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文档简介

1、实验 十一 细胞的原代培养 一、实验目的 1、了解细胞体外培养的原理、基本方法。 2、掌握无菌操作方法及注意事项。 3、学习观察体外培养细胞的形态及生长状况。 二、实验原理 模仿体内生长环境,使来自机体的细胞、组织、器官能够在人工培养条件下生存、生长、繁殖。 三、实验器材 1、纯水设备:纯水仪 2、干燥消毒设备:电热干燥箱、高压蒸汽消毒锅、过滤器及0.22 ?m滤膜; 3、超净工作台 4、培养设备: 普通培养箱、CO2培养箱; 5、贮存设备:冰箱、液氮罐 6、观察设备:倒置显微镜 7、其他设备:天平、离心机、水浴锅等 培养主要用品 1、培养瓶、皿:以玻璃器皿为主 ,应选择透明度好、无毒、中性硬

2、度玻璃制品 (1)培养瓶 (2)培养皿 2、血球计数板 3、眼科剪、镊; 实验材料 714日龄鸡胚 (肝素)抗凝血 原代培养材料选择 幼体组织(尤其是胚胎组织)比成年个体的组织容易培养 分化程度低的组织比分化高的容易培养 肿瘤组织比正常组织容易培养。 实验试剂 1、DHanks液 KH2PO4 0.06g,NaCl 8.0g,NaHCO3 0.35g,KCl 0.4g,葡萄糖1.0g,Na2HPO4?H2O 0.06g,加H2O至 1000ml 注:Hanks液可以高压灭菌。4下保存。 2、o25胰蛋白酶( DHanks液配) 3、M199 培养液 小牛血清 、45、青、链霉素 6、5NaHC

3、O3、 2碘酒 7、75酒精 8、洗液:由重铬酸钾、浓硫酸和蒸馏水按一定比例配制而成 四、实验方法与步骤 一)培养前的准备工作 1、用品清洗与消毒 2、溶液配制与消毒 (1) 培养液、酶、抗生素等生物活性成分需过滤消毒 (2)平衡盐等高压蒸汽消毒 3、 预热溶液 4、 工作间及超净台消毒:紫外线、消毒液。 5、 洗手和着装 6、 进入无菌室 7、关闭超净工作台内的紫外光灯,点燃酒精灯(一切操作均需在酒精灯火焰下进行)将消毒过的所用物品放入超净工作台中 组织块培养法培养鸡心肌细胞步骤 1、配M199完全培养液: M199基础培养液 90 小牛血清 10 青霉素 100IU/ml 链霉素 100?

4、g/ml 过滤除菌。 2、获取心脏 消毒鸡胚蛋:泡入70酒精 取出鸡胚,Hanks液洗涤。 取出心脏,放入Hanks液中。 3、处理心脏 1、Hanks液漂洗心脏 2、剪成约1 mm3大小的小块。 3、 洗组织块。 Hanks液洗一次,培养液洗一次。 4、摆放:间隔2cm 5、贴壁。 6、加培养液培养 分离细胞培养法培养鸡表皮细胞步骤 (一)胰酶消化法 1、消毒、取材 2、洗涤:用DHanks液洗涤三次。 液洗三次。Hanks再用,)1mm2(在小青霉素瓶中用手术剪将组织块剪成小块、34、视组织块量加入56倍的0.25%胰酶液,37中消化2040分钟,每隔5分钟振荡一次,或用吸管吹打一次,使细

5、胞分离。 5、加入35ml培养液以终止胰酶消化作用(或加入胰酶抑制剂)。 6、静置5分钟,使未分散的组织块下沉,取悬液加入到离心管中,1000rpm离心8分钟,弃上清液。 7、加入Hanks液2ml,冲散细胞,再离心一次,弃上清液。 8、加入培养液l2 ml(视细胞量),血球计数板计数。 9、将细胞调整到5105/ml左右,转移至25ml细胞培养瓶中,37下培养。 五、注意事项 1、操作前要洗手,进入超净台后手要用75%酒精或0.2%新洁尔灭擦试。试剂等瓶口也要擦试。 2、点燃酒精灯,操作在火焰附近进行,耐热物品要经常在火焰上烧灼,金属器械烧灼时间不能太长,以免退火,并冷却后才能夹取组织,吸取过营养液的用具不能再烧灼,以免烧焦形成碳膜。 3、操作动作要准确敏捷,但又不能太快,以防空气流动,增加污染机会。 4、不能用手触已消毒器皿的工作部分,工作台面上用品要布局合理。 5、瓶子开口后要尽量保持45斜位。 6、吸溶液的吸管等不能混用。 7、严格无菌操作。自取材开始,保持所有组织细胞处于无菌条件。(细胞计数可在有菌环境中进行。 ) 8、凡在超净台外操作的步骤,各器皿需用盖子或橡皮塞,以防止细菌落入。 注意黏附。 结果观察 1

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