不同代谢产物对免疫细胞的调节作用,免疫学论文

不同代谢产物对免疫细胞的调节作用,免疫学论文摘要：12/15-脂氧合酶(12/15-LOX)是LOX的家族成员,可通过对多不饱和脂肪酸的酶促氧化反响生成多种具有生物活性的脂质代谢产物,如羟基二十碳四烯酸、脂氧素等。免疫细胞是免疫系统的重要组成部分,主要发挥免疫防御、免疫自稳和免疫监视作用。越来越多的研究表示清楚,12/15-LOX及其代谢产物通过调节多种免疫细胞的发育及生物活性,在炎症和免疫反响中发挥重要作用。有大量报道在疾病(腹膜炎、哮喘、糖尿病、心血管疾病等)进展经过中,12/15-LOX对固有免疫和适应性免疫均有调节作用。在不同的病理生理状态下,12/15-LOX对不同免疫细胞调控的详细作用及机制特别复杂且相互关联。本文关键词语：12/15-脂氧合酶;免疫细胞;免疫调节;Abstract：12/15-lipoxygenase(12/15-LOX)aremembersoftheLOXfamily,whichmediatetheenzymaticoxidationofpolyunsaturatedfattyacids,therebycontributingtothegenerationofvariousbioactivelipidmediators,likehydroxyeicosatetraenoicacidsandlipoxins.Immunecellsareanindispensablepartoftheimmunesystemandplayanimportantroleinimmunedefense,immunehomeostasisandimmunesurveillance.Moreandmorestudieshaveaddressedtheroleof12/15-LOXanditsmetabolitesoninflammationandimmunitybyregulatingthedevelopmentandbiologicalactivityofvariousimmunecells.Therehavebeennumerousreportsindicating12/15-LOXsregulatoryeffectsoninnateandadaptiveimmunityduringdifferentdiseaseprogression,suchasperitonitis,asthma,diabetes,cardiovasculardiseases,etc.However,thebiochemicalmechanismsbywhich12/15-LOXregulatesimmunecellfunctionarecomplexandinterrelatedunderdifferentpathologicalandphysiologicalconditions.Keyword：12/15-lipoxygenases;Immunecells;Immunoregulation;人类有6种编码脂氧合酶(lipoxygenase,LOX)的基因,包括花生四烯酸(arachidonicacid,AA)5-脂氧合酶(arachidonate5-lipoxygenase,ALOX5)、ALOX12、ALOX12B、ALOX15、ALOX15B、ALOXE3,华而不实由ALOX15基因编码的15-LOX-1是人类脂类代谢的关键酶,可将花生四烯酸(arachidonicacid,AA)、亚油酸(linolenicacid,LA)、二十二碳六烯酸(docosahexaenoicacid,DHA)及其他多不饱和脂肪酸(polyunsaturatedfattyacids,PUFAs)转变为有生物活性的脂质代谢产物,如脂氧素、保卫素、消退素、Maresins、12-羟基二十碳四烯酸(12-hydroxyeicosate-traenoicacid,12-HETE)、15-HETE等,进而影响细胞构造、代谢及信号转导。近年来,将不同物种由ALOX15基因编码的产物统称为12/15-LOX,它们构造不同但功能类似,例如小鼠12-LOX、15-LOX和兔15-LOX-1等。尽管12/15-LOX与多种慢性炎性疾病的发病机制有关,但它的生理功能包括强大的免疫调节特性,在生理学上有助于消炎和去除炎症相关组织损伤,代表产物为促炎症消退介质(specializedpro-resolvinglipidmediators,SPMs),这是一类具有类似促炎症消退作用的12/15-LOX的代谢产物,包括脂氧素、消退素、保卫素、Maresins[1,2]。可见,12/15-LOX在免疫和组织稳态中的双刃剑作用,免疫细胞在华而不实的作用不可忽视,现就12/15-LOX代谢及其产物对免疫细胞的详细调控作用及机制予以综述。1、12/15-LOX及其代谢产物的关系12/15-LOX的详细代谢经过,如此图1所示:(1)若代谢底物为DHA,12/15-LOX可将其转化为氢过氧化衍生物17S-过氧化DHA(17S-hydroperoxy-docosahexaenoicacid,17S-HpDHA)和14S-HpDHA,前者经进一步代谢可生成消退素和保卫素,后者主要构成maresins;(2)若底物为AA,12/15-LOX可将其催化为12S-过氧化二十碳四烯酸(12S-hydroperoxy-eicosatetraenoicacid,12S-HpETE)和15S-HpETE的混合物,不同物种两者比例不同。12S-HpETE和15S-HpETE可在磷脂氢谷胱甘肽过氧化物酶(phospholipid-hydroperoxideglutathioneperoxidase,phGPx)的作用下分别转化为12S-HETE和15S-HETE,且15S-HpETE可以经5-LOX的作用生成脂氧素;(3)若代谢底物为LA,12/15-LOX可将其代谢为13S-氢过氧化十八碳二烯酸(13S-hydroperoxy-9z,11E-octadecadienoicacid,13S-HpODE),后者在phGPx的作用下生成13S-羟基十八碳二烯酸(13S-hydroxyoctadecadienoicacid,13S-HODE);(4)若底物为酯化PUFAs,则在12/15-LOX的作用下生成对应的酯化代谢产物,称为12/15-LOX源性氧化磷脂(oxidizedphospholipids,OxPL),如磷脂酰胆碱(phosphatidylcholine,PC)和磷脂酰乙醇胺(phosphatidylethanolamine,PE)酯化产物:12-HETE-PC、15-HETE-PC、12-HETE-PE、15-HETE-PE等[3]。图112/15-LOX及其代谢产物的关系12/15-LOX:12/15-脂氧合酶;PUFAs:多不饱和脂肪酸;LA:亚油酸;AA:花生四烯酸;DHA:二十二碳六烯酸;OxPL:12/15-LOX源性氧化磷脂;13S-HPODE:13S-氢过氧十八碳二烯酸;13S-HODE:13S-羟基十八碳二烯酸;phGPx:磷脂氢谷胱甘肽过氧化物酶;12S-HpETE:12S过氧化二十碳四烯酸;15S-HpETE:15S过氧化二十碳四烯酸;Hepoxilins:羟基环氧素;12-HETE:12-羟基二十碳四烯酸;15-HETE:15-羟基二十碳四烯酸;5-LOX:5-脂氧合酶;17S-HpDHA:17S-过氧化二十二碳六烯酸;14S-HpDHA:14S-过氧化二十二碳六烯酸;14-HDHA:14-羟基二十二碳六烯酸2、不同代谢产物对免疫细胞的调节作用2.1、脂氧素脂氧素主要由脂氧素A4(lipoxinsA4,LXA4)、脂氧素B4(lipoxinsB4,LXB4)、阿司匹林诱生型脂氧素组成。脂氧素的合成需要12/15-LOX和5-LOX两种酶共同完成,由于这两种酶不是总由一样类型的细胞表示出,所以从AA到脂氧素的转化不仅能够在同一类型细胞中发生,而且能够通过不同类型细胞合作完成。脂氧素能够通过与2型甲酰肽受体2(formylpeptidereceptor2,FPR2),又称脂氧素A4受体(lipoxinA4receptor,ALX)结合触发各种细胞信号级联反响,包括磷脂酰肌醇-3-激酶/蛋白激酶B(phosphatidylinositol3-kinase/proteinkinaseB,PI3K/Akt)、细胞因子信号转导抑制分子、磷脂酶C、肌醇多磷酸5-磷酸酶、亚硝酸盐、RAS蛋白超家族、髓过氧化物酶(myeloperoxidase,MPO)等。脂氧素对不同类型细胞产生不同效应:(1)自然杀伤(naturalkiller,NK)细胞和2型固有淋巴细胞(innatelymphoidcell2,ILC2)外表均表示出ALX/FPR2。对重症哮喘患者的临床分析及细胞实验表示清楚,LXA4通过与NK和ILC2细胞外表ALX/FPR2结合,加强NK细胞对嗜酸粒细胞的促凋亡作用,减少ILC2分泌IL-13,罢了知IL-13在IgE介导的Ⅰ型变态反响中具有重要意义[4]。(2)急性肺损伤(角叉菜胶、MPO及大肠埃希菌诱导)小鼠模型中,中性粒细胞首先被募集到感染部位,阿司匹林诱导LXA4能够促进中性粒细胞凋亡小体的构成,防止中性粒细胞过度浸润,促进炎症消退[5]。体外细胞实验与此结果一致,ElKebir等[5]观察到阿司匹林诱导LXA4促进MPO共孵育的人中性粒细胞的凋亡发现有关机制包括下调M2整合素(macrophage-1antigen,Mac-1)的表示出;减弱MPO诱导的细胞外信号调节激酶的活化和Akt介导的Bcl-2相关促凋亡蛋白磷酸化;减少抗凋亡蛋白Mcl-1的表示出。(3)随着疾病进展,巨噬细胞被募集到感染部位,脂氧素可促进单核/巨噬细胞趋化和黏附,通过快速激活巨噬细胞PI3K/Akt和胞外信号调节蛋白激酶/核转录因子2信号转导通路,保卫细胞线粒体功能,强化抗氧化防御系统,延迟巨噬细胞凋亡,有助于巨噬细胞对中性粒细胞凋亡小体和病原体的吞噬,促进炎症消退[6]。(4)Tani等[7]在对酵母多糖诱导的腹膜炎小鼠模型的研究中发现,LXA4存在时,嗜酸粒细胞促进巨噬细胞生成趋化因子CXCL13,后者在抗炎经过中促使引流淋逢迎肿大和病原菌的吞噬。(5)Ramon等[8]在对人和小鼠外周血B细胞及鸡卵白蛋白抗原刺激小鼠进行研究后发现,LXA4通过与B细胞外表ALX/FPR2受体结合,发挥抗B细胞增殖及减少记忆B细胞抗体数量的作用。研究发现,小鼠骨髓12/15-LOX能够调节体内B细胞数量和先天性免疫抗体水平,12/15-LOX基因剔除小鼠脾脏B细胞数量和肝、肺、血清中的总IgM显着高于野生型小鼠,但详细调控机制未明,可能也与脂氧素相关[9]。(6)LXA4和白三烯B4(leukotrieneB4,LTB4)能促使幼稚CD4+T细胞向T辅助滤泡细胞转化,后者活化幼稚B淋巴细胞构成生发中心[10]。(7)LXA4对树突状细胞的作用多样,如LXA4不仅可抑制病原体刺激后树突状细胞的增殖和IL-12的产生,还能够通过芳香烃受体和ALX上调细胞因子信号传导抑制因子2的表示出来阻断炎症信号[11,12]。2.2、保卫素保卫素是一类由12/15-LOX催化DHA构成的脂质代谢产物,具有抗炎和器官保卫效应。保卫素可分为保卫素D1(protectinD1,PD1)、保卫素DX(protectinDX,PDX)、阿司匹林诱生型PD1、反式阿司匹林诱生型PD1四类,华而不实对前两种研究较多。PD1可由神经胶质细胞、中性粒细胞、巨噬细胞、T细胞、视网膜色素上皮细胞等产生,在诸多炎症模型中被证实有抗炎作用,如在缺血性脑卒中小鼠模型中发现PD1抑制白细胞浸润、核因子B(nuclearfactorkappaB,NF-B)和环加氧酶2的产生[13]。在哮喘小鼠模型中减少气道嗜酸粒细胞和T淋巴细胞的招募、减少黏液分泌和促炎细胞因子产生,可降低气道高反响性[14]。在脂多糖(lipopolysac-charide,LPS)诱导的急性肺损伤小鼠,PD1可加快中性粒细胞凋亡,加速炎症的消退[15]。Ariel等[16]通过体外细胞实验(人外周T淋巴细胞)证实,PD1减少T细胞分泌肿瘤坏死因子(tumornecrosisfactor,TNF)和干扰素(interferon,IFN),促进T细胞凋亡,促凋亡机制与PD1诱导细胞膜脂筏聚集和CD59聚集有关,两者共同介导T细胞凋亡的信号转导。PD1不仅直接促进巨噬细胞对凋亡中性粒细胞的非炎症性吞噬,还可上调中性粒细胞和T细胞外表C-C趋化因子受体5(C-Cchemokinereceptor5,CCR5)的表示出,均有利于凋亡中性粒细胞的快速去除[17,18]。PDX是PD1的同分异构体,在术后肠梗阻小鼠、LPS诱导的急性肺损伤小鼠及脓毒症小鼠均观察到PDX减少中性粒细胞浸润,增加巨噬细胞比例,发挥抗炎与器官保卫作用[19,20,21,22]。除此之外,PDX还能够促使腹腔巨噬细胞向抗炎型M2型转化,加强巨噬细胞的吞噬功能,转化机制与过氧化物酶体增殖物激活受体(peroxisomeprolifera-tor-activatedreceptorgamma,PPAR)信号通路激活有关[21]。体外细胞实验发现,PDX减少人中性粒细胞活性氧类(reactiveoxygenspecies,ROS)的产生,抑制复原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸氧化酶的激活和MPO的释放[23]。2.3、消退素消退素包括E类消退素(E-seriesresolvins,RvE)即RvE1-RvE3、D类消退素(D-seriesresolvins,RvD)即RvD1-RvD6、阿司匹林触发消退素(aspirin-triggeredlipoxin,AT-Rv),华而不实RvE3和RvD的合成与12/15-LOX密切相关。Isobe等[24]初次分离并报道RvE3,嗜酸粒细胞中的12/15-LOX催化二十碳五烯酸生成中间代谢产物17,18-diHEPE,17,18-diHEPE有两种立体异构体,均能够进一步生成RvE3。细胞和动物实验均表示清楚,RvE3对中性粒细胞的炎性浸润有强大的抑制作用。RvD1、AT-RvD1、RvD3、AT-RvD3、RvD5均能够通过G蛋白偶联受体32(Gprotein-coupledreceptors32,GPR32又称RvD1受体)激活靶细胞发挥生物学作用[25,26,27]。GPR32蛋白是一种G蛋白偶联受体,主要在人外周血中中性粒细胞、活化CD+8T细胞、CD+4T细胞、Th17细胞、组织巨噬细胞、小气道上皮细胞和脂肪组织中表示出[28,29,30]。RvD1还能够通过G蛋白偶联受体FPR2/ALX发挥抗炎作用[31]。RvD1对免疫细胞的调节作用多样,如抑制中性粒细胞趋化,降低巨噬细胞Toll样受体介导的巨噬细胞活化,降低脓毒症小鼠胸腺CD3+T淋巴细胞的凋亡率,抵消脓毒症对免疫细胞的部分抑制作用[32]。另据报道,RvD1不仅能够直接抑制人B细胞产生IgE,还可抑制幼稚淋巴细胞向分泌IgE型B细胞转化,机制为RvD1特异性阻断IgE的重链基因(εGLT)的表示出,这种抑制作用在哮喘和过敏性疾病中对机体有重要的保卫作用[33]。研究发现GPR18为RvD2的一种G蛋白偶联受体,在人中性粒细胞、单核巨噬细胞均有表示出,RvD2通过与GPR18结合抑制中性粒细胞浸润,加强巨噬细胞对细菌的吞噬作用,促进炎症快速消退[34]。有研究表示清楚,RvD1和RvD2在器官再灌注损伤经过中发挥器官保卫作用,GPR18缺陷小鼠的RvD2保卫作用显着降低,可能与抑制中性粒细胞浸润有关[34,35,36]。RVD1和RVD2还能够抑制促炎因子释放,增加抗炎因子产生。Gu等[37]发现,RVD1、RVD2与相应受体结合后均可通过PI3K-Akt-糖原合成酶激酶3(glycogensynthasekinase3,GSK3)发挥抗炎作用,被PI3K激活的Akt通过磷酸化GSK3强有力地抑制GSK3的促炎作用,磷酸化的GSK3可抑制促炎细胞因子(如TNF、IL-1、IL-8、IL-12p40)的产生,磷酸化GSK3还能够通过活化IL-10转录加强子-环腺苷酸反响元件结合蛋白(cAMP-responseelementbindingprotein,CREB)促进抗炎因子IL-10的转录。RvD3在炎症晚期出现时,与人巨噬细胞外表GPR32受体结合,加强巨噬细胞对外源性病原体颗粒的吞噬功能,同时RvD3还可抑制中性粒细胞跨越上皮细胞,减少中性粒细胞浸润,减少炎症趋化因子,如单核细胞趋化因子1(monocytechemoattractantprotein-1,MCP-1)、角质细胞趋化因子等的释放。外源性补给RvD3和AT-RvD3可降低酵母聚糖刺激的小鼠炎性物质LTB4、前列腺素D2和血栓烷素B2水平,同时增加抗炎物质前列腺素E2水平,表示清楚RvD3不仅能够直接调节免疫细胞功能,还能够通过调节其他炎性介质水平间接调控免疫细胞及炎性因子水平,阻断机体的炎症瀑布反响[38]。2.4、MaresinsMaresins主要包括Maresin1(MaR-1)、Maresin2(MaR-2)。由DHA转化为MaR-1的经过中,13S,14S-环氧化物中间体(13,14-epoxy-maresin,13,14-eMaR)能够通过直接抑制LTA4水解酶,选择性减少LTB4的生成。MaR-1和13,14-eMaR都能够调节巨噬细胞亚型,促使巨噬细胞由M1型向M2型转化[39,40]。MaR-1作为SPMs的一种,起着与RvD1和RvD2类似的作用,如减少急性炎症时中性粒细胞浸润、增加巨噬细胞对细菌和凋亡细胞的吞噬作用。研究发现,在适应性免疫中SPMs同样发挥重要作用,如抑制人外周血CD+4辅助性T细胞(helperTcell,Th细胞)1和Th17细胞及CD+8T细胞活化,减少细胞因子(如TNF-、IFN-、TNF-、IFN-以及IL-17)分泌[41]。SPMs还能够下调Th1细胞和Th17细胞的特征转录因子T-bet和Rorc,阻止幼稚T细胞向Th1细胞和Th17细胞分化,与GPR32和ALX/FPR2受体途径密切相关[41]。Deng等[42]将DHA在人12-LOX和可溶性环氧化物水解酶的作用下生成的产物13R、14S-diHDHA命名为MaR2。MaR2与MaR1类似,表现出强大的抗炎作用,如减少小鼠腹膜炎中性粒细胞的浸润,加强人巨噬细胞对酵母多糖的吞噬作用,但对人巨噬细胞的促吞噬及胞葬效应不如MaR1。2.5、15S-HETE15S-HETE和13-HODE通过激活PPAR通路不仅能够促进巨噬细胞外表清道夫受体CD36的表示出和泡沫细胞的构成,还可抑制IL-2的产生以及T细胞的增殖[43]。15S-HETE诱导单核细胞迁移及与内皮细胞的黏附经过,与CREB刺激IL-17A基因转录加强有关,且需要ROS存在。Kotla等[44]通过体内和体外实验说明了15S-HETE介导单核细胞向炎症部位趋化的部分机制,在ROS存在的前提下,15S-HETE可诱导钙/钙调蛋白依靠性蛋白激酶Ⅳ(calcium/calmodulin-dependentproteinkinasetypeⅣ,CaMKⅣ)的丝氨酸磷酸化,磷酸化CaMKⅣ具有催化活化T细胞核因子3和激活蛋白1(activatorprotein1,AP-1)转录因子亚基构成异源二聚体的能力,该异源二聚体与组织因子的启动子近端的AP-1位点结合,以激活组织因子的转录,而组织因子的表示出被证实与单核细胞向炎症区域迁徙和趋化密切相关,抗组织因子抗体可抑制15S-HETE诱导的单核细胞的迁移。2.6、12S-HETE12S-HETE作为促炎介质可促进MCP-1的合成,发挥对单核细胞的趋化作用,这与12S-HETE诱导蛋白激酶C、p38活化和加强复原型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸氧化酶活性有关[45]。12S-HETE还能加强巨噬细胞的吞噬功能,促进巨噬细胞分泌炎性因子IL-6、TNF-、IL-1和IL-12[46,47]。在P选择素或LPS存在的情况下,12S-HETE可促进单核细胞分泌TF,以此促进血栓构成。2.7、氧化磷脂(oxidizedphospholipids,OxPL)12/15-LOX途径产生的OxPL也发挥重要的免疫调节作用。OxPL可通过抑制中性粒细胞氧化酶复合物的构成特异性抑制超氧化物的释放,但不影响中性粒细胞的活力[48]。在LPS诱导的小鼠腹膜炎模型中观察到12-HETE-PE在炎症峰值时消失,在炎症消退阶段可重新出现,发现人类同系物15-HETE-PE能够抑制单核细胞在LPS刺激下细胞因子(如TNF-和G-CSF)的产生,机制可能是通过与LPS竞争形式辨别受体(如CD14和LPS结合蛋白)以及干扰NF-B信号转导而发挥有效的抗炎作用[49,50]。用卵清白蛋白使小鼠发生肺部过敏反响,第6天检测小鼠的肺组织匀浆发现,12-HETE-PE大幅度升高,以为与嗜酸粒细胞的涌入和Th2细胞因子的诱导释放有关[49]。凋亡细胞的去除主要由选择性表示出12/15-LOX的组织固有巨噬细胞完成,12/15-LOX源性产物OxPL通过与炎性吞噬细胞外表凋亡细胞受体乳脂肪球表皮生长因子8结合,阻断凋亡细胞与其受体的结合,便阻断了凋亡细胞对炎性单核细胞、巨噬细胞和树突状细胞的呈递作用,保证了凋亡细胞的非炎症性去除,避免凋亡细胞衍生的本身抗原所致本身免疫性疾病[51]。另有研究报道,12/15-LOX下游代谢产物氧化磷脂酰胆碱可促进树突状细胞的成熟和活化,抑制Th17细胞分化,进一步抑制Th17细胞诱导的本身免疫性疾病[52]。3、其他相关研究心脏衰竭时,12/15-LOX在巨噬细胞浸润、MCP-1升高、心脏纤维化中发挥重要作用[53]。12/15-LOX的表示出量与巨噬细胞源性泡沫细胞的构成、动脉粥样硬化程度呈正相关,而胰岛素生长因子能够通过下调12/15-LOX的表示出来抑制脂质氧化和泡沫细胞的构成[54]。我们国家有学者发现,人脐带间充质干细胞通过抑制小鼠肠腔巨噬细胞中15-LOX-1、IL-6和p-STAT3的表示出,减轻葡聚糖硫酸钠诱导的小鼠肠道炎症性疾病,为炎症性肠病的治疗提供了参考[55]。12/15-LOX介入调控祖细胞和骨髓来源巨噬细胞的分化和增殖,12/15-LOX缺陷的小鼠骨髓生成粒细胞增加,而巨噬细胞减少,这与IFN调控因子8的核周积聚有关[56]。4、小结12/15-LOX及其代谢产物对免疫细胞的调节主要具体表现出在下面3个方面:(1)调控免疫细胞介入炎症免疫反响,尽快去除病原菌,减轻炎症反响。如脂氧素、消退素、保卫素、Maresins减少中性粒细胞的浸润,加强巨噬细胞对病原菌及凋亡中性粒细胞的吞噬作用,减少炎性因子的分泌;保卫素阻断T细胞向炎性部位迁移,减少TNF和IFN-分泌,促进T细胞凋亡;15S-HETE拮抗LTB4,抑制中性粒细胞对炎症的过度反响。(2)减少本身免疫性疾病的发生,维持机体免疫系统平衡与稳态。如LXA4对嗜酸粒细胞的促凋亡作用,减少IgE介导的Ⅰ型变态反响;OxPL对AC的非炎症性去除,避免AC衍生的本身抗原所致本身免疫性疾病,OxPL抑制Th17细胞分化,进而抑制Th17细胞诱导的本身免疫性疾病等。(3)抗免疫细胞恶性增殖,调控免疫细胞的数量及其成熟经过和亚型转化。如脂氧素抑制中性粒细胞、B细胞、T细胞、树突状细胞和肿瘤细胞增殖,氧化磷脂酰胆碱促进树突状细胞的成熟与活化,MaR1和13,14-eMaR促进巨噬细胞由M1型向M2型转化等。12/15-LOX及其具有生物活性的代谢产物对免疫细胞进行精细的调控,它们之间促炎与抗炎作用保持深奥玄妙的平衡,最终维持机体的稳态。12/15-LOX的每个代谢产物对不同类型的免疫细胞在不同情况下发挥不同的调节作用,12/15-LOX对免疫细胞的作用即是其所有代谢产物的作用总和,但至今某些抗炎和促炎机制尚不明确,仍需要进一步研究,怎样对12/15-LOX及其代谢产物进行调控来预防或治疗炎症性疾病、本身免疫性疾病以及肿瘤性疾病是今后的研究目的。以下为参考文献：[1]IvanovI,KuhnH,HeydeckD.Structuralandfunctionalbiologyofarachidonicacid15-lipoxygenase-1(ALOX15)[J].Gene,2021,573(1):1-32.[2]欧唯为,肖继,陈泉,等.特异性促炎症消退介质在炎症调控中的研究进展[J].临床与病理杂志,2021,36(11):1873-1877.[3]AckermannJA,HofheinzK,ZaissMM,etal.Thedouble-edgedroleof12/15-lipoxygenaseduringinflammationandimmunity[J].BiochimBiophysActa,2021,1862(4):371-381.[4]BarnigC,CernadasM,DutileS,etal.LipoxinA4regulatesnaturalkillercellandtype2innatelymphoidcellactivationinasthma[J].SciTranslMed,2020,5(174):174ra26.[5]ElKebirD,JzsefL,PanW,etal.15-epi-lipoxinA4inhibitsmyeloperoxidasesignalingandenhancesresolutionofacutelunginjury[J].AmJRespirCritCareMed,2018,180(4):311-319.[6]PrietoP,CuencaJ,TravsPG,etal.LipoxinA4impairmentofapoptoticsignalinginmacrophages:ImplicationofthePI3K/AktandtheERK/Nrf-2defensepathways[J].CellDeathDiffer,2018,17(7):1179-1188.[7]TaniY,IsobeY,ImotoY,etal.EosinophilscontroltheresolutionofinflammationanddraininglymphnodehypertrophythroughtheproresolvingmediatorsandCXCL13pathwayinmice[J].FASEBJ,2020,28(9):4036-4043.[8]RamonS,BancosS,SerhanCN,etal.LipoxinA4modulatesadaptiveimmunitybydecreasingmemoryB-cellresponsesviaanALX/FPR2-dependentmechanism[J].EurJImmunol,2020,44(2):357-369.[9]LauderSN,TyrrellVJ,Allen-RedpathK,etal.Myeloid12/15-LOXregulatesBcellnumbersandinnateimmuneantibodylevelsinvivoversion1;referees:2approved,1approvedwithreservations[J].WellcomeOpenRes,2021,2:1.[10]NagayaT,KawataK,KamekuraR,etal.LipidmediatorsfosterthedifferentiationofTfollicularhelpercells[J].ImmunolLett,2021,181:51-57.[11]AlibertiJ,HienyS,ReiseSousaC,etal.Lipoxin-mediatedinhibitionofIL-12productionbyDCs:Amechanismforregulationofmicrobialimmunity[J].NatImmunol,2002,3(1):76-82.[12]MachadoFS,JohndrowJE,EsperL,etal.Anti-inflammatoryactionsoflipoxinA4andaspirin-triggeredlipoxinareSOCS-2dependent[J].NatMed,2006,12(3):330-334.[13]MarcheselliVL,HongS,LukiwWJ,etal.Noveldocosanoidsinhibitbrainischemia-reperfusion-mediatedleukocyteinfiltrationandpro-inflammatorygeneexpression[J].JBiolChem,2003,278(44):43807-43817.[14]LevyBD,KohliP,GotlingerK,etal.ProtectinD1isgeneratedinasthmaanddampensairwayinflammationandhyperresponsiveness[J].JImmunol,2007,178(1):496-502.[15]LiX,LiC,LiangW,etal.ProtectinD1promotesresolutionofinflammationinamurinemodeloflipopolysaccharide-inducedacutelunginjuryviaenhancingneutrophilapoptosis[J].ChinMedJ(Engl),2020,127(5):810-814.[16]ArielA,LiPL,WangW,etal.ThedocosatrieneprotectinD1isproducedbyTH2skewingandpromoteshumanTcellapoptosisvialipidraftclustering[J].JBiolChem,2005,280(52):43079-43086.[17]SchwabJM,ChiangN,AritaM,etal.ResolvinE1andprotectinD1activateinflammation-resolutionprogrammes[J].Nature,2007,447(7146):869-874.[18]ArielA,FredmanG,SunYP,etal.ApoptoticneutrophilsandTcellssequesterchemokinesduringimmuneresponseresolutionthroughmodulationofCCR5expression[J].NatImmunol,2006,7(11):1209-1216.[19]SteinK,StoffelsM,LyssonM,etal.Arolefor12/15-lipoxygenasederivedproresolvingmediatorsinpostoperativeileus:protectinDX-regulatedneutrophilextravasation[J].JLeukocBiol,2021,99(2):231-239.[20]谭雯.保卫素DX对急性肺损伤的保卫效应及其相关机制[D].武汉:华中科技大学,2021.[21]夏海发.ProtectinDX对脓毒症小鼠的治疗作用及其相关机制研究[D].武汉:华中科技大学,2021.[22]TanW,ChenL,WangYX,etal.ProtectinDXExhibitsProtectiveEffectsinMouseModelofLipopolysaccharide-InducedAcuteLungInjury[J].ChinMedJ(Engl),2021,131(10):1167-1173.[23]LiuM,BoussettaT,Makni-MaalejK,etal.ProtectinDX,adoublelipoxygenaseproductofDHA,inhibitsbothROSproductioninhumanneutrophilsandcyclooxygenaseactivities[J].Lipids,2020,49(1):49-57.[24]IsobeY,AritaM,IwamotoR,etal.Stereochemicalassignmentandanti-inflammatorypropertiesoftheomega-3lipidmediatorresolvinE3[J].JBiochem,2020,153(4):355-360.[25]KrishnamoorthyS,RecchiutiA,ChiangN,etal.ResolvinD1bindshumanphagocyteswithevidenceforproresolvingreceptors[J].ProcNatlAcadSciUSA,2018,107(4):1660-1665.[26]SerhanCN,ChiangN,DalliJ,etal.Lipidmediatorsintheresolutionofinflammation[J].ColdSpringHarbPerspectBiol,2020,7(2):a016311.[27]OrrSK,ColasRA,DalliJ,etal.ProresolvingactionsofanewresolvinD1analogmimeticqualifiesasanimmunoresolvent[J].AmJPhysiolLungCellMolPhysiol,2021,308(9):L904-911.[28]SchmidM,GemperleC,RimannN,etal.ResolvinD1PolarizesPrimaryHumanMacrophagestowardaProresolutionPhenotypethroughGPR32[J].JImmunol,2021,196(8):3429-3437.[29]NorlingLV,DalliJ,FlowerRJ,etal.ResolvinD1limitspolymorphonuclearleukocyterecruitmenttoinflammatoryloci:Receptordependentactions[J].ArteriosclerThrombVascBiol,2020,32(8):1970-1978.[30]HsiaoHM,ThatcherTH,LevyEP,etal.ResolvinD1attenuatespolyinosinic-polycytidylicacid-inducedinflammatorysignalinginhumanairwayepithelialcellsviaTAK1[J].JImmunol,2020,193(10):4980-4987.[31]KrishnamoorthyS,RecchiutiA,ChiangN,etal.ResolvinD1receptorstereoselectivityandregulationofinflammationandproresolvingmicroRNAs[J].AmJPathol,2020,180(5):2021-2027.[32]ChenF,FanXH,WuYP,etal.ResolvinD1improvessurvivalinexperimentalsepsisthroughreducingbacterialloadandpreventingexcessiveactivationofinflammatoryresponse[J].EurJClinMicrobiolInfectDis,2020,33(3):457-464.[33]KimN,RamonS,ThatcherTH,etal.Specializedproresolvingmediators(SPMs)inhibithumanB-cellIgEproduction[J].EurJImmunol,2021,46(1):81-91.[34]ChiangN,DalliJ,ColasRA,etal.IdentificationofresolvinD2receptormediatingresolutionofinfectionsandorganprotection[J].JExpMed,2021,212(8):1203-1217.[35]KangJW,LeeSM.ResolvinD1protectstheliverfromischemia/reperfusioninjurybyenhancingM2macrophagepolarizationandefferocytosis[J].BiochimBiophysActa,2021,1861(9PtA):1025-1035.[36]ZhaoQ,WuJ,LinZ,etal.ResolvinD1AlleviatestheLungIschemiaReperfusionInjuryviaComplement,Immunoglobulin,TLR4,andInflammatoryFactorsinRats[J].Inflammation,2021,39(4):1319-1333.[37]GuZ,LamontGJ,LamontRJ,etal.ResolvinD1,resolvinD2andmaresin1activatetheGSK3betaanti-inflammatoryaxisinTLR4-engagedhumanmonocytes[J].InnateImmun,2021,22(3):186-195.[38]DalliJ,WinklerJW,ColasRA,etal.ResolvinD3andAspirinTriggeredResolvinD3ArePotentImmunoresolvents[J].ChemBiol,2020,20(2):188-201.[39]DalliJ,ZhuM,VlasenkoNA,etal.Thenovel13S,14S-epoxymaresinisconvertedbyhumanmacrophagestomaresin1(MaR1),inhibitsleukotrieneA4hydrolase(LTA4H),andshiftsmacrophagephenotype[J].FASEBJ,2020,27(7):2573-2583.[40]SerhanCN,DalliJ,ColasRA,etal.Protectinsandmaresins:Newpro-resolvingfamiliesofmediatorsinacuteinflammationandresolutionbioactivemetabolome[J].BiochimBiophysActa,2021,1851(4):397-413.[41]ChiurchiV,LeutiA,DalliJ,etal.ProresolvinglipidmediatorsresolvinD1,resolvinD2,andmaresin1arecriticalinmodulatingTcellresponses[J].SciTranslMed,2021,8(353):353ra111.[42]DengB,WangCW,ArnardottirHH,etal.Maresinbiosynthesisandidentificationofmaresin2,anewanti-inflammatoryandpro-resolvingmediatorfromhumanmacrophages[J].PLoSOne,2020,9(7):e102362.[43]HuangJT,WelchJS,RicoteM,etal.Interleukin-4-dependentproductionofPPAR-gammaligandsinmacrophagesby12/15-lipoxygenase[J].Nature,1999,400(6742):378-382.[44]KotlaS,SinghNK,KirchhoferD,etal.HeterodimersofthetranscriptionalfactorsNFATc3andFosBmediatetissuefactorexpressionfor15(S)-hydroxyeicosatetraenoicacid-inducedmonocytetrafficking[J].JBiolChem,2021,292(36):14885-14901.[45]WenY,GuJ,VandenhoffGE,etal.Roleof12/15-lipoxygenaseintheexpressionofMCP-1inmousemacrophages[J].AmJPhysiolHeartCircPhysiol,2008,294(4):H1933-1938.[46]BolickDT,OrrAW,Whe