类，或鉴别相似表型的不同疾病，进行有效干预

拯救婴儿生命，使他们更健康减少对社会和家庭带来的负担减少出生缺陷指导意义NextGenerationSequencing(NGS)目前四十一页\总数八十二页\编于十二点NGS-PGD/PGS技术路线WGASNParray检测NGS检测平行实验已知样本非整倍体单个胚胎干细胞正常核型淋巴细胞FISH-PGD诊断为异常的胚胎重活检淋巴细胞全基因组扩增获得产物临床并行实验SNParray检测NGS检测建立平台评估检出率，准确度等指标，芯片与测序相当目前四十二页\总数八十二页\编于十二点方法学的建立2X测序深度能覆盖60%人类基因组，10X深度能覆盖>90%人类基因组。等位基因脱扣ADO率约5-20%；平均值为4%，近着丝粒区段发生ADO率相对较高。碱基对检出误差：C:G>T:A.Before&afterGCbias

correction专为单细胞测序CNV分析而设置的算法，矫正WGA产生的GC偏差，使结果更接近基因组DNA测序水平。

目前四十三页\总数八十二页\编于十二点NGSvsSNParray在非整倍体与16M缺失重复的比较方法学的建立目前四十四页\总数八十二页\编于十二点技术特点高通量，高准确度：使用新一代测序技术，克服PCR技术通量低的缺点。不容易产生漏检：可对所有23对染色体进行检测。FISH技术由于每一轮杂交的探针数目是有限的，无法对所有23对染色体进行检测，容易产生漏检。自动化程度高：测序数据通过SOAP比对，SegSeq软件进行分析目前四十五页\总数八十二页\编于十二点我们前期已建立了FISH、SNP芯片技术检测染色体异常，并与华大合作建立了单细胞水平的全基因组测序。2012年8月诞生了世界首例由NGS-PGD助孕的健康女婴。我中心完成的NGS-PGD/PGS工作目前四十六页\总数八十二页\编于十二点三、单基因病PGD目前四十七页\总数八十二页\编于十二点ESHREPGD工作组对扩增基础的PGD的

最佳实践指南

目前四十八页\总数八十二页\编于十二点单基因病PGD的流程1.预备实验1.1基因诊断1.2设计个性化方案1.3构建单体型1.4基因组水平实验1.5淋巴细胞/废弃胚胎细胞水平实验2.临床实验2.1临床前预备实验2.2临床诊断3.产前诊断目前四十九页\总数八十二页\编于十二点1、等位基因脱扣（alleledropout,ADO）

影响PGD准确性的主要因素之一，其发生率约为5-20%。可导致胚胎的误诊。导致ADO的原因目前仍未充分弄清。

解决办法：

①采用多重PCR的方法，加入标记位点的检测；

②控制扩增片段大小(<350bp)以及合适的引物设计；

③采用荧光PCR；

④提高变性温度至96℃，选用合适的聚合酶；

⑤增加活检细胞数等。

单基因病PGD中，着重解决等位基因脱扣和污染两大问题目前五十页\总数八十二页\编于十二点2、污染导致PGD诊断失败和误诊的另一重要因素。污染主要来自透明带上残留的精细胞和母源的丘细胞以及前次试验扩增的DNA残留物我们的解决办法：1）采用ICSI防止精细胞污染；2）防止丘细胞污染：A.操作中尽量去除卵细胞周围的丘细胞。B.活检的卵裂球在无污染的PBS或培养基中反复洗脱。C.采用多重PCR同时检测活检标本及双亲的DNA指纹加以鉴别。3)防止外源DNA污染A.实验室物理分区；所有的试剂分装，不反复冻融，耗材一次性使用。B.设立空白对照。C.在专用层流室中操作（如右图）。目前五十一页\总数八十二页\编于十二点育龄夫妇未采用任何避孕措施，1年或1年以上未能受孕，称为不孕症；虽有过妊娠，但均已流产或死胎，而未能获得活婴者，称为不育症。中国不孕不育人数大约5000万,不孕不育的发生率12％~15％我们的研究发现，人类早期自然流产胚胎中超过50%发生了非整倍体异常。植入前遗传学筛查背景----不孕症和不育症世界范围内不孕不育率高达15%，成为继癌症和心脑血管疾病之外，严重影响人类健康的第三大疾病。正常（例）重复（例）缺失（例）复杂异常（例）异常率（%）早孕期流产7526521393851.7中、晚孕期流产106173015.9总数16836691423850.4TanYQ,etal.Geneticchangesinhumanfetusesfromspontaneousabortionafterinvitrofertilizationdetectedbycomparativegenomichybridization.BiolReprod.2004Feb;70(2):495-9.Epub2003Oct15.第三部分植入前遗传学筛查的临床应用目前五十二页\总数八十二页\编于十二点NewEnglandJournalofMedicine351(19):1927-1929，2004植入前遗传学筛查背景----年龄与生育关系文献统计随着女性年龄的升高，流产率逐渐升高，生育率急剧下降。我中心2012年-2013年间不同年龄阶段的296对夫妇共1016枚检测胚胎异常率统计，新发生染色体异常率随女方年龄的增长而升高。目前五十三页\总数八十二页\编于十二点植入前遗传学筛查背景--染色体异常与胚胎发育染色体异常是引起胚胎发育能力降低的重要原因，也是出生缺陷的重要原因。据报道，体外培养的D3分裂期卵裂球有50%-70%概率出现染色体异常，其出现频率随母方年龄增加而增加。即使发育到D5囊胚期，仍有40%概率出现染色体异常。传统的胚胎形态学评价体系不能反映胚胎的遗传学真实情况。据报道，在形态学良好的胚胎中，仅42%的胚胎是染色体完全正常的。目前五十四页\总数八十二页\编于十二点植入前遗传学筛查的概念PGS(Preimplantation

Genetic

Screening)指对在胚胎发育中散在发生的染色体非整倍体异常进行筛查，以帮助筛选染色体水平上最佳胚胎，理论上可以提高试管婴儿的着床率和活产率。PGS适应征：针对高龄女性、反复植入失败者，曾有染色体异常儿妊娠史、反复自然流产、严重男性因素不育等早期PGS应用的技术：荧光原位杂交(FISH)JoyceHarper,etal2011目前五十五页\总数八十二页\编于十二点FISH技术的改进增加FISH探针的颜色以及数量(为了易于区分避免色差，至多可选择5色同时杂交)。增加杂交次数：对细胞核信号洗脱后重复杂交(一个细胞核最多可承受三次洗脱重杂交)进行双卵裂球活检？目前五十六页\总数八十二页\编于十二点代表性文章1994

GriffinDK,etal.Clinicalexperiencewithpreimplantationdiagnosis

ofsexbydualfluorescentinsituhybridisation.JAssReprodGenet

11,132–143.(首次使用双重杂交)2006

WeierJF,etal..Molecularcytogeneticstudiestowardsthefullkaryotypeanalysisofhumanblastocystsandcytotrophoblasts.CytogenetGenomeRes.2006;114(3-4):302-11(对24色FISH的尝试)2009

CollsP,etal.Increasedefficiencyofpreimplantationgeneticdiagnosisforaneuploidybytesting12chromosomes.ReprodBiomedOnline,19(4):532-538.(首次用到FISH-PGD检测12条染色体)目前五十七页\总数八十二页\编于十二点以FISH技术和第三天活检为基础的PGS

----并未显示能提高分娩率卵裂期使用FISH技术的随机对照试验检测了不同数目的染色体：Staessenetal,2008Meyeretal,2009Mersereauetal,2008Blockeeletal,2008Debrocketal,2010Hardarsonetal,2008Schoolcraftetal,2009…………没有一个实验显示能增加分娩率，甚至部分研究显示分娩率显著下降。目前五十八页\总数八十二页\编于十二点目前五十九页\总数八十二页\编于十二点1.仅能检测少数染色体(至多12条)；2.商业检测探针多位于染色体亚端粒区(长短臂末端)，不能定位染色体断裂位点；3.信号强度易受到固定效果、探针灵敏度、背景干扰以及杂交程度等的影响；文献报道FISH误诊率约7~10%。可能的原因？分裂期卵裂球高度的染色体异常嵌合，导致检测细胞不能很好代表整个胚胎；卵裂期活检过程本身可能对胚胎发育潜能产生危害和负面影响选择合适的活检时间全染色体筛查的方法更多RCTs研究更为有效的PGS技术目前六十页\总数八十二页\编于十二点卵裂期活检

-损伤胚胎发育潜能的风险--

Tan

YQ.,etal.HumRerpod.2013;28(9):2581-2592D3活检影响囊胚发育目前六十一页\总数八十二页\编于十二点卵裂期活检

-损伤胚胎发育潜能的风险卵裂期FISH囊胚期FISH平衡易位罗氏易位平衡易位罗氏易位移植1751256842移植妊娠率32%（n=86）28%（n=62）65%(n=44)84%(n=27)流产率12.79%(n=11)12.90%(n=8)9.23%(n=6)7.41%(n=2)目前六十二页\总数八十二页\编于十二点所有患者同时移植两枚胚胎，一枚来自卵裂期或囊胚期活检的胚胎，一枚来自未活检的胚胎，采用DNA指纹鉴定妊娠胚胎的来源。—2013卵裂期活检

-损伤胚胎发育潜能的风险目前六十三页\总数八十二页\编于十二点囊胚期活检较卵裂期活检对胚胎的发育潜能影响更小；卵裂期活检

-损伤胚胎发育潜能的风险目前六十四页\总数八十二页\编于十二点嵌合对PGS诊断的影响胚胎染色体嵌合现象的概率在25-80%之间，概率范围大是由于各研究使用胚胎来源、胚胎发育阶段及染色体检测方法的差异。

胚胎嵌合现象示意图目前六十五页\总数八十二页\编于十二点In1993chromosomalmosaicismwasdescribedinhumanpreimplantationembryosforthefirsttime.

---Delhantyetal.1993早期胚胎染色体嵌合的发生率conclusions:Diploid–aneuploidmosaicismisbyfarthemostcommonchromosomalconstitutioninsparehumanpreimplantationembryosafterIVF.Thisunderminesthereliabledeterminationoftheploidystatusofacleavage-stageembryobasedontheanalysisofasinglecell.Futureresearchshoulddeterminetheoriginanddevelopmentalpotentialofmosaicembryos只有9％的胚胎有完全正常的卵裂球--NatMed2009目前六十六页\总数八十二页\编于十二点随着胚胎的发育，嵌合体胚胎比例逐渐降低。ThefateofthemosaicembryochromosomalconstitutionanddevelopmentofDay4,5and8humanembryos.SantosMA,etal.HumanReproduction,Vol.25,No.8pp.1916–1926,2010嵌合对PGS诊断的影响目前六十七页\总数八十二页\编于十二点>40%aneuploidcells

<25%aneuploidcells

25-40%aneuploidcells

FISHreanalysisofinnercellmassandtrophectodermsamplesofpreviouslyarray-CGHscreenedblastocystsshowshighaccuracyofdiagnosisandnomajordiagnosticimpactofmosaicismattheblastocyststage,AntonioC,etal.HumanReproduction,Vol.0,No.0pp.1–10,2013真正会影响到移植风险的嵌合胚胎发生率仅为5%.因为绝大多数非整倍体异常在内细胞团与滋养层中共同发生。而在滋养层细胞中可能嵌合存在更多异常。嵌合对PGS诊断的影响目前六十八页\总数八十二页\编于十二点如何理解卵裂期活检的影响（Timelapse分析）正常卵裂球的移除进一步影响胚胎发育的潜能异常卵裂球的存在影响胚胎的正常诊断目前六十九页\总数八十二页\编于十二点囊胚活检有替代卵裂期活检的趋势作者认为：卵裂球活检仍相对更加损伤胚胎，临床结局显示囊胚活检应是最为合适的植入前遗传学检测的活检时期。FertilSteril.2013Sep;100(3):608-14.doi:10.1016/j.fertnstert.2013.07.004.目前七十页\总数八十二页\编于十二点极体活检—风险最低的活检方法极体活检对胚胎没有损伤，随着极体染色体检测技术的进步，如更精确而且便宜的测序技术的应用，极体活检将成为未来PGD/PGS中一项非常有前景的技术。

目前七十一页\总数八十二页\编于十二点讨论：极体活检vs囊胚活检？避免嵌合的影响不影响未来的胚胎仅检测减数分裂错误而未评估有丝分裂错误，而有丝分裂可能修复减数分裂错误

能分析来自父母双方的异常嵌合(滋养外胚层可能不能代表内细胞团)

囊胚培养和玻璃化冷冻美国的NathanTreff代表与欧洲的JoepGeraedts达成了许多共识：极体活检与囊胚活检各有优势，不再建议进行卵裂期活检目前七十二页\总数八十二页\编于十二点WilladsenSetal.Hum.Reprod.1999;14:470-475早年PGS尝试：利用动物MII卵构建人卵裂球分裂相技术难度大，构建成功率低，无法实现临床应用。全染色体组筛查技术目前七十三页\总数八十二页\编于十二点全染色体组筛查技术FISH:

9-11条chr所有23对人染色体都需要筛查CGH-比较基因组杂交aCGH:基因组杂交芯片MicroarraySNPRealTimePCRNextGenerationSequencing目前七十四页\总数八十二页\编于十二点全染色体筛查技术进展1996SermonK.,etal.Adaptationoftheprimerextensionpreamplification(PEP)reactionforpreimplantationdiagnosis:singleblastomereanalysisusingshortPEPprotocols.MolHumReprod.1996;2(3):209-212.

(最早用全基因组扩增法进行PGD，但仅筛查几个基因)1999WellsD.,etal.Detailedchromosomalandmoleculargeneticanalysisofsinglecellsbywholegenomeamplification.NucleicAcidsRes,27:1214-1218.

(首次使用单细胞mCGH做PGS)2005KnijnenburgJ.,etal.Rapiddetectionofgenomicimbalancesusingmicro-arrayconsistingofpooledBACscoveringallhumanchromosomearms.NucleicAcidsRes.2005;12(33):e159.(首次用aCGH做PGS)2007TreffNR.,etal.Accurate23chromosomeaneuploidyscreeninginhumanblastomeresusingsinglenucleotidepolymorphism(SNP)microarray.FertilSteril,2007;86:s217.

(首次用SNParray做PGS)2013EricJ.Forman,etal.Comprehensivechromosomescreeningalterstraditionalmorphology-basedembryoselection:aprospectivestudyof100consecutivecyclesofplannedfresheuploidblastocysttransfer

(首次用qPCR做PGS)2013ChunleiZhang,etal.ASingleCellLevelBasedMethodforCopyNumberVariationAnalysisbyLowCoverageMassivelyParallelSequencing

(首次用NGS做PGS)Pubmed总体能够搜索到2