细胞培养与病毒培养实验步骤

1、实验二传代细胞培养与病毒在传代细胞中的培养一、实验目的了解倒置显微镜的构造与使用，了解不同传代细胞的形态及接毒后的病变特 征，掌握细胞的传代培养 方法、病毒接种方法及收毒方法。二、常用细胞的种类BHK-21:仓鼠肾传代细胞PK-15:猪肾传代细胞旧RS-2:猪肾传代细胞Hela：人的子宫瘤细胞Vero：非洲绿猴肾细胞Marc-145:来源于Vero细胞TK-143:人的胸音激酶阴性细胞Sf9:昆虫细胞三、材料1、100ml细胞瓶、吸管、吸球、96孔细胞培养板、加样器、枪头2、BHK-21 (baby hamster kidney )细胞3、0.25%胰酶4、生长液：含10哪牛血清、200U/m

2、l青、链霉素的DMEM维持液：含2-5%犊牛血清、200U/ml青、链霉素的DMEM5、伪狂犬病病毒液（PRV）四、传代细胞培养的条件要求1）细胞密度：2-3X105个/ml2） pH范围 最适 pH7.0-7.4 ,耐受 pH6.6-7.83）培养温度哺乳动物细胞一般为37昆虫细胞 28-30 五、常用细胞分散剂与作用原理1、 胰酶 使精氨酸或赖氨酸的羧基和其他氨基酸的氨基之间的多肽链发生水解，导致细胞间质水解而使细胞或组织块消化为分散的单个细胞。2、乙二胺四乙酸二钠（EDTA :与二价钙、镁离子结合，从而使细胞分散。3、灰色链丝菌酶 ：由灰色链丝菌提取的一种酶制剂，是蛋白酶、氨肽酶和羧肽酶

3、的混合物。六、营养液1、人工综合营养液氨基酸、糖类、无机盐类、维生素、辅酶、嘌呤、嘧啶、辅助生长因子。2、血清1）血清的种类胎牛血清、 新生犊牛血清、 成年牛血清、 马血清、 鸡血清、 兔血清、 羊血清、 人血清，其中以新生犊牛血清使用最为广泛。2）血清的处理无菌采集，过滤除菌。用前56 c灭活30min。3）血清的作用A、能提供细胞生存、生长和增生所必须的生长调节因子。B、能补充基础培养液中没有或量不足的营养成分。G含有一些可供贴壁依赖型细胞在培养器皿表面贴附和铺展的生长基质成分。D有中和毒性物质保护细胞不受伤害的作用。E、给培养液提供良好的缓冲系统。F、提供蛋白酶抑制剂，保护细胞免受细胞释

4、放的蛋白酶的损害。4）应用血清存在的问题A、血清中存在不少有害于细胞生长和繁殖的物质：补体、免疫球蛋白、生长抑 制因子。B、血清的成分不明确，影响对结果的分析。G不同动物、不同批次的血清成分和活性差别较大，使得培养结果不稳定。七、传代细胞系培养1、优点：1）可以无限的传代。2）不少细胞系对病毒很敏感。3）某些传代细胞系能在悬浮培养条件下培养，适合病毒抗原的大量生 产。4）生长旺盛，繁殖快速，对营养条件不苛刻。2、缺点：在传代过程中遭到支原体和病毒的污染。3、培养方法1）取长满单层的细胞一瓶，倾去培养液。2）加入2ml胰酶消化液，于37c培养箱放置几分钟，至细胞间出现空隙或细胞 变圆后，倒去消化

5、液。3）加入生长液，反复吹打几次，使细胞分散成单个细胞，然后分装于3个小瓶中。 再在每个小瓶中补充生长液至10ml,然后置37c培养箱培养，培养1-2天即可 长成单层。八、病毒（PRV在传代细胞中的培养1、选长满单层的细胞，倒掉培养液。2、加入适量的病毒悬液3、置温箱中感作（吸附）45min-1h。4、取出瓶子，倒掉或不倒掉培养液，补足维持液，置温箱中继续培养，直至80% 以上的细胞病变。5、收毒：将病变的细胞置于-20 C冰箱中，冻结后取出自然解冻，在解冻过程中 振摇几次，以使细胞完全从瓶壁上脱落。然后将病毒液收集于盐水瓶或其它容器 中。低温贮藏备用。实验三、原代细胞培养（以鸡胚成纤维细胞为

6、例）一、实验目的了解不同原代细胞的形态，掌握鸡胚成纤维细胞的制备与培养 方法二、材料1、9-11日龄鸡胚 2、照蛋灯与蛋座3、碘酊棉球与酒精棉球4、大剪子、眼科剪、小镊子5、平皿、细菌瓶、吸管、吸球、细胞瓶、6、胰酶、生长液、维持液三、细胞培养的条件要求1）细胞密度原代细胞：4-6X105个/ml传代细胞：2-3X105个/ml2） pH范围最适 pH7.0-7.4 ,耐受 pH6.6-7.83）培养温度哺乳动物细胞一般为37昆虫细胞 28-30 四、操作步骤1、取9-12 日龄孵育良好的鸡胚，依次用碘酊和酒精消毒气室部。2、无菌操作下用剪子去除气室部卵壳，去除壳膜，穿破绒毛尿囊膜，夹住鸡胚颈

7、部，取出鸡胚放于灭菌平皿中。3、用眼科剪、镶去除鸡胚头、四肢及内脏，用 DMEW洗2次。4、将冲洗后的鸡胚用剪子充分剪碎，使其近于乳糜状。5、将剪碎的组织块倒入锥形瓶或烧杯或大青霉素瓶中，用DME更分冲洗，并静置几分钟，待组织块下沉，吸弃上层液体，再加DMEM如此反复冲洗2-3遍6、于沉淀组织块内加入约4倍量的0.25%夷酶，并调pH至7.6-7.8 ,振荡混匀 后置 37水浴中感作30分钟， 每 10分钟轻轻摇动一次， 使细胞消化完全 （组织块变散松，沉降渐变缓慢时即表示消化足够）。7、取出，静置几分钟，小心吸弃上层胰酶溶液，用DME雌洗2次后，加入生长液5ml,用大口径吸管反复吹打，使细胞

8、游离。8、静置几分钟，使未消化好的组织块下沉。9、细胞计数取细胞悬液0.5ml+2ml 0.1%结晶紫枸椽酸（0.1mol/L ） 溶液， 室温或37温箱中5-10min ，充分振荡后进行计数。按白细胞计数法计算4 角 4 个大方格内的细胞总数（N）。每ml悬液中的细胞数（n） =N/4X 10000X K （稀释倍数）。活细胞数应在90%以上。10、将计数好的细胞稀释到合适的浓度，使细胞量约为4-6X106个/ml ,分层于细胞培养瓶中，每瓶1ml,再补加DMEME长7衩至10ml,盖上盖子，置于37c 恒温箱中培养。表示可计数表示不计数五、结果的观察于培养后每天观察结果，至长层单层。细胞量

9、较大时，一天即可长成单层， 细胞呈纤维状。实验四 病毒感染力的滴定(TCI%的测定)一、实验目的了解病毒感染力测定的几种常用方法，掌握半数细胞培养物感染量TCID50 的操作步骤、计算 方法及含义。二、测定病毒感染力的方法半数致死量LQ°( 50% lethal dose):用动物或鸡胚来检测半数鸡胚感染量 EID5o(egg 50% infective dose):用鸡胚来检测半数细胞培养物感染量 TCID5o （50% tissue culture infective dose） :用细胞 来检测蚀斑形成单位（plaque forming unit , PFU :用细胞来检测三、

10、材料1、长满单层的细胞1瓶2、胰酶、吸球、吸管、生长液3、96孔细胞培养板4、加样器、枪头5、病毒液（PRV四、TCID50的操作步骤1、在青霉素瓶或离心管中将病毒液作连续10倍的稀释，从10-1-10-10。2、将稀释好的病毒接种到96孔微量培养板中，每一稀释度接种一纵排共8孔,每孔接种100 口。3、在每孔加入细胞悬液100d ,使细胞量达到23X 105个/ml。4、设正常细胞对照，正常细胞对照作两纵排。（100J生长液+100 U细胞悬液）5、逐日观察并记录结果，一般需要观察 5-7天。6、结果的计算，按 Reed-Muench两氏法或Karber法五、TCID5。的计算方法CPE :

11、细胞病变效应1、Reed-Muench两氏法，内毒液稀释度出现CPE孔数无CPEL数累 计出现CPE5L所 占的CP日L数无CPEL数10"80270100 (27/27)10-280190100 (19/19)10-371111191.6 (11/12)10-43 n54640 (4/10)10-517 iF1130.7 (1/14)10-6080210(0/21)CPE Cytopathic effect距离比例=(高于50%|变率的百分数-50%) / (高于50%|变率的百分数-低于 50%W变率的百分数)=(91.6-50 ) / (91.6-40 )=0.8lgTCID5

12、0=距离比例X稀释度对数之间的差+高于50蛇变率的稀释度的对数=0.8 X(-1)+(-3)=-3.8TCIDoW/0.1ml含义：将该病毒稀释103.8接种1004可使50%勺细胞发生病变。2、Karber 法，内毒液稀释度出现CPE的孔数出现CPEfL的比率10-188/8=110-288/8=110-377/8=0.87510-433/8=0.37510-511/8=0.12510-600/8=0lgTCID5o=L-d(s-0.5)L:最高稀释度的对数D:稀释度对数之间的差S:阳性孔比率总和lgTCID50=-1-1 X (3.375-0.5)=-3.875TCID50=10-3.87

13、5/0.1 ml含义：将该病毒稀释103.875接种100 d可使50%勺细胞发生病变实验五血清中和试验、实验目的了解中和试验的基本原理和几种不同的 测定方法，掌握固定病毒一稀释血清 法的操作步骤和计算方法及含义。二、原理抗体与相应的病毒粒子特异性地结合，使病毒的感染力丧失。三、用途1、疾病诊断2、病毒分离株的鉴定3、不同病毒株的抗原关系研究 4、疫苗免疫原性的评价5、免疫血清的质量评价6、测定实验动物血清中是否存在抗体四、分类（一）蚀斑（痘斑）减数试验将病毒一正常血清混合物以及病毒一待检血清混合物分别接种到单层细胞 上，随后覆盖营养琼脂或甲基纤维素， 进行蚀斑测定，比较病毒一正常血清组和 病

14、毒一待检血清组产生的蚀斑数，两者的差数表示待检血清的中和能力。以试验组的蚀斑数比对照组减少 50%乍为判定依据，血清稀释度就是其蚀斑 减数试验效价。（二）交叉保护试验先将实验动物进行主动免疫或被动免疫， 然后以待检病毒进行攻击，根据实 验动物被保护的情况，判定待检V的种类或型别。这一方法的缺点是试验周期太 长，并且需要大量的实验动物。可用于以下几方面：应用已知V鉴定未知V ;应用已知免疫血清鉴定未知 V;应用已知V鉴定未知血清。（三）终点法中和试验1、固定病毒一稀释血清法将不同稀释度的血清与固定量的病毒液（一般为 100或200个TCID5。、EID50 或LD5。）混合，置适当的条件下感作一

15、定时间，再将血清 -病毒混合物接种于敏 感细胞、鸡胚或实验动物，测定被检血清阻止组织培养细胞、鸡胚或实验动物发 生病毒感染的能力及其效价。以能保护50%fi织培养细胞、鸡胚或实验动物不发生病变、感染或死亡的血 清最高稀释倍数，作为该血清的 50刈和效价（PDq）。2、固定血清稀释病毒法在固定量的血清中，加入等量不同稀释度的病毒，用对照非免疫血清（对照 组）和待检血清同时进行 测定，计算每一组的TCID5。、EID50或LD5。，然后计算中 和指数。五、材料1、长满单层的细胞1瓶2、胰酶、吸球、吸管、生长液3、96孔细胞培养板4、加样器、枪头5、病毒液（PRV6、待检血清、PR邛日性对照血清、P

16、RV阴性对照血清六、操作步骤1、固定病毒一稀释血清法1）测定病毒液的TCID5o2）将测好TCID5。的病毒液稀释成200个TCID5。的病毒悬液。3）在96孔微量培养板中将血清（预先56c灭活30min）作连续倍比稀释（具体 方法是在96孔板中先加入50 口生长液，再加50 口待检血清，混匀后，吸 50 口至下一孔，如此下去。一直到1 ： 256）,每个稀释度作4孔。4）在上述各孔内加入50口稀释好的病毒液，混匀后放入 37c 5%CO培养箱中 作用 45min-60min。5）同时设待检血清毒性对照，阴、阳性血清对照，病毒对照和正常细胞对照， 其中病毒对照要作 200 个 TCID5。、2

17、0 个 TCID5。、2 个 TCID5。、0.2 个 TCID50 4 个不同浓度的对照。6）感作完成后每孔加入100口细胞悬液，放37c 5%CO培养箱培养，逐日观察 并记录结果，一般要观察5-7天。7）结果计算，按 Reed-Muench两氏法或Karber法进行。血清稀释度CP日L数无CP日L数累计CPBL数无CPEJL数保护率1:2 (10-0.3)04015100 (15/15)1:4 (10-0.6)04011100 (11/11 )1:8 (10-0.9)131787.5 (7/8)1：16 (10-1.2)132466.7 (4/6)1:32 (10-1.5)315116.7

18、 (1/6)1:64 (10-1.8)40900 (0/9)1：128 (10-2.1)401300 (0/13)1：256 ( 10-2.4)401700 (0/17)lgPD50=高于50%的保护率的血清稀释度的对数+距离比例X稀释度对数的差=-1.2+0.33 X （-0.3）=-1.299距离比例=（高于50%的保护率-50% ） / （高于50%的保护率一低于50%的保护率）=（66.7-50） / （66.7-16.7）=0.33PD50=-1.299 的反对数=0.05=1/20即1 ： 20稀释的待检血清可保护50%勺组织培养细胞免于出现 CPE2、固定血清稀释病毒法1）将病毒作连续10倍稀释2）将稀释好的病毒接种96孔板，每个稀释度接种一纵排共 8孔，每孔50口，