临床原始样本采集常见问题课件

原始样本采集及运送,实验室经常遇到的问题：,结果回报时间问题,报告周转时间或回报时间 (Turnaround Time，TAT) 血、尿、便常规检验自检查开始到出具结果时间30分钟，生化、凝血、免疫等检验项目自检查开始到出具结果时间6小时，细菌学等检验项目自检查开始到出具结果时间4天。 急诊血、尿、便常规检验自检查开始到出具结果时间30分钟，生化、凝血、免疫等检验项目自检查开始到出具结果时间2小时。,遵照医嘱 充分准备 明确检验项目、目的、采集标本量、采集方法及注意事项 病人准备：向病人解释 物品准备：容器、标签等 护士准备：洗手、戴口罩 严格查对 正确采集：时间、量、方法 及时送检,原始样本采集原则,病人准备,1.血液标本采集前,（需要时）病人空腹（OGTT） 2.记录采集病人标本时间 3.固定采集血液标本的姿势 4.采集血液标本时动作要迅速 5.采集血液前要限制病人的运动量 6.控制咖啡、浓茶及酒精摄入 7.严格控制病人用药 8尽早通知病人，做好解释工作,、种类： 全血标本 血沉、血常规 血清标本 大部分生化、免疫学测定等 血培养标本 病原菌 、方法 毛细血管采血法（床旁检测、手工检测） 静脉采血法 动脉采血法(血气分析）,原始样本采集方法,血液样本采集顺序,第一管、无添加剂真空管 第二管、分离胶管（生化管） 但如有促凝剂，可能影响凝血测定 第三管、凝血分析采血管 一般第三管，因组织液有启动凝集作用 第四管、血常规采血管 因EDTA与钙、镁螯合，同时ALP结果偏低， 所以不能放到生化管前,血常规管,适用于血常规、血型鉴定、交叉配血试验及其它血液学检查（如血沉）等 抗凝剂：EDTA-K2、 EDTA-K3 血液标本量极限低值为1.5ml 采血后立即轻轻颠倒180度混匀10次 ，但动作勿剧烈,血常规样本采集及运送,采血前患者应尽量减少运动保持平静（至少15min）。 静脉采血时患者应取坐位或卧位。 冬天，患者从室外进入室内，应等其暖和后再采血。 采用真空采血法，抽取患者静脉全血2ml。 真空采血管内的抗凝剂为EDTA-K2 ( 含量为1.5-2.2mgml血液 )。 止血带压迫时间宜小于1分钟，回血后立即松开。 采血后需立即将血液样本轻轻颠倒混匀10次。 输液的患者最好在输液完毕至少1小时后采血送检；如果输液过程中急需检测，可选择输液对侧肢体采血。 疟原虫采血时间：应在患者发作后10小时内采血送检，最好在寒战高热时采血。 注射器采血时，应拔下针头和试管塞，沿管壁缓慢注入。 不好的习惯：拍打采血处、患者握拳,尿液样本采集及运送,清洁样本采集部位：收集尿液前应用肥皂洗手、清洁尿道口及其周围皮肤。 避免污染：应该避开月经、阴道分泌物、包皮垢、粪便、清洁剂等各种物质的污染，不能从尿布或便池内采集样本。 使用合格的容器：应用透明、不与尿液发生反应的惰性环保材料制成的一次性容器，容器必须干燥、清洁、防渗防漏，可密封运送，而且具有患者唯一标识。 特殊要求：若需采集清洁尿，如中段尿、导尿样本或耻骨上段尿，一般应由医护人员操作，并告知患者及家属有关注意事项。若采集幼儿尿，一般由儿科医护人员指导，使用小儿尿袋收集。,尿液样本采集及运送,粪便样本采集及运送,容器应清洁、干燥、有盖，无吸水性、无渗漏。 一般留取3-5g的新鲜粪便，并尽量选择其中含有粘液、脓、血的部分。如果外观无异常，需从表面、深处及粪端多处取材。 一般不应采集便盆或坐厕的粪便作为样本。 粪便样本应避免混有尿液、消毒剂及污水等杂物。 阿米巴滋养体检查，挑取粪便的脓血部分或稀软部分，立即保温送检。,浆膜腔积液样本采集及运送,穿刺成功后，留取2 ml液体于无菌容器内。 为防止样本凝固，最好采用EDTA-K2 ( 用量为1.5-2.2 mgml ) 抗凝的真空采血管留取。,脑脊液样本采集及运送,脑脊液分别收集于3个无菌试管内，每管1-2 ml；第1管做细菌培养，第2管做化学和免疫学检查，第3管做常规检查；如疑有恶性肿瘤，可再留1管做脱落细胞学检查。,血凝管,适用于PT、APTT、FIB、PT、D-二聚体、凝血因子检测等。 抗凝剂：柠檬酸钠0.129mol/L 抗凝剂与血样的体积比(1：9) 采血后立即颠倒180度摇匀10次,凝血检查样本采集及运送,采血时环境应温暖，患者要放松，防止静脉痉挛，采血前不应拍打前臂。压脉带不要过紧，应控制在1min内,防止血液成分及浓度发生改变。 正确选择采血容器，看清采血标识，避免抽血不当及采血不足。 需要抗凝的血液，采血后立即将血液与抗凝剂充分颠倒混匀10次（避免用力震荡，以防溶血及泡沫产生）。 同一病人进行多种血液样本采集时，凝血检查应在第三管采集。 为保证检测结果准确，不能在静脉输液同侧臂或输液三通处进行采血(因为采取的样本常含有小凝血块及污染的组织液，有时还可混有此途径给予的药物，如肝素反流在样本中，导致凝血时间不准)。 出凝血检验样本的采集，应使用枸橼酸钠抗凝剂；血液与抗凝剂的体积比一般为9:1，当样本的压积在0.25%HCT0.55%时，应与检验科联系，对血液与抗凝剂的体积比进行调整。,生化检查样本采集及运送,乳酸采血时不能使用压脉带，患者不可用力握拳或挤压。 脂类检查样本需空腹12h,微生物检验标本送检中常见问题,1.样本量太少：捕捉细菌的几率小； 2.样本量太多：与培养基比例不适当，营养供给不足 3. 采集的标本与申请单不一致； 4.一个容器贴两个条码，第二个条码将第一个信息盖住，实验室无法识别，如痰细菌和真菌培养共用一个容器，两个条码重叠，要求两个医嘱分别用两个容器盛装样本。,5. 非无菌容器留取的标本或采用不合格的容器； 6.容器中无标本； 7.将有菌容器中的标本重新倒入无菌容器； 8.盛标本的容器未加盖； 9.取材后将标本放置时间过长； 10.换药后取材；,微生物检验标本送检中常见问题,11.从输液管直接采集标本； 12.正在点滴抗菌药物过程中采集血液标本； 13.用注射器直接送检血液标本； 14.从尿液收集袋中直接抽取标本； 15.用拭子采集厌氧菌标本； 16.停医嘱后继续送样本；,微生物检验标本送检中常见问题,17.一个医嘱重复检验； 18.用错采血管：真菌D葡聚糖检测(要求用BD厂家不带分离胶的血清采血管)、内毒素检测 （BD厂家绿的盖的抗凝管） 19.组织标本用纱布包裹送检； 20.血培养瓶上条码被患者信息条码覆盖，导致血瓶放入仪器时无法扫描条码。 21.标本上条码脱落；,微生物检验标本送检中常见问题,1、由于个别科室血培养瓶取后没及时使用，造成培养瓶过期； 2、还有的科室采错血和重复采血造成培养瓶浪费，所以，各科室如做血培养或无菌体液培养需要用培养瓶的，一律请护士长开方盖章后微生物室才予以发放； 3、我们将定期监察瓶子的使用情况，对于送检样本量与取瓶量不符的科室，将报告院里相关主管部门处理。,微生物检验标本送检中常见问题,耗材管理问题,无菌尿杯：调料容器 其它样本容器：全院公用,条码粘贴问题,1、采血管粘贴问题 标签与样本种类不符