RNA的提取琼脂糖电泳及RTPCR

（8：00~8：05）

实验回顾实验一、基因组DNA的提取、酶切及电泳目的DNA片段质粒TA载体连接重组质粒目的DNA转化无质粒的E.Coli死亡有质粒的E.Coli存活含抗生素培养基中生长PCR2-3min平板筛选实验二RNA提取、逆转录PCR

实验内容1、小鼠肝脏组织总RNA的提取；2、RNA的琼脂糖凝胶电泳；3、以总RNA为模板的逆转录反应；4、以cDNA为模板的特定基因的RT-PCR:注：本次实验扩增GAPDH基因(746bp)5、PCR产物的电泳及回收（8：05~8：15）教师要有下午电泳时播放的多媒体PCRFlash动画PCR在法医学上的应用RNA提取操作注意事项RNA分离的关键因素是减少RNA酶污染。RNA酶是一类自然界中广泛存在、生物活性非常稳定的酶类。环境中的灰尘、人体汗液、唾液、实验器材表面。RNase耐热、耐酸、耐碱，不需要辅助因子就具有活性作用。

1、尽量避免外源性RNase污染a.操作环境空气洁净。带手套、口罩。b.用新开封的化学试剂。（试剂应该专用）c.一次性塑料器材最好是新开封并经过DEPC水处理及高压灭菌。d.玻璃器材、水都应该经过去RNase处理。对玻璃器材还应该进行高温烘烤。2、应用RNase抑制剂抑制内源性RNase活性。

总RNA

真核细胞的RNA主要分为：1、mRNA:1-5%

起始密码：AUG终止密码：UAA,UAG,UGA。5`鸟嘌呤7位甲基化—CH3修饰。1）免受核酸酶破坏，2）起始、促进蛋白质合成。3`poly(A)尾巴结构20--200个A.翻译所必需。

2、tRNA:10-15%3、rRNA:80-85%大亚基60S:28S=4718nt5S=120nt5.8S=160nt

小亚基40S:18S=1874nt1）将1mlTrizol试剂分装到Eppendorf管中备用。2）实验教师操作:

取新鲜小鼠肝脏组织，组织块不宜过大,放在玻片上立即研磨,研磨要彻底。3）将研磨后的组织（小米粒大小）转移至1mlTrizol试剂中，盖紧盖，上下颠倒混合2min以上，使组织细胞充分裂解。肉眼观察可见液体变成均匀浑浊状。4）室温孵育10min。（8：15~9：05）发放口罩，帽子，每个组来一个人领取。强调肝脏组织块不宜过大,研磨要彻底。第一部分：提取小鼠肝脏组织的总RNA1、异硫氰酸胍法：GuSCN是一种强的蛋白质变性剂，能够裂解细胞的同时，还能有效地抑制内源性Rnase的活性，通过有机溶剂的分步抽提，可获得纯度较高的细胞总RNA。特点：需低温操作，但价格经济。2、Trizol试剂（商品化产品）特点：在室温下可以提取细胞总RNA，具有简单、快速、提取量大、纯度高的优点。3、mRNA提取试剂盒真核细胞mRNA的3末端有ploy(A)尾，利用寡聚dT纤维素结合mRNA，将其从细胞总RNA中分离出来。课间介绍RNA提取的几种方法室温孵育10minRNase抑制剂介绍1、DEPC,二乙基焦炭酸盐RNA操作时最常用的RNase抑制剂，对核酸酶有很强的抑制作用。作用机制是与蛋白质中的组氨酸结合，使蛋白质变性。使用方法：用来去除溶液中的RNase。RNA提取中所有液体试剂都应该用DEPC处理。有效浓度：0.05%---0.1%，室温磁力搅拌20分钟。灭活条件：高压消毒，或70

C1h。在Tris溶液中半衰期为1.25min。储存方法：不能用聚苯乙烯器皿。4

C，或液氮中。2、肝素

使用浓度：0.1—10mg/ml

效果:37

C时，可抑制95%的RNase活力。如果与DEPC联合应用，具有极强的抑制效果。

室温孵育10min结束5）加入200

l氯仿，震荡混匀20-30s，室温放置5min（此期间液体开始分层，不要轻易搅动液体）10,000rpm，离心5min(统一离心)7）将清澈透明的上层水相转移至另一离心管中。9：05~10：05RNA(清澈透明)DNAProtein第一部分：提取小鼠肝脏组织的总RNA

RNA提取:RNA(清澈透明)DNAProtein8）沉淀RNA：加0.5ml异丙醇，上下颠倒混匀，室温10min。10,000

rpm，4

C，(统一)离心10min，弃上清。10）加1ml75%乙醇洗涤。11）7500rpm，4

C离心1min，弃上清再离心几秒钟，将管壁液体完全移净。在用TriZol试剂提取总RNA时，全程均在室温进行，当RNA沉淀用水溶解后，应该注意在冰上操作，而且尽可能快地进入下一个环节。离心10分钟时—课间休息注意：75%乙醇的作用：不起沉淀作用，只是为了清洗管壁加入方法一定是贴管壁在沉淀的对侧缓慢加入，不要搅动沉淀12）室温干燥3－5min（根据RNA沉淀大小决定，干燥后的沉淀应该是无色胶样透明状，避免过分干燥,此步骤非常关键。）注意事项：RNA:自然室温干燥避免放在37oC孵箱中过度干燥以防无法溶解。RNA沉淀必须绝对干燥，微量乙醇残留，容易造成RT的失败，但过分干燥又是造成RNA不溶解的主要原因。判断RNA沉淀是否充分干燥但又不是过分干燥是逆转录成功的关键环节。干燥后的沉淀应该是无色胶样透明状。RNApellet：乳白色，透明胶样干燥后无色透明13）用加样器吸取冰冷DEPC-H2O18

l，加到RNA上，进行吹打溶解RNA沉淀。溶解的RNA应置冰上保存。14)吸出9

l溶液放到冰上备用(将用于电泳).15)剩余9

l溶液,放到冰上备用（用于RT－PCR）.RNA的溶解：注意：

RNA沉淀的溶解一定要耐心充分，一定要用加样器反复多次吹打方可。但由于溶液体积非常小，要避免出现气泡影响RNA的溶解。避免气泡的方法：用加样器的第一挡每次吹打都不要打出气体判断溶解程度：吹打时液体流动不拐弯为止。

逆转录酶：

存在于逆转录病毒体内。常见有哺乳动物型37oC，禽类型42oC。以mRNA为模板的DNA聚合酶，形成与RNA碱基相互补DNA链，后者称为互补DNA－cDNA。

RNAaseH的活性：切掉DNA和RNA杂合链上的RNA。

RT第二部分：逆转录反应(RT)AAAAAA(n)mRNAAAAAAA(n)3-TTTTTT(18)-5

68-70oC,annealingAAAAAA(n)3-TTTTTT(18)-5

37-42oC,RTasemRNAmRNAcDNA10min1-2h

RT

按照下列配方进行RNA的RT反应：第一步：总RNA9lOligodT(0.05

g/ml)1

l

(终：2.5ng/ml)

轻弹管底混合，置65℃水浴10min后，立即冰浴2min。在水浴10分钟时，开始RNA电泳。RT引物的用量非常少，因为模板量是固定的，而且只进行一次反应。关键点：RNA是否充分溶解根据组织或细胞的量确定逆转录反应的体积，通常利用1mlTrizol试剂提取出来的总RNA适合于20

l体积的逆转录反应体系。引物的量是否合适高温退火避免Oligo

dT锚锭点错误，同时，打开RNA链之间的二级结构，利于RT。

退火后一定迅速放在冰上在水浴10分钟时，开始RNA电泳。将

RNA进行1%琼脂糖凝胶电泳9lRNA样品2~3l上样液轻轻混匀，上样电泳:120伏，10～20分钟注意:电泳槽的清洁及新的电泳液！琼脂糖凝胶要新鲜配制！紫外透射仪观察电泳结果RNA电泳结果rRNA可以作为内部Marker分子，通过观察rRNA的两条带（28S和18S）的比例，可以判断所提取mRNA是否存在降解。

RNA电泳并不能判断mRNA是否提取成功，也不作为鉴定RNA提取质量的常规方法，因为在电泳过程中RNA可能发生降解。重点讲解28S、18S和5S的比例。分析本次实验结果：28S、18S和5S的比例。RNA电泳结果分析第二步：向上述反应溶液中依次加入下列试剂：5

RT-buffer4

lRNasin(40U/ml)1

ldNTPs(10mmol/L)4

lAMV1

l轻弹管底混合，可用离心机甩一下。置42oC水浴1h。将上述反应移至68oC水浴10min以灭活RTase，并冰浴，保存备用。（10：30~11：30由老师结束实验，放-20oC，下午使用）cDNA4

l10

PCRbuffer（含MgCl2）5

ldNTPs(10mmol/L)1

l5’引物(10

mol/L)1

l3’引物(10

mol/L)1

l去离子水（补足反应体系）39

lTaqDNApol.(2U/

l)1

l

轻弹管底混合（用离心机甩一下）注意：最后加入Taq酶。PCR操作

50l在一微量离心管中依次加入下列试剂：PCR仪设定的反应条件：94oC45SDNA变性55oC45SDNA复性72oC1min产物链延伸25-30个循环后72oC10min

根据待扩增基因片段的长短确定具体反应条件，一般情况下，基因片段在500-1000bp左右时，可按下列条件进行PCR。PCR仪介绍：如果上盖加热的PCR仪，可以直接放入仪器中进行PCR；如果下面加热的PCR仪，加入2滴矿物油后，加入仪器中，不过这种仪器现在已经很少用到。PCR反应期间讲解：1：20~3：00PCR仪内发生的反应1）对于定性分析特定基因在不同样本中的表达情况时，一定要防止污染，尤其是PCR产物的污染，为了排除假阳性结果，各种对照是必不可少的。2）模板不是越多越好，模板过多，当引物与模板退火时会发生模板先互补结合，引物无法与模板结合，因此，适量模板量是非常重要的。模板过多还能大量消耗镁离子。PCR反应注意事项：

根据待扩增基因片段的大小确定延伸时间，小于500bp，一般采用1分钟即可，大于500bp，可采用2分钟，但一般超过2000bp，一般可适当延长延伸时间2-3分钟。

变性温度一般选用94

1oC，变性时间可根据模板大小和浓度确定，一般采用30秒。

退火

温度与引物序列关系非常密切，退火时间与引物长度和GC含量有关。引物长度一般在15-25bp之间。Tm=4(G+C)+2(A+T)如何确定PCR的变性、退火和延伸温度和时间？RT的引物选择：

Oligo(dT)15-18Specificanti-senseprimerRandomprimer因为基因序列与mRNA序列是一致的。病毒RNA作为RT模板时，一定要知道病毒是属于哪一种病毒：正链RNA病毒？负链RNA病毒？正链RNA病毒：RT引物用anti-senseprimer；负链RNA病毒：RT引物用senseprimer。

1.为什么要加入镁离子？镁离子是TaqDNA聚合酶的辅酶，2.0mM的浓度时酶活性最高。镁离子能够和负离子集团结合，在PCR反应中，模板DNA、引物DNA、dNTP均可和镁离子结合，尤以dNTP影响最大。一般镁离子应比dNTP高0.5-1.0mM。2.dNTP的浓度对PCR有什么影响？dNTP浓度过高，除容易引起碱基错配外，还可结合镁离子。3.为什么有时候需要进行热启动？热启动就是让DNA在变性温度下开始，TaqDNA聚合酶在DNA双链充分打开之后再加入PCR反应体系中，这样可以保证模板DNA变性充分，引物结合顺利并特异。

PCR反应相关问题：4、DNA聚合酶：1）TaqDNA聚合酶的特性:半衰期：95oC，40分钟活性：5`--3`方向的聚合酶活性。5`--3`外切酶活性。缺乏3`--5`外切酶活性。因此没有校正功能。2）Vent-TMDNA聚合酶：半衰期：100oC，95分钟活性：还具有3`--5`外切酶活性。引物设计

1、GC比值：碱基对中的GC之间有三条氢键，AT之间有两条氢键，GC和AT在引物序列中的合理比例是设定PCR退火温度的重要依据。通常在一个引物中GC和AT各半。2、引物特异序列的长度至少为15-18bp。3、引物的方向：引物的方向永远是5‘→3’方向，正向（Sense）引物是与一股模板DNA序列相一致的，而反向（Antisense）引物则与这股模板DNA序列相互补。4、引物的酶切位点：通常在引物的5‘-端设计适当的限制性酶切位点。两种酶切位点使克隆具有方向性。5、引物上启始和终止密码：如果想表达DNA片段，所用的载体又不含启始密码和终止密码，应将其设计在引物的酶切位点之后、特异性DNA序列之前。6、如果表达的蛋白用亲合层析方法纯化，可将必要的序列设计在引物中以使所表达的融合蛋白易于纯化。引物设计方法例：通常在引物的5‘-端设计适当的限制性酶切位点凝胶成像系统：凝胶成像系统：播放PCRFlash动画PCR在法医学上的应用引物的配制：Primer1:OD=5注意：计算一管引物的总含量或克分子数先配成100mM的浓度作为储存液工作液可以通过稀释获得如果需要反复应用的引物，配制后一定要分装保存，一段时间后弃掉。切记：不要将合成回来的引物一次性配成工作液！

PCR:PCR的基本流程：94oC,45sec55oC,1min72oC,2min退火温度的变化是根据引物的GC比例确定或估计的；退火时间的变化是根据引物的长度调整的。热启动：避免发夹结构或其他二级结构影响引物的退火。两种方式加入DNA聚合酶：热启动结束后暂停PCR反应，在PCR仪上直接趁热加入DNApol；热启动结束后将反应管迅速放在冰上，然后加入DNApol。赠送精美图标1、字体安装与设置如果您对PPT模板中的字体风格不满意，可进行批量替换，一次性更改各页面字体。在“开始”选项卡中，点击“替换”按钮右侧箭头，选择“替换字体”。（如下图）在图“替换”下拉列表中选择要更改字体。（如下图）在“替换为”下拉列表中选择替换字体。点