鱼类生理学实验指导

鱼类生理学实验指导实验一、坐骨神经-腓肠肌标本制备目的学习生理学实验基本的组织分离技术；学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法；了解刺激的种类。原理蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。在生理学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性；刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标本是生理学实验的一项基本操作技术。实验动物与用品蟾蜍或蛙、任氏液、食盐、1%H2SO4滤纸、普通剪刀、手术剪、眼科镊（或尖头无齿镊）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、锌铜弓（或电子刺激器）、酒精灯。实验步骤与项目破坏脑、脊髓取蟾蜍一只，用自来水冲洗干净（勿用手搓）。左手握住蟾蜍，使其背部向上，用大拇指或食指使头前俯（以头颅后缘稍稍拱起为宜）。右手持探针由头颅后缘的枕骨大孔处垂直刺入椎管（图）。然后将探针改向前刺入颅腔内，左右搅动探针2〜3次，捣毁脑组织。如果探针在颅腔内，应有碰及颅底骨的感觉。再将探针退回至枕骨大孔，使针尖转向尾端，捻动探针使其刺入椎管，捣毁脊髓。此时应注意将脊柱保持平直。针进入椎管的感觉是，进针时有一定的阻力，而且随着进针蟾蜍出现下肢僵直或尿失禁现象。若脑和脊髓破坏完全，蟾蜍下颌呼吸运动消失，四肢完全松软，失去一切反射活动。此时可将探针反向捻动，退出椎管。如蟾蜍仍有反射活动，表示脑和脊髓破坏不彻底，应重新破坏。®5.1-1破坏蟾掠脑脊髓剪除躯干上部、皮肤及内脏用左手捏住蟾蜍的脊柱，右手持粗剪刀在前肢腋窝处连同皮肤、腹肌、脊柱一并剪断，然后左手握住蟾蜍的后肢，紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去（注意避开坐骨神经），并剪去肛门周围的皮肤，留下脊柱和后肢。剥皮一只手捏住脊柱的断端（注意不要捏住脊柱两侧的神经），另一只手捏住其皮肤的边缘，向下剥去全部后肢的皮肤（图5.1-2）。将标本放在干净的任氏液中。将手及使用过的探针、剪刀全部冲洗干净。5.1-2成除雁干成内般分离两腿用^子取出标本，左手捏住脊柱断端，使标本背面朝上，右手用粗剪刀剪去突出的骶骨（也可不进行此步）。然后将脊柱腹侧向上，左手的两个手指捏住脊柱断端的横突，另一手指将两后肢担起，形成一个平面。此时用粗剪刀沿正中线将脊柱盆骨分为两半（注意，勿伤坐骨神经）。将一半后肢标本置于盛有任氏液中备用，另一半放在蛙板上进行下列操作。辩认蛙后肢的主要肌肉，蛙类的坐骨神经是由第7、8、9对脊神经从相对应的椎间孔穿出汇合而成，行走于脊柱的两侧，到尾端（肛门处）绕过坐骨联合，到达后肢背侧，行走于梨状肌下的股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟内，到达膝关节胭窝处有分支进入腓肠肌（图5.1-3）。

蛙府肢背而规6.游离坐骨神经和腓肠肌用蛙钉或左手的两个手指将标本绷直、固定。蛙府肢背而规6.游离坐骨神经和腓肠肌用蛙钉或左手的两个手指将标本绷直、固定。先在腹腔面用玻璃分针沿脊柱游离坐骨神经，然后在标本的背侧于股二头肌与半膜肌的肌肉缝内将坐骨神经与周边的结缔组织分离直到胭窝，但不要伤及神经，其分支待以后用手术剪剪断。同样用玻璃分针将腓肠肌与其下的结缔组织分离并在其跟腱处穿线、结扎。剪去其它不用的组织 操作从脊柱向小腿方向进行。（1） 剪去多余的脊柱和肌肉 将后肢标本腹面向上，将坐骨神经连同2〜3节脊椎用粗剪刀从脊柱上剪下来。再将标本背面向上，用镊子轻轻提起脊椎，自上而下剪去支配腓肠肌以外的神经分支，直至胭窝（图5.1-4（A）），并搭放在腓肠肌上。沿膝关节剪去股骨周围的肌肉，并将股骨刮净，用粗剪刀剪去股骨上端的1/3（保留2/3），制成坐骨神经-小腿的标本。（2） 完成坐骨神经腓肠肌标本将脊椎和坐骨神经从腓肠肌上取下，提起腓肠肌的结扎线剪断跟腱。用粗剪剪去膝关节以下部位，便制成了坐骨神经-腓肠肌标本（图5.1-4（B））。检验标本用^子夹持坐骨神经中枢端，如腓肠肌发生迅速而明显的收缩，说明标本的兴奋性良好。标本浸入盛有任氏液的培养皿中备用。然后再依次用热玻棒、食盐（或1%h2so4滤纸）刺激坐骨神经中枢端（或肌肉），观察肌肉收缩有何变化？如果放上食盐肌肉无动静,用任氏液将盐冲洗掉，再观察冲洗过程中肌肉收缩有何变化？图5.1-4分离坐骨神经(A)和坐骨神轻腓肠朋标本田)注意事项避免蟾蜍体表毒液和血液污染标本，压挤、损伤和用力牵拉标本，不可用金属器械触碰神经干。在操作过程中，应给神经和肌肉滴加任氏液，防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟，使标本兴奋性稳定，再开始实验效果会较好。热玻棒的温度防止过高，以免烫伤标本。思考题用各种刺激检验标本兴奋性时，为什么要从中枢端开始？刺激有几种形式?如何解释对食盐的不同处理对肌肉收缩的影响？实验二、反射弧的分析目的分析反射孤的组成并证明反射活动的完成有赖于反射孤的完整存在。原理反射活动是依靠反射孤实现的。反射孤包括感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器五部分。反射孤的结构和功能的完整是实现反射活动的必要条件。反射孤的任何一部分受到破坏，反射活动将不能实现。

神经中枢中间神经无戏应器 ~传出碣神经中枢中间神经无戏应器 ~传出碣住人神经良射强模式固反射弓瓜示意图实验动物与用品蛙（或蟾蜍），蛙类手术器械，支架，玻棒，烧杯，玻璃皿,纱布，线，滤纸，棉花，0.5%、1%硫酸，1%可卡因。实验步骤与项目取一只蛙，破坏大脑，但保留脊髓，即做成脊蛙标本。然后用肌夹夹住蛙的下颌（或用大头针钩住下颌），并将脊蛙悬挂在支架上。待其安静后进行下列实验项目。1、用烧杯盛0.5%硫酸，分别刺激蛙两后肢趾端，观察有无反应？为什么？待出现反应后，立即用清水洗净脚趾，并用纱布擦干。2、在蛙左后肢踝关节上方，将皮肤作一环形切口，剥取切口以下皮肤（注意除净趾尖皮肤），再用0.5%硫酸刺激该肢趾端，有无反应？为什么？3、 剪开右侧大腿背侧的皮肤，再股二头肌和半膜肌之间分离出坐骨神经干，在坐骨神经干放一浸过1%可卡因的小棉球，然后每隔数秒钟用0.5%的硫酸刺激该后肢脚趾，直到不引起反应为止，为什么？4、 当右后肢不再出现收缩反应时，立即将浸过1%硫酸的滤纸片贴在该后肢躯干部皮肤上，该后肢是否仍然出现反应？为什么？每隔数秒同样刺激一次，直到不能引起右后肢反应为止。为什么？5、用蛙针破坏脊髓，再刺激蛙身体的任何部位，有无反应？为什么？汪意事项•毁脑时不可伤及脊髓，以免破坏脊髓反射中枢。•分离坐骨神经应尽量向上，并尽量剪断与其相连的分支。•每次酸刺激后应立即用清水洗净脚趾，并用纱布揩干。•剥脱脚趾皮肤要完全，若剩留少量皮肤会影响实验结果。注坐骨神经干中包括传入神经纤维和传出神经纤维。由于传出神经纤维较粗，故其麻醉所需时间较传出神经纤维为长。实验三、凝血时间的测定目的学习凝血时间的测定方法。原理血液流出血管后，受到刺激的血小板就会释放出一系列凝血因子，使血中的纤维蛋白原转化成网状的纤维蛋白，血液发生凝固。测定凝血时间可反映血液本身出凝血因子是否缺乏或减少。本实验用鱼作为实验材料比常规的家兔和鼠所用仪器要少，费用低，实验控制更易。实验动物与用品150g重的鲤鱼，注射器，玻片，尖针，秒表。实验步骤与项目1、 取血方法：将鱼用湿布包住，侧卧于木板上，在鱼尾部（腹鳍和尾鳍之间）侧线下方用手去除少许鳞片，将注射器在侧线下方1〜2mm处垂直插入肌肉，碰到脊椎骨后，稍往下方移动，插入尾静脉内，轻轻抽取注射器，让血在负压作用自然流入注射器内。2、 凝血时间观察：将注射器内的血小心注在事先准血好的玻片上，记下时间，每隔30s用针尖挑血一次，直至挑起细纤维血丝为止。从开始出血到挑出细纤维血丝的时间即为凝血时间。注意事项湿布包鱼时仅将身体部位包住，不要包到鳃，以免影响鱼呼吸；如一时抽不出血可轻轻转动注射器，直至血被抽出为止；针尖挑血应向一个方向直挑，不可多个方向挑动或挑动次数过多，以免造成破坏纤维蛋白网状结构，造成不凝血的假象。实验结果报告该实验动物的凝血时间。并对全班的结果加以统计，用平均值土标准差表示。讨论血液凝固对机体的生理意义。实验四、影响血液凝固的因素目的以血液凝固时间作为指标，了解对血液凝固影响的因素，加深对生理止血过程的理解。原理血液凝固是一个酶的有限水解激活过程，在此过程中有多种凝血因子参与。根据凝血过程起动时激活因子来源不同，可将血液凝固分为内源性激活途径和外源性激活途径。内源性激活途径是指参与血液凝固的所有凝血因子在血浆中，外源性激活途径是指受损的组织中的组织因子进入血管后，与血管内的凝血因子共同作用而启动的激活过程。实验动物与用品鸡、2%草酸钾溶液、EDTA-Na，生理盐水，液状石蜡、注射器，试管6支、小烧杯2个、试管架，竹签1束（或细试管刷）实验步骤与项目1、 取血方法：将鸡保定，侧卧于木板上，打开翅膀，找到翼静脉，酒精棉球消毒，从静脉的下部倾斜进针，插入静脉内，回血后，轻轻抽取注射器，让血在负压作用自然流入注射器内。2、 试管准备好试管1 不加任何处理（对照管）试管2 用液状石蜡润滑整个试管内表面试管3 放少许棉花试管4 置于有冰块的小烧杯中试管5 EDTA1滴试管6 加草酸钾1〜2 ml每管加入血液2ml。将多余的血盛于小烧杯中，并不断用竹签搅动直至纤维蛋白形成。记录凝血时间 每个试管加血2ml后，即刻开始计时，每隔壁15s倾斜一次，观察血液是否凝固，至血液成为凝胶状不再流动为止，记录所经历的时间。5、6、7号试管加入血液后，用拇指盖住试管口将试管颠倒两次，使血液与药物混合。5.如果加EDTA和草酸钾的试管不出现血凝，可再向两管内分别加入0.025mol・L-1的CaCl2溶容液2〜3滴，观察血液是否发生凝固？注意事项采血的过程尽量要快，以减少计时的误差。对比实验的采血时间要紧接着进行。判断凝血的标准要力求一致。一般以倾斜试管达45。时，试管内血液不见流动为准。每支试管口径大小及采血量要相对一致，不可相差太大。实验结果 将实验结果及各种条件下的凝血时间按表填写，并进行比较、分析解释产生差异的原因。实验管号实验处理凝血时间1不加任何处理2用液体石蜡润滑试管内表面3放少许棉花4置于有冰块的烧杯中5加草酸钾1ml〜2mL6EDTA1滴实验五、胃肠运动的直接观察目的观察动物在麻醉情况下的胃肠活动及其影响因素，原理胃肠平滑肌具有自动节律性活动。胃的运动有蠕动和紧张性收缩；肠的运动有蠕动、分节运动和摆动等。在正常机体内，胃肠运动受神经的体液因素的调节。实验动物与用品喂饱的兔，手术台，麻醉药，常用手术器械，电刺激器，台氏液，脸盆。0.01%乙酰胆碱，0.1%肾上腺素，0.1%阿托品。实验步骤与项目1、 将兔麻醉仰卧固定于手术台上，剪去颈部及腹部背毛。切开颈部皮肤，分离一侧迷走神经，于其下穿一线备用。剖开腹腔，在肾上腺附近找出左侧内脏大神经，亦于其下穿一线备用。将兔体浸入盛有37°C台氏液的脸盆内，用止血钳扯开腹腔，以便观察。2、 观察正常胃肠运动的形式和频率。3、 以中等强度的感应电流刺激一侧迷走神经离中端，胃肠运动有何变化？为什么？4、 刺激内脏大神经，胃肠运动有何变化？切断内脏大神经，胃肠运动又有何变化？为什么？5、 用镊子夹小肠任何一处，观察有何现象发生？为什么？6、 在小肠上直接滴加0.01%乙酰胆碱数滴，胃肠运动有何变化？冲去药物作用后，再滴加0.1%肾上腺素数滴，胃肠运动又有何变化？为什么？思考题 胃肠运动有哪些形式？并说明其生理作用。实验六、渗透压对小肠吸收的影响目的了解小肠吸收与肠内容物渗透压之间的关系。原理小肠是消化产物吸收的主要部位。肠内容物渗透压的大小是制约小肠吸收的因素，在一定范围内，肠内容物浓度愈大，吸收愈慢；浓度过高时，则出现反渗透现象。实验动物与用品 兔，手术台，麻醉药，常用手术器械，丝线，10mL注射器，3%、0.9%和0.3%NaCL溶液。实验步骤与方法将兔麻醉仰卧固定，剖开腹腔，拉出空肠约18cm，轻轻地移去其中的内容物，再用丝线结扎为等长的A、B、C三段。在A肠段中注入3%NaCL溶液5mL；在B肠段中注入0.9%NaCL溶液5mL；在C肠段中注入0.3%NaCL溶液5mL。然后将各肠段全部放回腹腔中，经30分钟以上，观察A、B、C三段肠段内溶液被吸收的程度有何不同，为什么？实验七、影响尿生成的若干因素目的了解对尿生成的若干影响因素。原理尿的生成过程包括肾小球的滤过，肾小管与集合管的重吸收和分泌。凡对这些过程有影响的因素都可影响尿的生成。实验动物与用品兔，手术台，常用手术器械，电刺激器，塑料管，膀胱套管，20%葡萄糖，10%Na2SO4或12%尿素，生理盐水，0.1%肾上腺素，垂体后叶素，5%阿拉伯胶。实验步骤与项目 实验前给兔足够饮水或喂以多汁饲料。实验时，将兔麻醉仰卧保定在手术台上。在下腹部靠近耻骨联合前缘，沿腹部正中线切开腹壁，暴露膀胱，轻轻将拉出腹腔。在膀胱底部找出一侧输尿管，在输尿管的下面穿一细线备用。在输尿管上剪一小口，由小口朝肾脏方向插入一根充满生理盐水的塑料管，一备用线结扎固定。塑料管的另一端对准记滴器的受滴器，以便记滴。或者在膀胱腹面正中先作荷包缝合，在缝合圈的中心剪一小口，插入膀胱套管，然后收紧缝线，固定膀胱套管，在套管的另一端连接塑料管，另外，由颈部找出右侧迷走神经，并穿线备用，进行下列实验项目。1、 计数5-10分钟内尿的正常分泌滴数。2、 静注20%葡萄糖5mL，尿量有何变化？为什么？待尿分泌恢复正常后，再进行下项实验（以下同）。3、 剪断右侧迷走神经，以中等强度的电流刺激其离中端，使血压显著下降后，尿量