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T/CSBMI 2 3 3 5 6本文件按照GB/T1.1—2020《标准化工作导则第1部分:标准化文件的结构和起草规则》的规定量监督检验中心、四川拜阿蒙生物活性材料有限责任公司、上海贝奥路生物材料有限公酸钙生物陶瓷体内骨诱导性研究,将可以对相关产品的研发与临床应用提供有力的支1磷酸钙生物陶瓷的体内骨诱导性评价方法GB/T16886.2医疗器械生物学评价第GB/T16886.6医疗器械生物学评价第6部分:植入后局部反应3.13.2磷酸钙生物陶瓷calciumphosphatebioce3.33.43.54动物模型24.2.1当采用肌间隙植入时,应选择肌肉丰富处的肌肉之间植入,避免植入材料与骨接触,如脊柱旁4.2.2当采用皮下植入时,应根据实验动物的种属和植入材料的尺寸选择合适的植入部位,可选择背4.3植入数量与植入时间4.3.1应在同样条件下将试验和对照材料样品植入相同年龄、性别和品系的同一种属动物的对应相同解剖部位,根据动物种属大小和解剖位置情况确定植入物的数量和尺寸。在可能的情况下,参照/对照4.3.2宜在植入3个月后进行取材。若选择其注:对于粒径小于1mm颗粒样品,若颗粒由块状破碎制成,可采用破碎之前的块状样品进行试验。5.4术后管理5.4.1术后每天观察一次动物的健康状况并记录,可通过直接接触动物或笼外观察的方式判定动物健康状况。若观察到有异常的临床症状或炎症及感染5.4.2若实验动物在试验过程中发生死亡,应记录动物的最终体重,并对动物进行尸检,将植入部位5.5.1在设计的时间点进行取材,取材前记录每只动物的最终体重、健康状况,以及是否存在异常等5.6组织学评价5.6.1取材后,采用经确认的方法进行固定,将固定好的样本进行硬组织切片;或通过常规组织学处建议的染色方法有:苏木素-伊红染色(H&E甲苯胺蓝染色、阿辛蓝染色、Masson三色染色、亚甲35.6.3使用显微镜观察或切片扫描系统确定样品内部是否存在新骨形成物及其量。组织学切片中新骨的面积(B按照式(1)计算新骨形成量(P)。P=×100%····························································5.6.5感染或异物反应会影响材料的成骨诱导能力判断。若观察到感染或异物反应中任一现象,应重%0差1差236.3报告数据来源于应不少于三个研究人员的独立统计和评估结果。a)检测体系的描述:47,4所有方法的偏差。5图A给出了磷酸钙陶瓷植入比格犬背部肌内3个月的硬组6408-15.ofcalciumphosphatenanoceramics.MaterialsScienceanalternativetoautologousbonegrafting.Prosteoinductivecalciumphosphateceramics.Regenerativebiomaterials,2018,5(1Engineering.RegenerativeEngineering;CRCPress:BocaRaton,FL,USA,20regeneration[J].MaterialsScience&EngineeringC,2016,61(Apr.):92[13]BarradasAM,YuanH,vanBlittesystematicreviewoninvestigation[J].JournalofBiomedicalMateriaPhos

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