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文档简介

真菌荧光原位杂交技术-吴松松第一步:荧光探针标记。1,利用已知的特异序列送公司合成探针。各种情况的探针均适合,<500bp的片段最好用此种方法。2,切口平移法。用DNApolymeraseI和DNaseI。适合较大的片段,一般>7kb,1kb的片段效果较差。TOC\o"1-5"\h\z①IxDNApolymeraseIbuffer(1x)5口l②dNTP(10口M)5口l③Bio-11-dUTPorDig-11-dUTP(1mM)1.2口l④DNaseI(0.005U/口l)1口l⑤DNApolymeraseI(coli.10U/口)1.2口l⑥DNA(2.5口g)X口l⑦ddH2O36.6-X口l⑧Total50口l混匀后置于原位PCR或者于水浴锅中15℃4h,然后利用1%的琼脂糖凝胶检测片段大小,在100-500bp左右表示酶切完全,此时可停止反应。另有FISHTag™DNAMulticolorKit中也是切口平移法,但探针标记时需结合荧光染料,步骤比较复杂。3,随机引物法。用随机引物合成探针,此种方法适合cDNA片段为500〜1000bp的片段。①500ngDNAX口l②2.5XRandomPrimersSolution:口l20③10XdNTPMixture:口l24-X④口l24-X⑤KlenowFragment口l1.冰上操作:cDNA大约500ngDNA(5-201l)的离心管中加入0Ql2.5XRandomPrimersSolution.于沸水中变性5min,立即放于冰上.将融化的10XdNTPMixture及ddH2O提前放于冰上并依次力口入,轻轻混匀。.加入1QlKlenowFragmen轻轻混匀(剧烈震荡酶易失活),并低速离心30sce。.37℃孵育60min后力口入5QlStopBuffer。5.无水乙醇或异丙醇沉淀(加核酸助沉剂),75%乙醇清洗沉淀并用50QlDEPC-H2O溶解。6电泳检测探针质量。片段集中在250〜500bp质量较好,可用于原位杂交。第二步:样品的处理。PDB摇培3~5d的菌丝或者收集的真菌孢子分别用DEPC--H2O和IxPBS清洗一次,8000rpm离心。CSKBuffer处理。力口入CSKBuffer(0.5%TritonX-100,,10mMVRC或RRI)于4℃处理10~12min。第三步:样品的酶解与固定。1,用4%的多聚甲醛浸泡,于4℃暗处理1-4h。2,挑取菌丝或吸取孢子均匀涂与PE玻片上,风干使样品固定于玻片上。3,用DEPC-treated水洗两次,风干。用1xPBS渗透缓冲液覆盖(1%SDS,1%裂解酶,0.1%蜗牛酶),30°C,10min(实验中发现如果30min,菌丝降解的比较严重,因此可能应该减少酶解时间,15min),用DEPC处理的水冲洗,晾干。然后用50%,80%和100%的乙醇进行脱水处理,每次5min。(参考文献:AlpineStreambyNewTaxon-SpecificInSituDetectionofFreshwaterFungi)第四步:杂交1,杂交液准备。2xhybridizationbuffer:4xSSC,40%硫酸葡聚糖,2mg/mlBSA,50%甲酰胺。将探针于95〜98℃变性5min后立即冰浴3min,以探针终浓度为0.56〜5ng/口l的浓度加入冰上预冷的杂交缓冲液中。探针浓度可以降低到2.5ng/ul(经过实验,该浓度的探针还是高,不过没有检测探针的质量,可以先检测探针的质量,200-500bp)。2,50D1体积片12片4片片8①100%去离子甲酰胺25Dl50Dl100Dl200Dl②20xSSCD5L10Dl20Dl40Dl③5%BSA(SS)0.5Dl1Dl2Dl4Dl④10xSDS2.5Dl5Dl10Dl20D⑤50%硫酸葡聚糖混匀,离心,然后加入10Dl20Dl40Dl80Dl3,⑥Bio-11-dUTP标记的探针50-100nLg/片10Dl20Dl4,⑦Dig-11-dUTP标记的探针50-100nLg/片10Dl20Dl5,6,杂交。每玻片100〜1501l杂交液滴加于样品上,盖膜与46℃暗盒(底部加入浸有2xSSC的吸水纸)中孵育过夜(16〜20h)。第五步:杂交后洗脱。1用2xSSC配制50%的甲酰胺溶液,42℃水浴预热,同时预热两份2xSSC溶液,预热20min以上。2把玻片从湿盒中拿出,于2xSSC揭膜。3于预热的甲酰胺中,42℃摇床摇10min,转入预热的2xSSC中摇两次,每次5min。第六步:标抗及结合链霉亲和素。1,地高辛标抗。①室温的2xSSC摇一次,5min。②4xSSC/Tween20(0.2%)摇一次,5min,(配制:1L4xSSC力口Tween2ml)。③每片加新鲜的5%BSA(4片配制:0.1gBSA+2ml1xPBS)100口l盖膜,室温放置5min,直接用镊子揭去盖膜。(以后每步避光)④配制anti-digFITC溶液(用5%BSA稀释75倍),每片加100口1,盖膜后湿盒中37℃温育1h。⑤4xSSC/Tween20(0.2%)摇洗3次,每次5min,1xpbs缓冲液中洗1次5min。2,生物素结合链霉亲和素。①IxPBS漂洗一次,5min。②5%的BSA100口1每片,盖膜,室温放置5min,揭膜。③用1:40配置Cy3耦联的链亲和素。每片50口1,盖膜,湿盒37度温育30min④1xPBS洗三次,每次5min第七步:DAPI负染与荧光信号检测1,5口g/ml的DAPI每片100口1。7,盖膜室温放置15min,1xPBS揭膜。8,每片加抗荧光猝灭剂一滴(10口1枪)。3,用干净的盖片盖好,于荧光显微镜下检测。4℃避光保存,完想保留玻片时:2xSSC摇10min,70%乙醇摇3min,100%乙醇摇3min,空气干燥。所需试剂准备20xSSC:0.3Msodiumcitrate,3MNaCl(pH7.0)CSKBuffer:100mMNaCl,300mMsucrose,3mMMgCl2,10mMPIPES(pH6.8)Storeat4°C.IxPBS:NaCl137mM,KCl2.7mM,Na2HPO410mM,KH2PO42mM(pH7.2〜7.4)4%多聚甲醛:2g多聚甲醛加入30ml1xPBS中,60℃加热10min后加入少量0.1MNaOH摇匀至多聚甲醛完全溶解后IxPBS定容至50ml。10ml:0.4g多聚甲醛力口7ml水,力口40ul5MNaOH,在定容至10ml注意事项1、做RNAFISH实验,首先要防止RNA酶的污染。操作过程中应自始至终佩戴抛弃式橡胶或乳胶手套,并经常更换。所有实验用到玻璃制品都要高温灭菌,且各种溶液要用DEPC水配制。2、去污剂tritonX-100处理的目的是增加细胞的通透性,利于杂交探针进入细胞,其处理时间因应不同的细胞而有所不同。注意:过度的去污剂处可能会引起靶核酸的丢失。3、荧光见光就会淬灭,因此操作过程要做好避光。4、实验所用探针是双链DNA探针,而杂交反应进行时,探针和靶核酸都必须是单链的。因此在做RNAFISH杂交前,探针必须进行变性。探针变性后要立即进行杂交反应,不然解链的探针又会重新复性。5、探针的浓度因其种类和实验要求而有所不同,一般为0.5-5ng/ul。合适的探针浓度要通过实验才能确定。6、杂交反应时,盖玻片不可有气泡,不然妨碍探针与细胞的接触。7、玻片经antifadereagent封片后可在4℃暗处保存2-3星期而不失去全部荧光,但FISH操作完成后要及时观察采图,地高辛标记的隔夜观察效果较好。8、如果镜检时,观察到

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