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SurvivinSurvivin 反义核酸诱导乳腺癌细胞凋亡反义核酸诱导乳腺癌细胞凋亡 的实验研究的实验研究(1)(1) 作者:段体德 1,刘德权 2,杨策尧 1 【摘要】目的探讨 Survivin 反义核酸技术诱导乳腺癌 细胞凋亡的作用及效果。方法本实验共分 6 组,分为以脂 质体介导反义寡核苷酸组(ASODN/Lip) 、无义寡核苷酸组 (NODN/Lip)及 RPMI1640 培养液的空白对照组(Lip) ,转 染人乳腺癌 MCF-7 细胞系,应用 Hoechst33258/PI 双重染 色观察 MCF-7 细胞的形态学改变,透射电镜观察细胞超微 结构,流式细胞仪检测细胞周期和细胞凋亡的变化,DNA 凝 胶电泳观察凋亡情况,研究 Survivin 反义寡核苷酸对 MCF- 7 乳腺癌细胞的生长抑制作用。结果 Hoechst33258/PI 染色 及透射电镜观察可见转染后的细胞结构呈凋亡样改变;流 式细胞仪检测见转染后细胞凋亡显著增加,并出现 G2/M 期 阻滞现象;DNA 凝胶电泳在 600ng/ml,800ng/mlASODN/Lip 组的电泳图谱上呈现出明显的“梯状”现象。结论凋亡抑 制基因 Survivin 表达下调对乳腺癌细胞的生长抑制作用主 要是通过诱导细胞发生凋亡以及阻止有丝分裂发生在 G2/M 阻滞期来实现,Survivin 靶向反义核酸技术可能成为乳腺 癌基因治疗的一种有效方法。 【关键词】乳腺癌;Survivin 基因;反义核酸技术;凋亡 【Abstract】ObjectiveToexploretheeffectofcellsapopt osisonhumanbreastcanceraftersurvivinwasblockedwitht heantisensetechnique.MethodsTheexperimentsweredivid edintosixgroups.AntisenseOligonucleotide,nonsenseo ligonucleotidewastransfectedinhumanbreastcancerMCF- 7celllineandRPMI1640culturemedium.ThestudyusedHoech st33258/PI,electronmicroscope,flowcytometeranding elelectrophoresisofDNAtoobservethecellsapoptosis.Re sultsThecellsapoptosisaftertransfectionwereobserved byHoechst33258/PI,electronmicroscopeandingelelectr ophoresisofresultofflowcytometershowedthecellsapopt osisaftertransfectionandtheblockingphenomenaappeare dinG2/Mperiod.ConclusionTherestrictionbythereductio nofsurvivinexpressioninbreastcancercellsismainlyfun ctionedthroughitsinductionofcellsapoptosisandpreven tionofmitosisatG2/Mperiod.Survivintargetingtherapyc anbeusedasanimportantmethodinbreastcancertreatment. 【Keywords】 breastcancer;survivingene;antisensetechnique;apo ptosis 现代分子生物学研究发现与细胞恶性增殖和分化受阻一样, 细胞凋亡异常在大多数恶性肿瘤的发病学上亦占有重要地 位。诱导肿瘤细胞发生凋亡目前正逐步成为治疗恶性肿瘤 的一种重要的治疗方法,具有较高的选择性与靶向性。 Survivin 是近年来发现的一个新的细胞凋亡抑制基因,能 够抑制肿瘤细胞凋亡,使肿瘤细胞得以生存,在肿瘤细胞 内导入凋亡活化基因或灭活凋亡抑制基因是肿瘤基因治疗 的主要方法。在本实验研究中我们应用荧光染色、电镜、 DNA 琼脂糖凝胶电泳、流式细胞仪等技术,从细胞形态学到 细胞周期、DNA 变化,从定性到定量进行了研究。探讨是否 可通过转染 Survivin 反义寡核苷酸(ASODN)诱导乳腺癌 MCF-7 细胞发生凋亡,为乳腺癌的基因治疗提供理论实验依 据。 1 材料与方法 细胞培养 MCF-7 人乳腺癌细胞株由中国科学院上海细胞研 究所提供。将加入含 10%小牛血清的 RPMI1640 培养液制成 的细胞悬液,镜下计数,调节细胞至约 1106 个/ml,分 别接种于 30ml 培养瓶、96 孔培养板及铺有盖玻片的 6 孔培 养板,37,5%CO2 常规培养至 80%汇片后进行转染。 脂质体介导 SurvivinASODN 转染 MCF-7 细胞 寡核苷酸的设计及合成采用 SurvivinmRNA231-251 设计互 补 ASODN,反义寡核苷酸(ASODN)序列 5CCCAGCCTTCCAGCTCCTTG3;对照无义寡核苷酸 (NODN)序列 5CGCAGTAGCTGCGCTGATTG3,对照序列经 GeneBank 比对无相关基因,两条序列每端 5 个磷酸基采用 硫代磷酸型,即在合成时用硫基取代寡核苷酸片段磷酸上 的羟基,部分反义寡核苷酸 5FAM 荧光素标记,由上海生物 工程公司提供。 转染混合物的制备及配制 A 液:Survivin 反义寡核苷酸及 对照序列的浓度设定为: 200,400,800,1200,1600(ng/ml) ,用不含血清及抗生 素的 RPMI1640 将反义寡核苷酸配成上述浓度溶液。B 液: 将 Lipofectin:RPMI1640(不含血清及抗生素) =4l100l 的比例配成 B 液。将等体积的 A 液与 B 液混 合,室温下放置 40min 左右,使脂质体与寡核苷酸充分包 裹。寡核苷酸的终浓度为 100,200,400,600,800(ng/ml) 。 转染将不同浓度的 ASODN-RPMI1640 转染混合物加入培养瓶 或培养板中。本实验设 6 组分别为:(1)Lip 组以 RPMI1640 培养液代替转染混合物作为空白对照(加入 Lip) ; (2)无义对照(NODN)组,以 NODN/Lip-RPMI1640 转染细 胞作为无义对照;(3)200ng/mlASODN 转染组;(4) 400ng/mlASODN 转染组;(5)600ng/mlASODN 转染组; (6)800ng/mlASODN 转染组,37,5%CO2 常规培养 24h, 弃去转染混合物,胰酶消化收集细胞。96 孔板中的细胞用 于检测细胞贴壁率、细胞生长抑制率以及绘制细胞生长曲 线。 透射电镜观察 MCF-7 细胞超微结构转染接种于 30ml 培养瓶 的细胞 48h,以%胰蛋白酶/消化,戊二醛原位固定,琼脂包 埋沉淀细胞,梯度丙酮系列脱水,Epon812 系列包埋固定, 超薄切片用醋酸铀及柠檬酸铅染色,电镜下观察、拍照。 Hoechst33258 与 PI 染色细胞形态学观察荧光显微镜下观察 细胞核形态及颜色改变以区分出天然细胞、凋亡细胞以及 坏死细胞。 流式细胞仪检测细胞凋亡率和细胞周期细胞转染结束后培 养 48h,每组收集 2106

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