脐血分血及CIK细胞培养流程_第1页
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文档简介

1、脐血分血及CIK细胞培养流程采集新鲜的自体外周血入血液采集袋(含28mL枸橼酸纳抗凝剂),将血液采集登记表标记细胞编号,用铅笔在采集袋表面空白处也标记细胞编号。检查全血有无凝血,凝血会导致单核细胞得率降低,细胞采集到接收时间段是否在六小时之内,超过六小时细胞得率降低。热合机在血液采集袋输入管1/3处热和一个封口,用酒精喷血液采集袋表面,将血液采集袋放入传递窗。准备好50mL离心管、3mL抗凝管、生理盐水、10mL移液管、T-75瓶、T-25瓶、淋巴细胞分离液、废液缸。采集袋拿进超净台之前再喷酒精。拧扭输出管,使血液回流入采血袋,用止血钳夹住采血袋输出管,用酒精棉球擦拭输出管管表面,剪刀剪去封口

2、,剪成斜口(方便倒出),准备好两个50mL离心管,输出管口火焰灭菌后,用止血钳控制管口将全血倒入50mL离心管,最后采血袋留3mL全血倒入抗凝管中,抗凝管血混匀后计数(中间细胞Mid+淋巴细胞L),用作第三方检测(乙肝HBsAg、丙肝HCV-IgG、梅毒TRUST、艾滋Anti-HIV、谷丙转氨酶ALT、血型Rh(D)、梅毒螺旋体特异性抗体TPPA),此时记下全血体积,将采血袋标记细胞编号保存于-20保留血样,以防日后需要检测。,并记下采血袋批号用于填写细胞档案。准备好数个50mL离心管,分别加入20mL淋巴细胞分离液,将全血缓慢加入勿破坏淋巴细胞分离液液面层。淋巴细胞表面。一定配平后离心,2

3、000rpm,离心20min。取出离心管,弃掉最上层的血浆层。准备两个干净的50mL离心管,旋转吸取单核细胞层(白膜层)加入离心管,全部吸完后,记下单核细胞体积。11、准备几个新的50mL离心管,每管分装10mL单核细胞,生理盐水分别加至50mL(与生理盐水1:4),混匀后1800rpm,10min离心,洗涤细胞第一次。12、取出离心管,倒掉上清,取10-15mL生理盐水依次重悬单核细胞,再取10-15mL生理盐水洗涤单核细胞离心管,减少细胞损失,将单核细胞重悬入一个或两个离心管,生理盐水加至40或80mL(细胞浓度太大时加至80mL),细胞计数仪计数(中间细胞Mid+淋巴细胞L)。按照接种密

4、度为2.5-3109个/L计算接种几个T-75瓶。注:中间细胞包括嗜碱性粒细胞、嗜酸性粒细胞、单核细胞。 密 度 40 或 80 =2.5-3109个/L 40或60或80或100或120或140或160分母为40则接种4个T-75瓶,160则接种16个T-75瓶,每瓶10mL。13、1800rpm,10min离心,洗涤细胞第二次。14、用40或60或80或100或120或140或160mL培养基 = 1 * ROMAN I重悬单核细胞,每瓶10mL接种于T-75瓶中,第0天。15、CIK细胞第一天,T-75瓶,加10mL培养基 = 2 * ROMAN II。第二天,T-75瓶,加30mL培养

5、基 = 3 * ROMAN III。第三天,观察CIK细胞。第四天, 两个T-75瓶CIK细胞装一个细胞培养袋,补加300mL培养基 = 3 * ROMAN III,装袋前显微镜下观察细胞状态,有无污染,培养基染色是否一致,检查第三方检测结果是否正常,正常方可装袋。16、装袋后每隔三天进行细胞计数,补液,补培养基 = 3 * ROMAN III(补液后细胞密度维持在1.5-2109个/L),留样,至细胞第14天成熟。无血清培养基 = 1 * ROMAN I配制:空白培养基1L + 10mL IFN-(终浓度1%)+ 10mL成分 = 1 * ROMAN I(终浓度1%)无血清培养基 = 2 *

6、 ROMAN II配制:空白培养基1L + 20mL IL-1(终浓度2%) + 1支IL-2(终浓度2%)无血清培养基 = 3 * ROMAN III配制:空白培养基1L +1支IL-2(终浓度2%)IL-1原液配制:空白培养基40mL + 1支IL-1IFN-原液配制(瓶上有标记):因子 = 4 * ROMAN IV配制:1支用10mL培养基溶解,1.5mL分装。因子 = 4 * ROMAN V配制:1支用15mL培养基溶解,1.5mL分装。因子 = 6 * ROMAN VI配制:1支用10mL培养基溶解,1.5mL分装。抗原肽:每支溶于0.5mL培养基,相同病种抗原肽混合后,冻存至-20

7、,使用时1%终浓度。注意事项:1、血液第三方检验合格结果经主管审核无误后,上报OA合格血液单,否则上报OA不合格血液单。2、细胞治疗原则:先采血后回输。回输前患者提前输抗过敏药。提前两天通知患者回输(有一些患者是外地的)。3、每次配液后及时填写配液记录。4、接种前细胞一定要混匀;回输时细胞一定要打匀,防止结块。5、一定记得回输时人血清白蛋白的加入,使细胞包裹上血清白蛋白,不容易结块,细胞结块容易引起血栓。6、两份血同时做时一定要在50mL管体上标细胞编号或者患者姓名,不同血在不同的超净台操作。7、传染病患者分血操作放在最后,一定换手套喷酒精,该患者的培养基一定要分装。8、超净台内操作,严禁双肘

8、放在操作台面上。9、注射器和培养袋接口是污染高发区,严禁触碰。10、瓶盖等放在远离操作容易碰到的地方。11、细胞培养袋补液前,管口有液体的话记得甩一下管口。12、装袋时不留样,以后每次补液都要留样。13、分血及回输时,生理盐水瓶一定要拿对。自体血出细胞前一天记得冰盐水(50mL)吹打DC细胞。14、琼脂平皿上的标记写在琼脂背面,盖子上不写东西。15、补液前,培养基提前拿出来至室温再用。16、臭氧杀菌的原理:臭氧与细菌细胞壁脂多糖、脂蛋白结合,氧化细菌,杀死细菌。17、T-25瓶最多可以加10mL液体,T-75瓶最多可以加50mL液体,T-175瓶最多可以加250mL液体。18、细胞补液后密度控

9、制在1.5-2109个/L,因为这个密度下细胞长得快。19、淋巴细胞分离液:全血=20mL:20-25mL,分离单核细胞没问题。20、掉在地上的没有拆包装的耗材,喷酒精后拿进超净台使用。21、清场:关风机,酒精擦台面及物品,关操作台,开紫外。22、DC细胞加因子后轻轻混匀培养基。23、开盖后的生理盐水要用点着的酒精棉球擦拭,以防金属碎片进入培养基。24、回输当天显微镜检查最后一次补液T-25瓶有无异常,检查当天T-25瓶有无异常。25、补液前查看上一次补液的留样瓶,无污染后再补液。26、细胞回输前72小时不再补液,因为三天内留样瓶必定可以观察到是否污染,以保证回输细胞无污染,质量合格。27、分血前,一定要有病人的细胞治疗申请单,病人体检报告(传染病四项,三个月之内的体检结果)、患者签字。查看患者的血常规有无异常,关于培养天数和注意事项及时与市场代表沟通。28、使用输血器回输(有过滤装置)。29、病人做过放化疗之后一周,白细胞恢复的差不多再进行采血。血常规正常值范围:红细胞RBC:女 4.0-5.0101

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