血液的流变特性

血液的流变特性— 层流状流淌，则其截面上的流速呈抛物线样分布，这种流体运动特性称为层流。二 血液的黏滞性的与流淌慢的血液层之间便产生内摩擦力，通常称为血液的黏滞性。三切应力SF，那么，驱动各层F/S，就称为切应力，用表示四切应变和切变率液体分层流淌中，在切向力的作用下，液层之间有一速度梯度，两流层间流淌比例增加，这一随时间变化的切应变称为切变率，用γ表示。五牛顿黏滞定律及黏度某些液体流淌时，切应力τ与切变率γ之比为一常数，即τ/γ=η，此即牛系数〔或动力黏度〕简称黏度。(Pa),的单位为秒-1(S-1),因而液体黏度η的单位为(Pa•s)1Pa•s=1000mPa•s〔毫帕•秒〕1Pa•s=1Cp(厘帕)六牛顿液体与非牛顿液体在肯定温度下，液体的黏度值不随切变率变化而变化，为一常数，这类流体〔即流淌曲线直线，如水，血浆等即为牛顿流体。与切变率的关系为γ=f〔τ。对于牛顿流体η为确定黏滞常数，而对于非牛顿流体，该值则不为常数，可用η a

的变化规律随流体的性质不同而存在差异。非牛a

随γ的增加而削减，称为拟塑性流体，血液和多aη性流体。七血液在血管中的流淌形式

随γ的增加而增加，称为膨胀a血液是由多种成分组成的流体，在血管内流淌时，愈靠近血管中心的部位流胞之间的接触时机，从而削减血细胞的黏附，聚拢和沉积的概率。八血液的流变特性根本概念血液黏度：全血为非牛顿流体，全血黏度与血细胞比容和血浆成分有0时，血液为牛顿流体，当血细胞比容大于0.1时,血液则表现出非牛顿流体的特性.随着切变率削减而黏度增高,血细胞比容越高,黏度越大,非牛顿特性越显著.随着切变率增大血液流淌性渐渐似牛顿流体.一般血细胞比容为0.45,当切变率>200/S时,可近似看作是牛顿流体.血浆为牛顿流体,血浆黏度与血浆组成有关,尤其受纤维蛋白原影响较大,20%.血液黏弹性:血液与其他生物体液一样具有黏弹性,黏弹性是血液所兼有的流体黏性的固体弹性的特征,当切变率<0.1/S时,血液中将形成RBC的聚拢体,呈三维网状构造,因此,除黏性外,还表现出黏弹性.RBC在流淌中所发生的分散聚拢有关。当血液处于低剪切运动状态下，可以认为血液为三维等位构造，且没有被破坏，此时呈现较大弹性。随着切变率的增加，血液的剪切力大于其内聚力，三维网状构造被破坏，血液弹性亦渐渐减小。血液在流淌时，除了要消耗抑制摩擦阻力所作RBC缗线状构造分别的能量，但随着缗线状连接的逐步分别，供给的能量也渐渐削减，故在维持肯定的流淌切变率下，其切应力随时间而削减。当切变率在0.1~0.5/S范围内，全红细胞相对运动：血液流淌时，红细胞不仅与血浆一起运动，而且有血液的宏观力学性质。红细胞聚拢：在静止状态下红细胞在血浆中聚拢并形成网络，这种网。红细胞变形：红细胞具有良好的变形性，当红细胞变形性降低时，会红细胞寿命。血液的流变特性全血是非牛顿流体，血浆是牛顿流体。开头流淌。细胞比容在0.1~0.8时,全血黏度与血细胞比容呈正相关。当切变率足够大〔>200/s〕时,全血黏度渐渐降低并趋于一近值,全血体。血浆黏度主要取决于纤维蛋白原浓度影响。血液流变学的临床应用血液的流淌性和黏滞性是保证组织和器官得到足够的血流量，履行其正断，防治，发病机制的争论等具有重要意义。〔一〕为疾病的早期诊断供给帮助多发性骨髓瘤。由于血液中蛋白特别上升，血浆黏度明显增加，进而血液黏度上升。血浆蛋白增加也可以导致红细胞聚拢，特别在低切变率时更为明显，从而进一步导致全血黏度的上升。②原发性或继发性红细胞增多症，肺原性心脏病，烧伤，严峻脱水等可造成红细胞数量明显增多，导致血液黏度上升。③血液病，如特别Hb症，球形红细胞增多症等，导致血液流变特性的变化。④其他，很多疾血浆黏度红细胞聚拢性上升，红细胞变形性下降；糖尿病，外周动脉性疾病等也有各种血液流变学指标的变化。肝脏疾病等，均伴有不同程度的血液黏度等流变学指标的变化。〔二〕推断恶性肿瘤的血流状况肿瘤细胞的转移〔三〕疾病监测的疗效观看态，有助于防止疾病的发生进展。胞比容和血液黏度是推断真性红细胞增多症患者临床疗效的指标。常用的血液流变学检测工程血细胞比容，ESR，血小板黏附功能与聚拢性，全血黏度，血浆黏度，红细胞变形性，红细胞聚拢性，红细胞电泳以及体外血栓形成试验等。血液黏度的测定轴锥板式。毛细管式黏度计测定法大，所用时间越长。操作：静脉取血，肝素抗凝。将样品管置于水浴中，恒温5分种，混匀后加样测定。9g/L氯化钠溶液流过时间。计算每个平均切变率下的血液表观黏度。同轴锥板式黏度计测定法原理：在半径为R的圆形平板上设置一个大角度的圆锥，平板局部为样品杯，力距与样品黏度间均成正比关系。操作：质量掌握标本采集与抗凝统一采血时间和方法，空腹坐位，肘静脉采血。采血时最5S后开头采血，抽血负压不宜过大。应承受固体抗凝剂或高浓度的液体抗凝剂，以削减对血液的稀释作用。血液与抗凝剂应马上混匀避开凝固。4小时，不宜在冰箱内保存。血浆制备以3000r/min30min后，取上层血浆测定。测定温度最好掌握在37℃，温度过高血液黏度下降。承受毛细管法测定每做完一个样品后必需用待测样品冲洗毛细管并吸干，以免其残留物对下一个样品测量结果产生影响。承受锥板式黏度计测定时，锥板间隙应严格按操作规程调试，并用标准油校正。样品用量由标定时的标准油用量而定，并应严格掌握样品计算精度。样品量过多过少均将对测量结果产生较大影响。样品移入移入时避开产生气泡。方法学评价毛细管黏度计检测法适用于血浆，血清等低黏度的标本测定；竖直型毛细管式黏度计可以调整试样用量。缺点：由于毛细管两端的压力差较大，切变率较高，难以反映血液等非牛顿流体的黏度特性；不能直接测定在肯定切变率下的表观黏度；毛细管式黏度计易受外表张力的影响，血液的毛细管内流淌过程中，前面的凸液面和后面的凹液面均会由于外表张力的作用产生一个与运动方向相反的阻力，这种阻力会影响黏度测定的结果；毛细管的轴0，管壁处切变率最大，因此，测定全血黏度值的误在高切变率范围内，一局部驱动力以动能形式存在于液体中，而不是完全被黏性磨擦所消耗，这也会导致测定误差。旋转式黏度计检测法学争论较抱负的仪器。血液黏度测定的影响因素构造，材料和流场切变率等。血细胞比容：在同样的切变率下，全血和红细胞悬浮液的黏度都随血的增高，低切变率下的表观黏度增加更为明显。当血细胞比容>45%时，血液黏度随血细胞比容以更大的幅度增加。红细胞变形性：是影响高切变率下血液黏度的重要因素。正常的红细就表现为黏度随切变率上升而减小。红细胞的聚拢：是低切变率下影响血液黏度的主要因素，在静息状态分散，黏度变小。PH：主要引起红细胞聚拢和红细胞变形性的转变，从而对血液黏度产生影响。PH降低，可使红细胞膜变硬，红细胞的变形力量低切变率下的血液黏度降低，高切变率下的血液黏度增高。血浆黏度：对全血黏度有很大影响。血浆黏度的大小打算于血浆蛋白的球蛋白。温度：血浆黏度一般随温度的上升而降低。温度增高将导致红细胞的响较为简单，37℃左右，红细胞都将有最正确变形性，温度的过高或过49℃液黏度不同程度的上升。管径与管壁：全血黏度与它流过的管子口径和管壁有关。抗凝