离体小肠段的生理特性课件

离体小肠段的生理特性离体小肠段的生理特性【目的要求】学习离体肠段平滑肌的实验方法。了解肠段平滑肌的生理特性。离体小肠段的生理特性【实验原理】哺乳动物消化管平滑肌具有肌肉组织共有的特性，如兴奋性、传导性和收缩性等。消化管平滑肌又有其特点，即兴奋性较低，收缩缓慢，富有伸展性，具有紧张性、自动节律性，对化学、温度和机械牵张刺激较敏感等。离体小肠段的生理特性这些特性可维持消化管内一定压力，保持胃肠等一定的形态和位置，适合于消化管内容物的理化变化，在体内受中枢神经系统和体液因素的调节。将离体组织器官置于模拟体内环境的溶液中，可在一定时间内保持其功能。离体小肠段的生理特性胃肠平滑肌的收缩反应主要由副交感神经控制，肠肌细胞膜上富含M胆碱能受体，M受体激动剂和拮抗剂均可明显影响其收缩反应。本实验以台氏液作灌流液，在体外观察及记录哺乳动物离体肠段的一般生理特性，观察药物对离体肠管平滑肌的作用。离体小肠段的生理特性【动物和器材】兔；台氏液；常规手术器械；张力传感器、生物信号采集处理系统恒温平滑肌槽、支架、烧杯、气囊、肾上腺素（1：10000）、乙酰胆碱（1：10000）、阿托品针剂（1支）。离体小肠段的生理特性1、调试实验装置如图，浴槽外的水浴温度为37℃，浴槽内台氏液调温至37±0.5℃。调整好台氏液充气量，（小气泡接连不断）。

离体小肠段的生理特性离体小肠段的生理特性2、制备离体兔肠段用立掌或木槌猛击兔后头延髓部，致其昏迷后立即剖开腹腔。找到胃幽门与十二指肠交界处，在十二指肠起始端扎一线，取出十二指肠、空肠，放入盛有预冷台氏液的表面皿内。先用注射器冲洗内容物，冲洗干净后剪成若干约1.5cm长的小肠段（每一实验小组一段）在其两端结扎。离体小肠段的生理特性一端做一短线环固定在通气的L管下方或浴皿内，另一端扎线与张力传感器相连。将肠段完全浸浴在调好温度的平滑肌槽中。离体小肠段的生理特性3、开启生物机能实验系统固定L管并调节扎线与张力传感器，使肠段运动自如又能牵动传感器（注意：扎线不可贴壁或过紧过松）。调节增益与扫描速度，使肠段的运动曲线清晰地显示在显示器上并记录肠段活动曲线。离体小肠段的生理特性4、实验观察（1）记录对照肠段运动曲线后，停止供气1分钟并记录曲线变化，同时观察肠段紧张度变化。当出现明显变化后，立即恢复供气。用新鲜37℃台氏液冲洗，待恢复正常。注意作好标记离体小肠段的生理特性（2）记录对照肠段运动曲线后，加入25℃台氏液，并记录曲线变化，同时观察肠段紧张度变化。当出现明显变化后，立即用37℃台氏液冲洗，待恢复正常。（3）同法加入45℃台氏液并记录曲线变化，同时观察肠段紧张度变化。当出现明显变化后，立即用新鲜37℃台氏液冲洗并待恢复。注意作好标记离体小肠段的生理特性由于以上流出液中未加入药物，可以回收使用。以下加入药物的流出液不可再用。离体小肠段的生理特性（4）同法，加入2滴肾上腺素（1：10000），观察并记录曲线变化。（5）同法，加入1～2滴乙酰胆碱（1：10000），观察并记录曲线变化。（6）加入3滴阿托品后立即加入于（5）同样剂量的乙酰胆碱，记录并观察曲线变化。同（5）比较曲线有何不同。注意作好标记离体小肠段的生理特性

注意事项1.温度控制：浴槽内台氏液要保持一定温度；加药前必须准备好更换用的37℃台氏液。2.游离及取出肠段时，动作要快，取兔肠及兔肠穿线时尽可能不用金属及手指触及。为保持离体肠段的活性，可先预冷充氧的营养液，游离肠段及穿线在预冷的营养液中进行。离体小肠段的生理特性3.实验中始终通气。4.上述药物剂量只是参考，效果不明显可补加，每次加药出现效果后，必须立即更换浴槽内的台氏液并冲洗3次，待肠肌恢复正常后在观察下一项目。5.注意作好标记离体小肠段的生理特性思考题1、本实验是否可用麻醉动物的肠段？为什么？2、进行哺乳动物离体组织器官实验时，需控制哪些条件？3、为什么加入各种药物会引起离体肠段活动的变化？其机理是什么？4、