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文档简介

LPS注射对家蚕幼虫MyD88基因的影响获奖科研报告摘

要:为探究LPS(脂多糖)等外源物质对家蚕MyD88基因表达的影响,本实验将无菌水、LPS和大肠杆菌注射到5龄家蚕幼虫体腔内,在0、3、6和24h进行解剖取样,通过凝胶电冰分析不同时间MyD88基因在各组织中的表达水平。电泳条带显示,在脂肪体组织中,注射LPS和大肠杆菌均可引起MyD88基因上调表达,6h效果最佳;在中肠组织中,注射LPS3h时MyD88基因表达量最高,注射大肠杆菌在6h时条带亮度最亮。结果表明MyD88基因可能响应LPS和大肠杆菌引起的家蚕免疫表达反应。

关键词:家蚕;MyD88;注射;LPS;大肠杆菌

MyD88是机体内重要的转导蛋白,在信号转导途径中起到关键作用[1]。Lord等发现髓样分化基因家族的新成员MyD88,认为MyD88能够调节髓样细胞分化[2]。在哺乳类动物中,MyD88基因主要表达于T细胞、B细胞中[3]。

在家蚕中,MyD88基因在中肠(midgut,MG)、脂肪体(fatbody,FB)、表皮(epidermis,EP)等主要免疫器官中的表达量相对其他较高[4]。MyD88是家蚕先天免疫通路Toll通路上重要的接头分子,研究表明,MyD88与活化的Toll受体的TLR结构域连接,再与Tube、Pelle蛋白结合成三聚体形式,从而实现信号细胞内传导[5]。

革兰氏阴性杆菌细胞壁的主要成分为LPS(lipopolysaccharide),机体感染后会出现毒性反应,LPS作为大肠杆菌(Escherichiacoli)细胞壁的主要成分,参与大肠杆菌引起的免疫反应[6]。Liu等研究发现LPS能够激起昆虫先天免疫反应,同时BmToll9-2基因在家蚕幼虫的不同组织参与LPS等外源病原体的识别过程[7]。然而,作为Toll通路的下游因子MyD88能否对LPS做出免疫反应,目前在家蚕中还未明确。

本文利用注射法,对家蚕5龄幼虫进行不同处理,通过凝胶电泳条带,分析MyD88基因在不同处理下的表达水平。本研究进一步揭示家蚕Toll通路中MyD88基因层面上免疫系统对特定外源物质的响应。

1材料与方法

1.1供试昆虫

本研究使用广东省农科院蚕业与农产品加工研究所提供的P50品系家蚕。孵化后的幼虫在25℃、60%的相对湿度、光周期12L:12D条件下,以新鲜桑叶饲养。

1.2家蚕幼虫的注射实验及解剖取样

对家蚕幼虫分别注射10μLLPS溶液(2.5mg/μL)和10μL大肠杆菌稀释液(2.5×106cells/μL),同时以注射等量无菌水作为阴性对照。在注射后的0、3、6和24h进行解剖取样,平行取样3组,所有样品迅速置于无RNA酶的离心管中,保存于-80℃冰箱备用。

1.3RNA的提取和cDNA的合成

采用RNAisoPlus(TaKaRa)试剂盒,按其说明书提取总RNA,并用NanoDrop2000检测,置于-80℃保存。参照PrimeScriptⅡ1stStrandcDNASynthesisKit(TaKaRa)说明书,采用10μL的反應体系;25℃10min,42℃60min的反应条件进行反转录。

1.4PCR扩增和凝胶电泳

使用PrimerPremier6.0软件进行设计PCR引物(表1),由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。内参基因选择BmActin基因,检测基因为MyD88基因。采用2×TaqPCRMasterMix(艾德莱)试剂盒和20μL的反应体系进行PCR扩增。扩增条件:94℃2min;94℃30s,52℃30s,72℃30s,共33次循环;72℃延伸10min。PCR产物进行1.5%琼脂糖凝胶电泳,在凝胶成像仪下观察实验结果。

2结果与分析

2.1不同处理后脂肪体组织中BmMyD88基因表达水平分析

通过凝胶电泳图分析,注射无菌水时,MyD88基因在0、3h条带较暗,6、24h的条带亮度相近(图1:A);注射LPS时,MyD88基因在3h的条带亮度明显增强,6h达到最亮,24h减弱到最暗(图1:B);注射大肠杆菌,MyD88基因在3h的条带亮度略微增强,6h条带最亮(图1:C)。

2.2不同处理后中肠组织中BmMyD88基因表达水平分析

通过凝胶电泳图分析,注射无菌水时,MyD88基因在0、3、6和24h的条带亮度相对一致(图2:A);注射LPS时,MyD88基因在3h的条带亮度明显增强,6、24h逐渐变暗(图2:B);注射大肠杆菌,MyD88基因在6h的条带最亮,24h的条带亮度减弱到与3h相近(图2:C)。

3讨论

本实验对家蚕5龄幼虫进行LPS注射,结果显示,注射LPS后MyD88基因均能在脂肪体和中肠中于不同时间段被诱导表达,中肠中效果更加明显。中肠作为细菌经口侵入家蚕体内的第一道防线,感染后能抗菌基因的表达,引起肠道免疫反应[8],同时家蚕幼虫在5龄阶段接近变态发育,此时中肠的蛋白种类与数量提高,中肠活动十分旺盛[9]。

同时本实验进一步用大肠杆菌注射检验,对比发现,分析发现大肠杆菌较LPS诱导效果更佳、时长更久。推测由于大肠杆菌含有更多的LPS,另一方面同时大肠杆菌中含有与家蚕Toll通路中相互作用的活性物质,从而促进对家蚕MyD88基因的诱导表达[10]。

哺乳动物中TLR4被LPS激活后会引起早期的MyD88依赖型信号通路[11],昆虫的Toll9具有和哺乳动物TLR4在进化上相对保守,结构相似[12-13]。张若男等研究发现,BmToll9蛋白在家蚕响应LPS的免疫途径与哺乳动物中响应LPS的蛋白受体TLR4极其类似[14],推测家蚕Toll通路中MyD88基因也能被LPS激活,参与LPS和大肠杆菌引起的免疫应答反应。

综上所述,注射LPS和

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