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文档简介
试验壹大、小鼠的基本试验操作壹、试验目的:通過实际操作,掌握大、小鼠的壹般操作措施,包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、給药、采血。二、试验動物:昆明小鼠4只(2雌2雄)、大鼠4只(2雌2雄)、灌胃器2個、注射器4個、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1個、大鼠固定器1個。三、试验环节1、抓取和固定1.1抓取:左手抓小鼠的尾根部1.2固定:左手抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,後拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和無名指将尾巴固定在手掌面。1.3同样操作将大鼠抓取和固定2、性别鉴定:2.1抓取和固定小鼠2.2观测肛门与生殖器间的距离和两者之间的毛发。雄性:距离長,毛发密(和其他部位同样);雌性:距离短,毛发稀疏。2.3同样鉴别措施,反复鉴别大鼠。3.給药3.1灌胃法3.1.1按對的措施用左手抓取和固定小鼠,使腹部朝上,颈部拉直。3.1.2固定後,右手持持接灌胃针的注射器吸取药液(或事先将药液吸好),将针頭從口角插入口腔内,然後用灌胃针頭压其頭部,使口腔与食管成壹直线,再将灌胃针頭沿上腭壁轻轻進入,转動针頭刺激動物吞咽,然後沿咽後壁慢慢插入食道。3.1.3當感覺有落空感時表明灌胃针也許進入胃内,向外抽動注射器活塞,感覺有负压,此時可将药液灌入。3.1.3用大鼠反复同样操作3.2注射給药3.2.1皮下注射3.2.1.1用左手拇指和食指轻轻提起動物颈後肩胛间皮肤,3.2.1.2右手持注射器,使针頭水平刺入皮下,针頭能自由拨動無牵阻,推送药液時注射部位隆起。拨针時,以手指捏住针刺部位3.2.1.3用大鼠反复同样操作3.2.2腹腔注射3.2.2.1以左手固定小鼠,使腹部向上,3.2.2.2右手持注射器從下腹两侧向頭方刺入皮下,针頭稍向前,再将注射器沿45角斜向穿過腹肌進入腹腔,此時有落空感,回抽無回血或尿液,即可注入药液。3.2.2.3用大鼠反复同样操作3.2.3尾静脉注射3.2.3.1先将動物固定在暴露尾部的固定器内,3.2.3.2用75%酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张,3.2.3.3以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧,用中指從下面托起鼠,右手持注射器,使针頭尽量采用与尾部平行的角度進针,從尾末端处刺入。3.2.3.4注入药液,無阻力,表达针頭已進入静脉,注射後把尾部向注射侧弯曲,或拔针後随即以干棉球按住注射部位以止血。3.2.3.4用大鼠反复同样操作4取血4.1内眦取血:4.1.1左手固定小鼠,食指和拇指轻轻压迫颈部两侧,使眶後動静脉充血。4.1.2右手持毛细采血管,以45度從内眼刺入,并向下旋转,感覺刺入血管後,再向外边退边吸,使血液顺承血管自由流入小管中,4.1.3當得到0.5ml血量後,放松加于颈部的压力,并拔出采血器,以防穿刺孔出血4.1.4用大鼠反复同样操作五、试验讨论1、小鼠抓取的感受:小鼠性情较温顺,壹般不會咬人,比较轻易抓取固定。大鼠抓取措施基本同小鼠,抓大鼠時若操作者不纯熟,或者大鼠尤其凶猛,操作者最佳戴上防护手套(帆布或硬皮质均可)。如若是灌胃、腹腔注射、肌肉和皮下注射時,可采用与小鼠相似的手法2、小鼠尾静脉注射感受:2.1尾静脉注射時,可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭,可使血管扩张,同步也可软化表皮角质。2.2如反复注入,应尽量從尾末端開始,後来向尾根部方向移動注射先遠後尽,不要壹開始就從尾根部,失败了無法选用注射部位;再次,進血管後注意保持稳定,针尖很轻易刺穿血管的。2.3尾静脉就在尾巴的正左右两边,先用酒精用力擦,可以去掉部分角质,然後按住近心端让充血,就很轻易看到了。3.灌胃3.1针頭插入食道過程中,若動物挣扎厉害,应退出後灌胃针,待動物安静後重新插入。切不可强行插入,以免损伤食道或误入气管导致動物死亡。3.2當感覺有落空感時表明灌胃针也許進入胃内,向外抽動注射器活塞,感覺有负压阐明灌胃针未插入气管,此時可将药液灌入。篇二:動物试验汇报動物试验(小鼠)的壹般操作技术实习曰期:—11—13壹目的和规定:通過实际操作,使學生掌握试验的壹般操作措施,包括動物的抓去和固定、编号被毛的清除給药途径麻醉采血和处死等措施。二实习内容:1试验動物的抓取2试验動物性别的鉴定3试验動物编号的標识措施4试验動物被毛的清除5试验動物的給药途径和措施6试验動物的麻醉7试验動物的采血8试验動物的处死措施9解剖三试验的措施1小鼠的抓取:抓取時先用手将鼠尾提起,放在试验台上,轻轻拉尾,用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和頭颈部皮肤,将鼠置于左手中心,用左手無名指和小指按住尾巴和後肢,即可做其他试验操作作用。2小鼠性别的鉴定:抓取小鼠後,观测動物肛门与生殖器之间的距离。距离遠的為雄性,距离近的為雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓。3小鼠编号的標识措施:用被毛染色法做小鼠编号。用苦味酸(黄色),壹般左前肢為1,左侧腹部為2,左後肢為3,頭颈部為4,背部為5,尾根部為6,右前肢為7,右腹部為8,右後肢為9。用两种颜色可以染到99。4小鼠被毛清除:有剪毛法,拔毛法,剃毛法,用硫化钠脱毛法。5給药途径和措施:給药途径有經口灌胃法,經呼吸道吸入,經皮肤吸入和注射給药法。用壹支特制的灌胃针進行灌胃,小鼠壹般給1.5ml如下。用注射器抽好液体,然後抓取小鼠,针頭延侧角通過食管進入胃内,然後将液体注入。6小鼠的麻醉:麻药有挥发性的和非挥发性两种。給药途径有吸入性麻醉,注射給药。小鼠壹般用腹部麻醉的措施。用水合氯醛300ml/kg,根据小鼠的体重給药0.25ml。抓取小鼠後,使针頭和腹部成30度的角,刺入腹腔,回抽若無回血或者肠内容物可以注入。注入麻药5分钟後,小鼠失去知覺。7小鼠的采血的措施:有静脉采血法,尾部采血法,眼眶静脉采血法和心脏采血法。将小鼠装入固定盒中,露出尾部,用二甲苯图擦,使尾静脉充盈。用锋利的刀片切断壹根尾静脉即可用毛细管采血,也可用细注射器從尾静脉采血。8小鼠的处死措施:用颈椎脱臼的措施或者注射過量的麻药使小鼠死亡。9解剖:從腹部開始,查看腹部脏器,以肝脏胃脾肾输尿管姨小肠大肠膀胱前列腺性腺次序。然後再看胸部,看到肺脏心脏胸腺等器官,并在直视的状况下進行了心脏的采血。然後再看颈部的解剖。最终解剖頭部。四讨论和結论:通過本次试验,我們學到了试验動物的壹般操作技术,如抓取和固定、编号被毛的清除給药途径麻醉采血和处死等措施。為後来進入临床進行试验研究做好了初步的准备。试验汇报(三)壹、试验目的:1。掌握豚鼠、兔、狗的壹般操作措施,包括豚鼠的抓取和固定、编号、性别鉴定、給药、麻醉、采血、处死的措施。2.兔子的抓取和固定、被毛的清除、性别的鉴定、給药、采血和处死的措施。3.犬的抓取和固定、采血的措施。二、试验對象:豚鼠,兔,犬。三、试验环节:(壹):豚鼠:1.抓取和固定:先用手掌抓住背部,将手张開,用拇指和食指握住颈部,再拿起来。2.编号:同大鼠。3.性别鉴定:雄性生殖孔呈圆形,雌性生殖孔呈椭圆形。4.給药、麻醉、采血(無尾静脉采血)、处死同大鼠。(二):兔:1.抓取和固定:當兔子安静下来時,用右手抓住颈部的被毛与皮肤,提起兔,然後用左手托住其臀部,兔身的重量大部分落在手上。2.被毛的清除:多采用剪毛法。剪毛部位事先用纱布蘸生理盐水予以湿润,用弯頭手术剪紧贴其皮肤依次将所需部位的被毛剪去。3.性别的鉴定:将生殖器附近的皮肤拔開,雄性可見壹圆形孔,裏面露出阴茎;雌性此处為壹条朝向尾巴的長缝,呈椭圆形间隙,下端有阴道開口处。4.給药:(1)經口灌胃法:灌胃時用壹木制的张口器(纺锤状,正中開小孔)横放于上下鄂之间,用绳固定。這時用左手抓住其嘴,右手将壹细导尿管由张口器中央小孔插入,進入食管和胃。經导尿管缓慢注入5ml生理盐水。(2)耳缘静脉注射法:剪去耳缘部被毛,酒精擦拭并轻弹欲注射部位,增進静脉充盈。然後以左手拇指和食指压住耳根部,右手持注射器,顺血管方向刺入静脉,進针1cm,有血液回流後注入生理盐水2ml。5.采血:(1)經耳缘静脉采血:進针措施同耳缘静脉注射法。(2)耳動脉切割采血:剪去耳動脉表面被毛,酒精消毒皮肤。于耳動脉尖端处划破動脉并采血。(3)心脏采血:剪去心前区被毛,选用左侧心脏搏動最明显的肋间靠近胸骨缘為穿刺點(由剑肋角由下往上左侧第三肋间处)。消毒皮肤,左手固定,右手持连有七号针頭的注射器与穿刺點垂直進针。顺利回抽到血液後即可采血。6.处死:空气栓塞法:同心脏采血法進针到心脏後注入20ml空气。(三):犬:1.抓取与固定:毕格犬抓取轻易。固定也相對轻易。捆绑犬時先绑扎犬嘴。绑扎措施:用绷带從下颌绕到上颌打壹結。然後绕向下颌再打壹結,最终将蹦带牵引到頭後,在颈顶上打第三個結。在這個結上在打壹种活結。2.采血:(1)桡侧静脉采血法:抓取和固定好後剪去注射部位的被毛。用胶皮管绑住其前肢,使静脉充盈。试验者左手托住其前肢,右手持连有7号针頭的注射器刺入内侧面皮下的桡侧静脉。進针1cm後回抽見血,即可采血。(2)小隐静脉采血法:抓取和固定好後剪去注射部位的被毛。试验者左手托住其後肢,右手持连有7号针頭的注射器刺入皮下的小隐静脉。進针1cm後回抽見血,即可采血。四、试验總結:兔的心脏采血相對难掌握進针點。篇三:動物试验及汇报编写规定附模板動物试验汇报规定第壹部分:動物试验概述应提供—個動物试验的重要内容提纲,该提纲应包括動物试验題目、研究小组组员、试验動物和研究产品的名称、试验用器械或药物的适应症、试验時间、试验目的、试验措施、试验研究動物、诊断及進入研究的重要原则、试验的产品信息、剂量、給药方式及批号、治疗持续時间、参照的治疗、剂量、給药方式及批号、评价原则(有效性、安全性)、记录措施、试验結论(效能結论、安全性結论、結论)及汇报曰期。该提纲应包括表明成果的数字资料,而不仅仅是文字和p值。第二部分:试验内容(壹)動物试验壹般资料(動物类别选择试验用動物的入选原则和数量、试验用产品等):(二)動物试验试验措施;(三)所采用的记录措施及评价措施;(四)動物试验评价原则;(五)動物试验试验成果;(六)動物试验试验中发現的副作用及其处理状况;(七)動物试验试验效果分析;(八)動物试验试验验結论;第三部分:试验(壹)试验名称:要可以明确体現试验内容;(二)试验目的:要直截了當的阐明為何要進行這個试验,处理什么問題,具有什么意义;(三)试验器材:所有仪器、材料应简介齐全;所用材料、试剂、诱导物對動物有無危害影响阐明。(四)试验動物的选用(動物种类,性别,体重,年龄,品系,级别,健康状况,動物来源及其合格证号);(五)分析也許影响到動物试验成果精确性的原因以保证试验成果的精确性、可靠性和反复性(环境原因;理化原因;营养原因;居住原因;同种動物间原因;异种動物间原因);(六)動物试验设计与分组(与否符合對照性、壹致性、反复性三原则;该试验选用了什么设计措施,例如單组比较设计、配對比较设计等等;動物随机分组措施应详细描述,如分為两组或者三组或者每個動物壹组時详细的操作措施,切忌不可简朴的“随机”二字就带過)。第三,试验基本技术的描述,包括:(壹)试验動物的抓取与固定(哺乳类与非哺乳类動物的措施不壹样);(二)動物的编号、標识(临時性、半永久性及永久性標识)及去毛(剪毛法、拔毛法、剃毛法、脱毛法);(三)若该试验中動物需要麻醉,则采用了何种麻醉类型与措施(全身麻醉措施、局部麻醉措施)以及麻醉药物与麻醉剂用量(挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂),若過量麻醉,复苏和急救措施是怎样实行的;(四)動物的給药途径与措施:根据不壹样的试验目的、動物种类、药物类型来决定動物的給药途径与措施;(五)動物血液的采集措施(不壹样部位);(六)動物多种体液的采集措施(不壹样部位);(七)常見观测指標的测定与检查措施(生理指標测定措施;生化指標测定措施;血液學指標测定与检查措施;免疫學指標测定措施);(八)受试動物的動物试验检查措施(壹般检查内容及措施;系统检查及措施;動物脏器组织的活检措施)。第四,试验過程的描述,又分為药物研究的動物试验、免疫研究的動物试验、有关感染研究的動物试验、有关生殖与胚胎研究的動物试验這几方面。重要從详细试验规定,试验准备,观测指標以及成果分析与评价来阐明。例如在药物長期毒性观测的動物试验措施中,需要對试验规定、观测指標和指標检测時间与恢复期观测三方面考虑,又如動物免疫血清的制备措施中,应對试验准备、免疫程序与效价测定和免疫血清的采集和提纯论述,再如病毒增殖的動物接种试验裏,应當對病毒增殖的鸡胚接种措施和動物感染病毒的接种措施作壹描述。第五,试验結束後,對试验動物的处理:(壹)若试验動物在试验過程中未受到大的伤害,则应對其采用福利措施善後处理,這裏就需對处理措施做描述;若产生的伤害使動物及其痛苦,出于人道考虑,应對其采用安乐死,因此安乐死的措施应阐明;(二)若需剖检,应记录剖检的物品准备,尸体的外部检查状况,脏器采出与检查措施,病理材料的采集和送检措施以及尸体剖检记录。第六,對動物试验数据的处理和分析成果。第七,通過该试验,作者尚有什么需要值得改善,思索的地方都应阐明。附件:植入式心脏起搏器产品動物试验動物试验的基本规定:動物试验的设计应尽量靠近该器械在人体中的预期用途。壹般认為犬模型适于用来评价起搏器。提议植入足够数量的動物/起搏器,以便于得出有效的結论。提议与起搏器配合使用的電极需选用已通過注册同意的電极导线,如對新起搏器無法获得同意過的電极导线,则试验時应考虑未經同意的電极导线對试验成果的影响。二、動物试验的内容1.研究目的⑴感知评价起搏器對心脏信号(r、p、t波和遠場信号)及噪声的感知响应评价長期感知的稳定性對感知的p、r波与電生理分析仪的值進行比较验证在起搏、遥测過程中感知的精确性⑵對制造商標称的起搏器功能指標進行评估,并對各功能指標進行動物试验的必要性阐明。例如模式转换、频率适应房室期间(raav)、起搏、睡眠特性、非竞争性心房起搏、频率等⑶起搏功能動物试验結束後,對起搏器的输出与起搏阈值精确性進行检查假如制造商標称起搏器具有夺获管理功能,应通過诊断趋势评估夺获管理的运行,与手動测量比较和核查异常中断的原因⑷電极导线阻抗测量验证電极导线阻抗测量特性在活体环境中能按照设计运行(例如极性确认、极性配置等)⑸程控的可靠性验证起搏器与程控仪编程通讯的可靠性,模拟实际使用的多种参数组合、参数调整⑹抗干扰试验验证通讯工具、家用電气、安检系统的干扰⑺植入物检测在活体环境下手動验证植入物性能特性⑻感染控制植入過程应按照临床使用规定在無菌环境下实行。對可疑的植入部位的感染应通過對潜在病原体的培养和鉴定以進行评价⑼植入位置验证對植入起搏器的位置确实承认采用x射线成像术证明2.動物选择及试验過程⑴试验基本条件:具有外科無菌手术条件,提议采用试验用犬。⑵模型制备:提议采用射频消融术、化學消融或外科手术等技术建立犬ⅲ°房室传导阻滞(ⅲ°avb)動物模型,提议每個型号的植入性起搏器试验動物应在9只或以上。以体表心電图和腔内心電图显示房室分离即视作到达手术终點。两组動物在手术後应用体表心電图和/或holter随访观测4周。模型稳定性的评价:在手术4周後随访体表心電图仍稳定地体現為ⅲ°房室传导阻滞(ⅲ°avb),显示p、ors波分离。⑶起搏器植入措施及時间:按照人体临床使用的永久性起搏器植入措施進行植入,至少植入8周。⑷當對已上市的设备增長的新功能進行動物试验時,制造商可根据新增产品功能的详细实际状况酌情选择试验動物数量,不過其得到的试验成果应能支持其设备新功能的临床安全有效性。3.试验需纪录的電生理指標:检测起搏器植入即刻及随访1、2、3、4周時以0.5脉宽刺激時的阈值。起搏参数及监护参数:包括起搏器的電性能指標和起搏模式。動物的生理指標监测及试验後起搏器外观和植入部位的状况分析。三、動物试验分析评价及結论制造商需對获得的動物试验数据進行最终的風险分析及评价,并得出研究結论。在试验時应對试验動物使用生理参数监护仪,监测動物的生理指標。试验結束後,取出起搏器并對起搏器外观和植入部位進行分析。動物心脏应被完整切离并检查与否存在任何病变和/或损伤。提供描述手术前後動物活動状况的摘要。提议進行如下方面评价,记录、分析检测数据以验证设备的功能、特性、安全性:感知评价長期(1個月)感知的稳定性;對感知的p、r波与電生理分析仪的值進行比较;验证在起搏器起搏、遥测過程中的精确性;對起搏器具有的特殊功能進行评价。夺获管理通過诊断趋势评估心房夺获管理、左右心室夺获管理的运行状况,与手動测量比较、检查异常的原因。電极导线阻抗测量验证長期(1個月)電极导线阻抗趋势的稳定性验证電极导线测量特性在活体环境中能否按照设计运行。4.程控的可靠性验证起搏器与程控仪编程通讯的可靠性,模拟实际使用的多种参数组合参数调整5.抗干扰试验验证通讯工具、家用電器、安检系统等外界干扰的影响程度6.植入性检测:在活体环境下用程控仪验证植入物性能特性。7.感染控制植入過程中应按照临床使用规定在無菌环境下实行.對可疑植入部位的感染通過對潜在病原体的培养和鉴定加以评价.8.植入部位验证對起搏器植入部位采用x射线成像术证明确认.篇四:小學三年级科學上動物试验汇报试验汇报單试验汇报單试验汇报單试验汇报單篇五:動物试验汇报動物试验(小鼠)的壹般操作技术壹目的和规定:通過实际操作,使學生掌握试验的壹般操作措施,包括動物的抓去和固定、编号被毛的清除給药途径麻醉采血和处死等措施。二试验内容:1试验動物的抓取2试验動物性别、发情和配种的鉴定3试验動物编号的標识措施4试验動物被毛的清除术5试验動物的給药途径和措施6试验動物的麻醉7试验動物的采血8试验動物的处死措施9雄性不育小鼠的制备三试验的措施1小鼠的抓取:抓取時先用手将鼠尾提起,放在试验台上,轻轻拉尾,用左手拇指和食指抓住小鼠两耳和頭颈部皮肤,将鼠置于左手中心,用左手無名指和小指按住尾巴和後肢,即可做其他试验操作作用。2试验動物性别、发情和配种的鉴定:1抓取小鼠後,观测動物肛门与生殖器之间的距离。距离遠的為雄性,距离性别鉴定:○近的為雌性。成熟的雄性小鼠可看到小鼠睾丸的轮廓,雌性肛门与生殖器之间有壹無毛2動物仰卧保定,观测乳頭。雄性乳頭不能明显,雌性乳頭明显。小沟。○发情鉴定(阴道分泌物检查)材料:生理盐水,蒸馏水,显微镜,载玻片,细棉签,性成熟小鼠原理:哺乳类雌性動物性成熟後出現情動周期,啮齿类動物在動情周期不壹样阶段,阴道膜发生經典的变化。操作:.用左手拇指和食指固定小鼠的颈部,将小鼠倒放在手掌上,用左手小指固定小鼠尾巴,然後用合适大小的移液器吸取20至30ul生理盐水于小鼠阴道内反复抽吸5次。2.将抽吸得到的液体滴在用多聚赖氨酸预先处理過(防止脱片)的载玻片上,用移液器吸頭将其均匀涂抹開。3.涂片自然干燥後,用甲醇固定3分钟。4.待其干燥後,先用瑞氏染液染色5至8分钟,冲洗後立即吉姆萨染液染色5至8分钟,用水漂洗後自然干燥,待检。5.显微镜下观测阴道涂片的变化,見下图。附:小鼠发情周期阴道细胞的变化小白鼠性周期4~5天,发情持续時间大概9~12小時或20小時,排卵是在发情開始後2~3小時。配种鉴定:○1阴道栓法
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