电泳技术及其在分子生物学中的应用PPT课件

1、 以淀粉胶、琼脂或琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等作为支持介质的区带电泳法称为凝胶电泳。 琼脂糖凝胶电泳 （agrose gel electrophoresis ）聚丙烯酰胺凝胶电泳 （polyacrylamide gel electrophoresis，PAGE） 凝胶电泳用于分离、鉴定和纯化DNA片段第1页/共52页重点内容影响DNADNA在琼脂糖凝胶中的迁移速率的因素有哪些？Western blotting Western blotting 的基本实验步骤, ,及每一步的操作意义. .第2页/共52页琼脂糖凝胶电泳琼脂糖凝胶电泳第3页/共52页 琼脂糖（agarose）是由琼脂分离制备的链状

2、多糖。其结构单元是D-半乳糖和3.6-脱水-L-半乳糖。许多琼脂糖链依氢键及其它力的作用使其互相盘绕形成绳状琼脂糖束，构成直径从50nm到略大于200nm的三维筛孔的通道。 第4页/共52页凝胶的制备 以琼脂糖为溶质，电泳缓冲液为溶剂，用微波炉加热，配制一定浓度的溶胶，灌入水平胶框，插入梳子，自然冷却。第5页/共52页第6页/共52页缓冲液系统 常用的电泳缓冲液有EDTA（pH8.0）和Tris-乙酸（TAE），Tris-硼酸（TBE）或Tris-磷酸（TPE）等，浓度约为50mmol/L(pH7.57.8)。 第7页/共52页含不同量琼脂糖的凝胶的分离范围凝胶中的琼脂糖含量%（w/v）线状D

3、NA分子的有效分离范围（kb）0.35-600.61-200.70.8-100.90.5-71.20.4-61.50.2-32.00.1-2琼脂糖浓度的选择：根据被分离线状DNA片断的大小第8页/共52页样品配制与加样 DNA样品用适量Tris-EDTA缓冲液溶解，缓冲液内含有 0.25%溴酚蓝或其他指示染料，含有10%-15%蔗糖或5%10%甘油，以增加其比重，使样品集中。第9页/共52页 电泳 低电压下，分离效果较好。在低电压条件下，线性DNA分子的电泳迁移率与所用的电压呈正比。 因此，为了获得电泳分离DNA片段的最大分辨率，所用电压不宜高于5V/cm。 cm ：电场正负极间的距离。 第1

4、0页/共52页染色和拍照 常用荧光染料溴化乙锭（EB）染色，在紫外光下观察DNA条带，用紫外分析仪拍照，或用凝胶成像系统输出照片，并进行有关的数据分析。第11页/共52页琼脂糖凝胶中DNA的染色荧光染料溴化乙锭（EB）含有一个可以嵌入DNA或RNA的堆砌碱基之间的一个平面基团与核酸结合后在紫外线激发下呈现橘黄色荧光，荧光的位置代表核酸片段所在的位置，荧光的强弱代表核酸量的多少,可以检测到少至10ng的DNA条带。可用于检测单链或双链核酸（DNA和RNA）。第12页/共52页第13页/共52页 双链DNA分子在凝胶基质迁移的速率与碱基对数目的常用对数成反比。双链DNA分子在凝胶中的迁移率第14页

5、/共52页影响DNA 在琼脂糖凝胶中的迁移速率的因素DNA分子的大小琼脂糖浓度 ；DNA的构象 ：超螺旋环状（I型）、切口环状（II型）和线状（III型）；共价闭环DNA直线DNA开环双链DNA。当凝胶浓度太高时，凝胶孔径变小，环状DNA（球形）不能进入胶中，相对迁移率为0，而同等大小的直线DNA（刚性棒状）可以按长轴方向前移，相对迁移率大于0。第15页/共52页 凝胶和电泳缓冲液中的溴化乙锭; 所用的电压 ：低电压时，DNA片段迁移率与所用的电压成正比；电场强度升高时，高分子质量片段的迁移率遂不成比例的增加； 电泳缓冲液 ：组成和离子强度 。第16页/共52页聚丙烯酰胺凝胶第17页/共52页

6、聚丙烯酰胺凝胶电泳（polyacrylamide gel electrophoresis，PAGE） 聚丙烯酰胺凝胶是由丙烯酰胺单体，在催化剂TEMED(N，N，N，N一四甲基乙二胺)和 过硫酸铵的作用下，丙烯酰胺聚合形成长链，聚丙烯酰胺链在交联剂，N，N一亚甲双丙烯酰胺参与下，聚丙烯胺链与链之间交叉联接而形成凝胶. 第18页/共52页 与琼脂糖凝胶电泳的比较, PAGE的特点分辨率很强，长度上相差1bp的DNA即可分开；从聚丙烯酰胺凝胶中回收的DNA纯度很高，可适用于要求最高的实验（如胚胎注射）；装载更多的DNA量；最适合分离小片段DNA(5-500bp),可以分离蛋白质;聚丙烯酰胺凝胶一律

7、进行垂直电泳.第19页/共52页第20页/共52页 假如DNA 顺序中的某个碱基发生了突变，使突变所在部位的DNA 序列产生（或缺失）某种限制性内切酶的位点。这样，利用该限制性内切酶消化此DNA 时，便会产生与正常不同的限制性片段。这样，在同种生物的不同个体中会出现不同长度的限制性片段类型，即限制性片段多态性(Restriction Fragment Length Polymorphism ，RFLP)。限制性片段多态性(RFLP)第21页/共52页点多态性实验方法1.DNA的提取2.PCR3.限制性内切酶酶解4.聚丙烯酰胺凝胶电泳分离5.染色第22页/共52页第23页/共52页第24页/共5

8、2页第25页/共52页（SDS-PAGE）的原理第26页/共52页第27页/共52页 蛋白质-SDS-SDS复合物的形状近似于长的椭圆棒，它们的短轴是恒定的，而长轴与蛋白质分子量的大小成比例。因此，蛋白质-SDS-SDS复合物在SDS-SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳系统中的迁移率不再受蛋白质原有电荷的影响，而主要取决于椭圆棒的长轴长度，即蛋白质亚基分子量的大小。当蛋白质分子量在15KD15KD到200KD200KD之间时，电泳迁移率与分子量的对数呈线性关系。第28页/共52页 特点大多在不连续缓冲体系中进行，其电泳槽缓冲液的pH值与离子强度不同于配胶缓冲液；不连续缓冲体系具有把样品中的复合物全部浓

9、缩于极小体积的能力，故提高了SDS-PAGE的分辨力；系统中所有组分都含有0.1%的SDS。 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）第29页/共52页 负极积层胶分离胶加样孔正极第30页/共52页配置积层胶分离胶丙烯酰胺浓度5%10-15%Tris-HCl1M，PH=6.81.5M，PH=8.8SDS，过硫酸铵，TEMED浓度相同电泳积层胶分离胶电压80V120VTris-HCl -甘氨酸电泳缓冲液(pH8.3)在凝胶中的电离情况甘氨酸带负电的蛋白质亚基Cl-带负电的蛋白质亚基甘氨酸-Cl-被分离蛋白质亚基的电离情况蛋白质亚基由于甘氨酸的挤压作用，在积层胶不被分离，而是被浓缩为最小体积

10、蛋白质亚基在分离胶根据分子量的大小被分离第31页/共52页 考马斯亮蓝染色(0.1-1.0ug的多肽)第32页/共52页One-Dimensional SDS-PAGE 第33页/共52页Isoelectric Focusing (IEF)第34页/共52页 等电聚焦电泳的过程电泳时可将样品置于凝胶的任何位置；初始位置在负极时，因pHpI，蛋白质分子带负电，电泳时向正极移动；移动过程中，pH逐渐下降，所带负电荷量逐渐减少，蛋白质移动速度减慢；当移动到pH=pI时，蛋白质所带净电荷为零，蛋白质即停止移动；各种不同蛋白质在电泳结束后，会分别聚集于相应的等电点位置，形成一个很窄的区带；区带的位置是由

11、pH梯度的分布和蛋白质的pI所决定，而与蛋白质分子的大小和形状无关。第35页/共52页Two-Dimensional SDS-PAGE第36页/共52页PI (by isoelectric focusing IEF)Approximate mol wt. (bySDS PAGE)Example of 2D-Gel Separation of Proteins 2D gels are ideal tools of protein separation because of their high resolution (1000 spots are commonly visualizedon a

12、single gel) and visual readout第37页/共52页Western blottingWestern blotting第38页/共52页 印迹法（blotting）是指将样品转移到固相载体上，而后利用相应的探测反应来检测样品的一种方法。 1975年，Southern建立了将DNA转移到硝酸纤维素膜（NC膜）上，并利用DNARNA杂交检测特定的DNA片段的方法，称为Southern印迹法。第39页/共52页第40页/共52页对RNA的印迹分析称为Northern印迹法.对单向电泳后的蛋白质分子的印迹分析称为Western印迹法;对双向电泳后蛋白质分子的印迹分析称为East

13、ern印迹法.第41页/共52页Western Blotting 基本原理基本原理 在电场的作用下将电泳分离的多肽从凝胶转移至一种固相支持体，然后用这种多肽的特异抗体来检测。第42页/共52页1）蛋白提取2）SDS-PAGE3）转膜4）封闭5）一抗作用6）标记二抗作用7）结果检测Western blotting 基本步骤：第43页/共52页转膜将凝胶和固相基质象三明治一样加在用缓冲液湿润滤纸之间。 正极 三层滤纸硝酸纤维素滤膜 凝胶 三层滤纸 负级 第44页/共52页 预染蛋白marker 考马斯亮蓝染色第45页/共52页第46页/共52页一抗、标记二抗孵育 把硝酸纤维素滤膜放在密闭塑料袋或者培养皿中，根据滤膜面积以0.1ml/cm2的量