临床检验标本采集规范

临床检验标本采集规范第1页/共57页

“正确的临床医学检验始自正确的标本采取。临床医师、护师及检验技师都必须通晓其要领。”

著名的临床微生物检验专著ManualofClinicalMicrobiology的主编PatrickMurray

第2页/共57页失误的不同分布第3页/共57页第一部分

检验标本正确采集和运送的重要性第4页/共57页采集标本要选择最佳时间

采集标本要选择最具代表性采集标本要最大满足要求重视标本惟一性标志第5页/共57页

临床检验血液标本原则上晨起空腹时采集，其结果准确可靠，因它避免了摄入成分和生理活动对检测指标的影响。比如需做血脂检查，在化验前24h要禁高脂饮食，12h禁流质。若要做大便隐血试验，则要在收集标本前3天禁动物血饮食。

特定时间采血因人体生物节律昼夜的周期变化，所以24h内不同时间所采集的标本其检测结果是不同的,如糖、激素及药物疗效监测等。尿常规采集晨尿，由于肾脏浓缩功能，易发现病理成分.

采集标本要选择最佳时间

第6页/共57页第7页/共57页

急诊检验采血不受时间的限制，但在检验单上应注明采血时间和急诊字样，以便临床医生根据其特殊性综合分析检验报告。受饮食影响较少的检验项目，如某些抗原、抗体的检测等。

第8页/共57页

细菌培养应尽量争取在抗生素使用前采集标本；临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者，需做血液细菌培养，采血宜在患者发冷、发热期间，越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷、发热时或发冷、发热前半小时为宜。。第9页/共57页细菌量

体温

时间上升幅度第10页/共57页

采集标本要选择最具代表性

由于患者标本采集不当，常导致阳性率降低，因此标本的采集应具有代表性，比如大便标本应采取新鲜标本，且选取异常成分的粪便，如含有黏液、脓、血等病变成分的标本取3～5g送检;应避免混有尿液、消毒剂及污水等杂物。比如痰液也要求新鲜，一般检查以清晨第1口痰作标本最适宜，做细胞学检查则以上午9：00～10：00留痰为好。骨髓穿刺、脑脊液穿刺应防止外伤性血液的渗入，还应避免凝固。血标本采集时患者应采取坐位或仰卧位，还应防止压脉带时间过长等。第11页/共57页采集标本要最大满足要求

抗凝剂、防腐剂的正确应用：临床上很多检验项目涉及到抗凝剂、防腐剂的应用，如血沉检查，但由于抗凝剂比例不当造成血沉减慢的现象也常发生。

容器清洁度或无菌程度：如24小时或12小时尿中某成分分析需加防腐剂，而细菌培养的容器绝对不能有防腐剂；微量元素测定对容器洁净度的要求远远高于其他检测。因此标本容器必须干燥、清洁、无污染物、无渗漏。

防溶血、防血脂、防污染：溶血标本引起的血细胞计数、血细胞比容、电解质离子及一些酶类、尿素、肌酐、尿酸、血糖等项目的变化临床上经常碰到。脂血标本、被污染标本引起对实验吸光度的干扰，这些都应引起重视。

第12页/共57页

标本运送应注意一些问题：首先标本要专人输送，除门诊患者自行采集的某些标本允许患者自行送外，其他情况原则上一律专人运送。其次送检标本保证安全，防止过度震荡，防止容器破损，防止污染，水分蒸发等。最后保证运送及时性，标本采集后立即送检，标本在室温放置时间直接影响检测结果的真实性。

第13页/共57页防止过失采集：不可利用输液、输血通道采集血液标本。除急诊抢救外应尽量避免在输液、输血的同时采集标本；如确需抽血要在另一侧肢体抽取。一般要求在输液、输血前或后1小时采集血液标本。第14页/共57页重视标本惟一性标志

标本采集容器标签上应注明送检科别,床号，患者姓名，与检验单上应相对应，防止张冠李戴。化验单上住院号，项目也应明确.

总之，规范实验室标本采集和运送至关重要，除以上涉及到的诸多因素外，还有许多能影响体液成分或干扰测定，如患者年龄、性别、情绪、饮食、运动和药物等的影响，因此在标本采集前应尽可能排除这些因素的干扰，获取准确的检验结果，为临床提供科学可靠的诊断依据。第15页/共57页

第二部分

各种临床检验标本的正确采集方法第16页/共57页

检验标本的采集是保证检验结果准确的前提。因此，要求各临床科室医护人员、送检者及相关人员认真、严格的按照检验标本的采集方法操作取材。第17页/共57页血液常规检查标本1.静脉血采集静脉血标本采集前病人应注意的问题:

1）避免剧烈运动，一般主张抽血前24h内不做剧烈运动，清晨取血，住院病人可在起床前采血，匆忙赶到门诊的人应至少休息15分钟后采血。２）注意合理饮食。除了急诊或其它特殊原因外，一般主张在禁食12h后空腹取血，延长空腹时间(饥饿)或餐后血液的化学成分都会引起变化，饮酒实验亦有影响。３）药物的影响：很多的药物进入人体后可影响某些化验项目的结果，病人在化验前应尽可能停服对实验有干扰的药物。第18页/共57页静脉采血时护士应注意的问题：１）采用一次性真空采血管，多项化验采血顺序应是：血培养→无添加剂管→有添加剂管管。血常规、血凝、血沉抽血量务必准确抽取规定的量，并轻轻颠倒混匀。２）采血时的体位建议以坐位5分钟后取血为宜，止血带使用应少于1分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些成分改变。３）当一侧手臂输液时应从对侧手臂取血，以免影响血糖、血钾等的浓度。４）血标本应防止溶血，影响溶血的因素有：用止血带时间过长；抗凝管使用不当或抗凝混合时过度振荡；容器污染；血液中泡沫注入试管；标本放置时间长或突然冷却和受热；离心力过大等。５）正确使用抗凝剂。第19页/共57页（一）血常规检验标本

一般用EDTA-2K(EDTA-K2•2H2O)1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。

采血注意事项：１.应按抗凝管刻度准确采静脉血1.5-２ml，不能超过2ml。

２.采血后立即轻轻颠倒混匀（5-8次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；

３.采血后应尽快送检（为保证结果准确需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过2hWBC形态会发生改变）。第20页/共57页(二）凝血检测（PT、APTT、TT、FBG）标本

静脉采集抗凝血（真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂:全血=0.2：1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝绿色帽）

。

采血注意事项：

1.空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；

2.采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT明显缩短）；

3.应单独1管血,必须准确采血至刻度线2ml；

4.采血后应立即上下颠倒混匀5-10次，不可有凝块；

5.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。第21页/共57页（三）红细胞沉降率（血沉，ESR）检验标本

静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血,黑色帽）。

注意事项：

1.单独采1管血,按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂：全血=0.4：1.6）；

2.采血后立即上下颠倒混合5-10次,不可用强力振荡

；

3.采血后应尽快送检（为保证结果准确,必须2h内检测）。第22页/共57页（四）临床生化检验标本

临床生化检验多用非抗凝血标本，应使用真空负压采血管。临床生化检验血标本采集主要注意事项是：

1.多项化学检测一般可采1管血；

2.采血量视检查项目多少不同而异，单管通常为3.0-5.0ml左右；

3.多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管。

第23页/共57页

试管分类抗凝剂类型采血至管子刻度检查项目蓝绿色3.8％枸橼酸钠2ml凝血检查紫色

EDTA—K21.5-2ml血常规、血型绿色

肝素钠3ml微量元素附:真空采血管采集血液标本一览表第24页/共57页黑色3.8％枸橼酸钠2ml血沉黄色

分离胶+促凝剂3ml生化免疫类第25页/共57页尿液常规检查标本

１.尿液常规检查标本应按以下原则进行采集：

（1）新鲜晨尿最佳，门诊病人亦可留随机尿；

（2）尿液采集于干净带盖容器中，不可使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿；

（3）避免混有经血、白带、精液和粪便；

（4）尿液成分定量检查应留取24h防腐混合尿100～200ml（须记取24h尿液总量）；

第26页/共57页２.尿液常规检查标本采集方法：

（１）晨尿最好（安静状态下留取清晨第一次尿，浓缩，无其他影响）；

（２）随机尿较常用（随时留尿，适用于门诊和急诊病人，结果易受多种因素影响）；

（３）清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿，用于病原微生物学培养、鉴定和药敏）；

（４）24h尿（用于尿液成分24h定量检查分析，一定要教会病人留取24h尿正确方法）。

（5）尿检标本应于2小时内送检。第27页/共57页粪便常规检查标本

1.一般应为新鲜的自然排出的粪便３～５ｇ，必要时可肛拭子采取；

2.送检粪便应盛于洁净带盖的塑料盒中送检，要做好标记；

3.要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查；

4.检查蛲虫卵需用透明塑料薄膜于半夜12pm或早晨排便前，于肛门周围皱襞处拭取标本，并立即送检；

5.做大便隐血试验时，应嘱病人检查前3d内禁食肉类、含动物血的食物及某些蔬菜，禁服铁剂和维生素C等对实验有干扰作用的药物。

第28页/共57页其它体液常规检查标本

浆膜腔积液检查标本

（1）浆膜腔积液标本一般由医生无菌穿刺采取；

（2）送检标本量：理学检查、化学检查、细胞学检查各留取２ml；细菌学检查用无菌管采集标本，厌氧菌培养留取１ml，结核菌检查留取１０ml。

（3）标本采集后必须立即送检（否则可出现细胞变性，标本凝集，细菌溶解）；

（4）用于细胞学检查时，可在标本中加适量EDTA盐抗凝，但还须留取１管不加抗凝剂的标本用于观察积液的凝固性；化学检查标本宜用肝素抗凝。第29页/共57页微生物学检验标本第30页/共57页

微生物学检验标本的正确采集﹑运送及处理，与细菌的培养﹑鉴定结果有十分密切的关系；医生﹑护士﹑检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。

第31页/共57页

提高感染样本送检率加强细菌耐药监测

关注细菌性疾病的病原学诊断，已成为临床工作者、临床微生物与微生态工作者、药学家和从事感染控制的工作者共同关注的热门焦点。第32页/共57页

标本采集和运送是细菌培养成功的最最重要的关键但由于标本的采集和运送常由护士或医生或病人自己完成，所以也是最不容易做好的事情，而且不知道问题所在之处，造成的后果是:临床医生最不能接受的问题:阳性率低第33页/共57页标本收集部位

非无菌部位无菌部位眼血液耳脊髓液呼吸道胸膜液消化道腹膜液泌尿道关节液皮肤毛发第34页/共57页

1．微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项（1）标本采集

1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基；

2）尽量在抗生素应用前采集标本，以避免漏检和提高阳性检出率；

3）标本采集应严格执行无菌操作；

4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应加入适量生理盐水保湿送检；

5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，采集后应立即送检；

6）采集标本的容器必须是无菌培养杯或管。

第35页/共57页（2）标本运送

1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；

2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。

（3）标本验收

1）实验室只能接受和处理合格标本；

2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。

第36页/共57页2．微生物学检验标本采集和处理

（1）尿液标本采集和处理

通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；尿液微生物学检验标本采集方法如下。;

1）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌管中留取中段尿液5～10ml

第37页/共57页2）导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送检）

第38页/共57页（2）粪便标本采集和处理

1）采集时间：

①腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；

②伤寒患者于发病2天以后采集粪便；

③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。

2)采集方法：

①

自然排便：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2-3g或1-2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检；

②直肠拭子：用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，标本采集后插入灭菌试管内送检。

第39页/共57页（3）痰及下呼吸道标本采集和处理

1）

自然咳痰法：

①

晨痰为佳；

②

先冷开水漱口清洁口腔和牙齿；

③

再用力咳出呼吸道深部的痰；

④

痰量不得少于1ml；

⑤痰咳出困难时可先雾化吸入NaCl溶液（100g/L，加温到45℃）使痰容易咳出。

2）小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上可送检。

3）支气管镜、支气管穿刺、支气管肺胞灌洗等采集法：此采集方法必须由医生操作。

第40页/共57页（4）血液培养标本

采血时机:在患者寒战时，发热高峰前采集,最好在抗菌治疗前。此时阳性率高。

1)抗生素治疗前，严格无菌静脉采血5～10ml（儿童1～4ml）；

2）无菌注入专用培养瓶（成人、儿童、需氧菌、厌氧菌）中送检；

3）如已用抗生素不能停用时，可于48h内分别于下次用抗生素之前，采取血液标本送检；

4）疑为心内膜炎时，为提高阳性检出率，可酌情不同部位、不同时间，多次采血培养；

第41页/共57页(5）脑脊液培养标本

1)采集时间：怀疑脑膜炎时应立即采集脑脊液，最是在应用抗生素之前采集脑脊液。

2)采集方法：无菌腰穿采集脑脊液3～5ml，分装到3个无菌管中（各1～2ml）。用于细菌和病毒检测时脑脊液量不少于1ml；用于真菌和抗酸杆菌检测脑脊液量不少于2ml。

第42页/共57页（6）穿刺液培养标本

1)采集时间：一般在用抗生素等抗菌药物治疗之前，或在停止使用抗菌药物之后2-3d采集标本。

2)采集方法：

①无菌操作穿刺抽取标本或外科手术采集标本；

②

标本采集量应＞1ml（结核分支杆菌培养时应为1～5ml）；

③

标本采集后注入无菌小瓶或无菌试管中送检；

④可在容器中先加入灭菌肝素然后再加入穿刺液，以防止穿刺液凝固（0.5ml肝素可抗凝5ml标本）第43页/共57页

（7）胃液及胆汁培养标本

抽取空腹胃液5ml，置无菌管内送检；胆汁培养标本由十二指肠引流法或胆囊穿刺法或手术中留取胆汁，采集胆汁量为5ml，置无菌管内送检；胃液和胆汁采集后必须立即送检。

（8）脓汁和病灶分泌物培养标本采集前局部消毒，然后无菌采取脓汁或病灶分泌物或组织。标本采集后立即置无菌管内送检。

第44页/共57页①封闭性脓肿：在病灶局部外表消毒后，以无菌注射器抽取脓液3-5ml

置无菌试管中送检。若怀疑厌氧菌感染时，抽取脓液后立即排尽注射器内的空气，刺入无菌橡皮塞中送检。第45页/共57页②开放性脓肿：先消毒病灶周围，用无菌生理盐水擦去表面渗出物，然后用无菌棉签采取病灶深部脓液及分泌物，置无菌试管中送检。第46页/共57页（9）眼.耳.鼻.咽拭子培养标本用拭子常规采集各种标本。标本采集过程中应注意避免被黏膜上的正常菌群污染，标本采集后连同拭子一起置无菌管内送检。

第47页/共57