2022家用和类似用途电器的抗菌、除菌、净化功能空气净化器的特殊要求

家用和类似用途电器的抗菌、除菌、净化功能空气净化器的特殊要求II目次范围 1规性用1术和1技要求 1试方法 2标识 3附录A（范）菌能试方法 5附录B规性）除原功试方法 9附录C规性）除功能验11附录D（范）异功能验14附录E资性）净块表附菌数验16参考献 18PAGEPAGE1家用和类似用途电器的抗菌、除菌、净化功能空气净化器的特殊要求范围注：具有上述功能且不为产品主要功能的，如除湿机、风扇、加湿器等产品，其符合上述功能部分的评价可参考本文件相关内容。下列产品可参考本文件执行：——小型、便携式净化器，乘用车净化器。本文件不适用于：——专为工业用途而设计的净化器；——在腐蚀性和爆炸性气体（如粉尘、蒸气和瓦斯气体）特殊环境场所使用的净化器；——专为医疗用途设计的净化器。（）GB4789.2GB4789.15-2016GB/T6682GB/T8170GB/T18204.2公共场所卫生检验方法第GB/T18801-2022GB19489GB/T21551.1GB/T21551.2家用和类似用途电器的抗菌、除菌、净化功能抗菌材料的特殊要求QB/T5364HJ865恶臭嗅觉实验室建设技术规范HJ1262GB/T21551.1及GB/T18801界定的术语和定义适用于本文件。净化器本身所产生的有害物质应符合表1要求。表1净化器产生有害物质限值要求有害物质种类技术要求臭氧泄漏量（出风口5cm处）≤0.10mg/m3紫外线（UVC）泄漏量（器具周边30c处）≤5W/cm2TVOC浓度（出风口20cm处）≤0.15mg/m3PM10浓度（出风口20cm处）≤0.07mg/m3注1：臭氧泄漏量测试适用于具有产生臭氧的装置的净化器注2：紫外线（UVC）泄漏量测试适用于具有紫外线装置的净化器。明示具有抗菌功能且与食品接触或使用中与人体密切接触的材料或其制成的部件，应符合GB/T21551.1中相关卫生安全性要求。明示具有抗菌、防霉、抗过敏原、抗病毒功能的材料或含有上述功能材料的部件，其抗菌率、防霉等级、抗过敏原率、抗病毒率应满足GB/T21551.2的要求。明示具有除菌功能的净化器，除菌率不应低于90%。明示具有除过敏原功能的净化器，过敏原去除率不应低于80%。明示具有除病毒功能的净化器，病毒去除率不应低于99.9%。明示具有除异味功能的净化器，气味强度差应大于1。除附录规定的特殊要求之外，按GB/T18801-2022中6.1的条件进行试验。符合GB/T21551.要求。针对不同的试验内容，专用测量仪器应符合相应附录的要求。TVOCGB/T188830.01mg/m3PM1010%。净化器进行有害物质释放、除菌、净化等测试时，应在制造商明示的正常工作状态下（最佳功能模式）运行，如制造商未明示，应运行最大风速挡位，开启所有相关功能。按GB/T18801-2022中6.4.2方法进行试验。（TVOC）浓度和PM10浓度的采样点，在距离20cm1则每个出风口均布置一个采样点，同时测试各出风口浓度，取各出风口最大值为最终结果。GB/T21551.1量臭氧泄漏量的测试，应按照GB/T21551.1中规定的方法进行。紫外线（UVC）泄漏量的测试，应按照GB/T21551.1中规定的方法进行。TVOCTVOC浓度按照下述步骤进行：TVOCGB/T18883--4~5TVOC，记为C0，单位为mg/m³，本底浓度测试时待测净化器要处于不通电的状态；取TVOCC1mg/m³；TVOCC1TVOCC0（PM10）PM10浓度按照下述步骤进行：PM10GB/T18204.2PM101次/min20min取PM10C1mg/m³；PM10C1PM10C0净化器明示具有抗菌功能的材料或含有抗菌材料的部件，应按照GB/T21551.1中的方法进行试验。GB/T21551.2净化器除菌功能应按附录A规定的方法进行试验。净化器除过敏原功能应按附录B规定的方法进行试验。净化器除病毒功能应按附录C规定的方法进行试验。净化器除异味功能应按附录D规定的方法进行试验。净化模块表面附着菌落数参见附录E规定的方法进行试验。标识GB/T21551.1求4.14.2具有抗菌、防霉、抗过敏原、抗病毒、除菌、除病毒、除过敏原、除异味功能净化器的标识或使用说明中应包括以下内容：——）]；——应标明参数所对应的污染物名称；——所使用的相关抗菌、防霉、抗过敏原、抗病毒、除菌、除过敏原、除病毒、除异味材料或部件的更换周期或清洁方法；——净化器应列出具有抗菌、防霉、抗过敏原、抗病毒功能的具体部位、零部件名称；——净化器应标明采用的主要抗菌、防霉、抗过敏原、抗病毒、除菌、除过敏原、除病毒、除异味技术或原理（如高效过滤、紫外线杀菌、臭氧杀菌等）。附录A（）本试验采用“去除率”试验法评价净化器的除菌能力。在规定时间及规定试验舱体积条件下，分别测定对照组和试验组试验舱中菌落数的初始浓度和结束浓度，计算出净化器的除菌率。试验采取无菌操作技术，实验室环境、试验操作及其他涉及生物安全的部分应符合GB19489中相关要求及GB/T21551.1中相关要求。20℃~25℃50%RH～70%RH。QB/T536430m³（30m³/h10m³/h）本附录试验专用测量仪器应满足下述要求：——六级筛孔撞击式空气微生物采样器；——喷雾染菌装置（气溶胶喷雾器）；——生化培养箱：温控精度±1℃；——恒温恒湿培养箱：温控精度±1℃；湿度≥90%；——冷藏箱：5℃~10℃；——二级生物安全柜；——压力蒸汽灭菌器：温控精度±1℃；——离心机；——生物光学显微镜；——血球计数板；——平皿、试管、移液枪、接种环、酒精灯等实验室常用仪器。细菌菌种——白色葡萄球菌（Staphylococcusalbus）CGMCC1.3374——缓慢葡萄球菌（Staphylococcuslentus）CGMCC1.9082霉菌菌种：（Aspergillusniger）CGMCC3.5487（ATCC16404）应至少选择一种菌进行测试，如需要，也可选用其他菌种作为试验菌种。所有菌种或菌株应由国家相应菌种保藏管理中心提供并在报告中标明试验用菌种名称及编号。实验室应根据国家相关规定安全使用试验用菌，如选用其他试验致病菌，实验室应具备与其危害性相适应的生物安全防护等级；不涉及《人间传染的病原微生物名录》中的高致病性微生物。培养菌种使用的各种培养基组分，应符合菌种保藏管理中心的要求。所有涉及微生物操作的器皿和材料都应提前进行相应灭菌处理。试验用培养基及试剂可按如下方法配置：养汤养蛋白胨 10.0g牛肉膏 3.0g氯化钠 5.0g制法：取上述成分加入1000mL蒸馏水中，加热溶解后，调pH至7.2~7.4分装，于121℃压力蒸汽灭菌20min备用。养脂养蛋白胨 10.0g牛肉膏 3.0g氯化钠 5.0g琼脂 15.0g1000mLpH至121℃20min-萄琼养基（PDA）马铃（皮块） 300g葡萄糖 20.0g琼脂 20.0g1000mL10min～20min为115℃30min。上述配方不加琼脂制备为马铃薯-葡萄糖液体培养基。含吐温-80为器内121℃灭菌20min。若使用商品化培养基，应按照培养基明示的配制方法和灭菌条件进行操作。细菌将标准试验菌株接种于营养琼脂培养基（NA）斜面上，在（36±1）℃条件下培养18h~24h后，在5℃~10℃下保藏（不应超过1个月），作为斜面保藏菌。将斜面保藏菌转接到营养琼脂培养基（NA）平板上，在（36±1）℃条件下培养18h~24h，每天转接1次，试验时应采用3代～5代、24h内转接的新鲜细菌培养物。1～2GB4789.2注：菌悬液也可通过比浊测定法粗测其含菌浓度，即在600nm波长下测菌悬液吸光度。霉菌将标准菌株分别接种在马铃薯-葡萄糖琼脂培养基（PDA）斜面上，在（28±1）℃培养7d～14d后，在5℃～10℃保藏（不得超过4个月），作为保藏菌。将保藏菌接种在PDA斜面培养基试管中，培养7d～14d，使生成大量孢子。未制备孢子悬液时，不应拔去棉塞。每打开1支只供制备1次悬液，每次制备孢子悬液应使用新培养的霉菌孢子。PDA250mL40mL的玻璃珠10～15粒与孢子混合，具塞后置水浴振荡器中不断振荡使成团的孢子散开，然后用单层-板预估孢子悬液浓度，制成符合浓度要求的霉菌孢子悬液。最终的孢子悬液浓度按照GB4789.15注：霉菌计数也可使用GB4789.15-2016中附录A中的孟加拉红琼脂。对照组需安装一台与被测样机相同型号、同批次的产品，放置于试验舱内，处于不通电状态。通过高效过滤器及紫外照射的方式对试验舱内空气进行净化除菌，使其洁净度不低于7级（万级）。调节试验舱内温度和相对湿度，维持稳定一段时间后（以保证整个实验过程中温度和相对湿度相对恒定）关闭试验舱，整个试验中不得再次打开。打开操作间的送风装置，送入经过高效过滤器的循环风进入试验舱，舱内气压相对于相邻区域应为负压，压差宜不低于10Pa，防止试验舱中的微生物气溶胶外泄，在试验过程中，试验组和对照组试验舱中的主要参数（A.3.1），应尽可能保持一致。按照以下步骤进行对照组试验：5min，然后静置5min。5.0×104CFU/m3～5.0×105CFU/m30.5m0.5~1.5m试验过程中，循环风扇一直保持开启状态。24h90%CFU/m3），换算公式如式（A.1）：空气含量（𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶⁄𝑚𝑚3）= 采样平上落数𝐶𝐶）𝐿𝐿𝑚𝑚𝑚𝑚𝑚×

×1000 （A.1）注：若采样平板总菌落数为0，即为＜1，空气含菌量可认为低于检出限，依据GB4789.2中规定的报告方法描述。按照以下步骤进行试验组试验：a）按A.5.2中a）的要求对试验舱进行喷雾染菌。b）按A.5.2中b）的要求对试验组采集初始菌浓度。1h）A.5.2d）和e）在完成试验组和对照组采样后，应将未用的同批培养基取1份～2份，放置于与试验样本相同环境中同时进行培养，作为阴性对照。若阴性对照有菌生长，说明所用培养基或试剂有污染，试验无效，应更换无菌器材重新进行试验。除菌率按照式（A.2）进行计算：…………（A.2）式中：Kt——净化器的除菌率，单位为%；V1、V2——分别为试验组在试验前、后的空气含菌量，单位为CFU/m3；Nt——对照组中空气中细菌的自然消亡率，按照式（A.3）计算：………………（A.3）式中：V0、Vt——分别为对照组在试验前、后的空气含菌量，单位为CFU/m3。1GB/T81701010附录B（规范性）除过敏原功能试验方法本试验采用“去除率”试验法评价净化器去除过敏原的能力。同A.3.1除A.2.2的仪器之外，本附录试验专用测量仪器应满足下述要求：——微孔板分光光度计（酶标仪）。试验用过敏原见表B.1。表B.1试验过敏原过敏原名称过敏原种类及英文简称尘螨过敏原Derf1、Derp1树花粉过敏原Cryj1、Betv1草花粉过敏原Amba1、Phlp5霉菌过敏原Alta1、AveX蟑螂过敏原Blag2猫皮屑过敏原Feld1狗皮屑过敏原Canf1应至少选择一种过敏原进行测试，如需要，也可选用其他过敏原作为试验过敏原。a）试剂纯度，除另有规定，所有试验均使用化学纯或化学纯级别以上的试剂；b）试验所用的水为符合GB/T6682规定的三级水；c）磷酸盐缓冲液PBS符合表B.2的要求：表B.2磷酸盐缓冲液PBS成分成分用量磷酸二氢钾KH2PO40.27g磷酸氢二钠Na2HPO41.42g氯化钠NaCl8.0g氯化钾KCl0.2g蒸馏水H2O1000mL800mL121℃20min，于4℃0.05%-20的PBS。同A.5.1按照以下步骤进行对照组试验：PBS-T，同时开启风扇搅拌，喷雾完毕后，继续搅拌5min，关闭风扇，静置5min。100ng/m3～500ng/m3。采样点应避开出风口，离墙壁距离应大于0.5m，相对地面高度为0.5~1.5m，每个采样点安置一个采样头，并与试验舱外采样器相连接。试验过程中，循环风扇一直保持开启状态。静置至规定时间后（1h）RR2≥0.98。按照以下步骤进行试验组试验：a）按B.3.2a）中要求，对试验舱喷入过敏原溶液。b）按B.3.2b）的要求，对试验舱采集初始过敏原浓度。（最长不超过1h）B.3.2d）B.4结果计算净化器过敏原去除率，按式（B.1）进行计算：K=𝐺1𝑔𝑔−𝐺20% B式中：

g 𝐺1−𝑔𝑔）Kg——过敏原去除率；G1——试验组试验前过敏原浓度，单位为纳克每立方米（ng/m3）；G2——试验组试验后过敏原浓度，单位为纳克每立方米（ng/m3）；Ng——对照组空气中过敏原浓度的自然消亡率，按式（B.2）计算：𝐺0式中：G0——对照组试验前过敏原浓度，单位为纳克每立方米（ng/m3）；Gt——对照组试验后过敏原浓度，单位为纳克每立方米（ng/m3）。1GB/T817011313附录C（规范性）除病毒功能试验方法本试验采用“去除率”试验法评价净化器去除病毒的能力。在密闭试验舱内发生病毒气溶胶，在空气净化器除病毒功能运行特定时间后，采集试验舱内和对照试验舱的空气，对病毒滴度进行计算，比较病毒的减少程度。实验室应满足GB19489要求，试验应在BSL-2或以上安全级别的生物安全实验室中操作，并确保实验室生物安全，试验过程中产生的废弃物，按生物危害废弃物处理，以保证操作人员的安全。试验人员应具有足够的微生物学知识和经验。此外，本文件并未指出所有可能的安全问题，使用者应有责任采取充分的安全和健康措施，严格遵守相关的生物安全标准和国内法规，身体状态欠佳，或有伤口时，应暂时停止工作。同A.3.1。试验专用测量仪器应满足下述要求：——液体撞击式采样器：采样流量应为7L/min～15L/min。——气溶胶发生器：喷出气溶胶微粒的直径90%以上应在0.1μm～10μm之间；——生化培养箱：温控精度±1℃；——冷藏箱：温度；——二级生物安全柜：A2型；——压力蒸汽灭菌器：121℃,20min或115℃,30min；——离心机：最高转速16000r/min；——移液管、水浴锅、涡旋混匀器等实验室常用疫情。试验用病毒及宿主菌：——噬菌体：Phi-X174（ATCC13706-B1，NBRC103405）；宿主菌：大肠埃希氏菌（Escherichiacoli）（ATCC13706，NBRC13898）。——噬菌体：MS2（ATCC15597-B1，NBRC102619）；宿主菌：大肠埃希氏菌（Escherichiacoli）（ATCC15597，NBRC3012）。应至少选择一种病毒进行测试，如需要，也可选用其他过病毒作为试验病毒。将扩增后的噬菌体液加入20%甘油作保护剂后，分装于冻存管中，-80℃保存。取保存后的冻存管，与大肠埃希氏菌和上层半固体琼脂混合后，倾注于下层琼脂，37℃过夜培养，收集上层半固体琼脂后离心、过膜可得试验用噬菌体液。按照以下步骤制备噬菌体悬液：(NA)(37±1)℃(35±1)℃，100r/min(5±1)h；将15mL～20mLc）5mL浓度为108CFU/mL~109CFU/mL的大肠埃希氏菌菌悬液与5mL浓度为（=1000∶1在(35±1)℃10min～20min；c）10mLb）(35±1)℃(18±2)h260r/min旋转2min(35±1)℃50mL3500r/min离心50mL次；0.22μm噬菌体，原液浓度应为109PFU/mL～1010PFU/mLMS2噬菌体，原液浓度应为1011PFU/mL～1012PFU/mL；将噬菌体原液用灭菌去离子水进行稀释，将噬菌液滴度调节至107PFU/mL～108PFU/mL注：噬菌体悬液的制备也可采用经实验室验证的方法进行扩增。Ph172为6试验中使用的噬菌体应采用上述方法制作培养液（1代）后，制成冻结标本，或干燥样本（012同A.5.1。按照以下步骤进行对照组试验：5min5min。PBS5.0×105PFU/m3～5.0×107PFU/m30.5m0.5~1.5m试验过程中，循环风扇一直保持开启状态。PBS100.5mL稀释后的噬菌体悬液与100μL的108～109CFU/mL的大肠杆菌液混合，在(35±1)℃条件下静置10min～20min。将静置后的菌悬液与半固体琼脂培养基混合，倾注于固体琼脂培养基表面，在(35±1)℃16h～24h按照以下步骤进行试验组试验：C.5.2中a）和b）1h）C.5.2中d）和e）C.6结果计算病毒去除率按照公式（C.1）计算：t=1−𝑡𝑡2×100% C.）1−𝑡𝑡）式中：Kt—病毒去除率；V1—试验组试验前病毒滴度，单位为噬斑形成单位每立方米（PFU/m3）；V2—试验组试验后病毒滴度，单位为噬斑形成单位每立方米（PFU/m3）；Nt—对照组中空气中病毒的自然消亡率，按式（C.2）计算；Nt=0−𝑡𝑡×100% C.）0式中：V0—对照组试验前病毒滴度，单位为噬斑形成单位每立方米（PFU/m3）；Vt—对照组试验后病毒滴度，单位为噬斑形成单位每立方米（PFU/m3）。1GB/T81701515附录D（规范性）除异味功能试验方法针对明示除异味功能的净化器采用专业嗅辨员嗅辨法进行评价。符合HJ865的要求。气袋聚酯无臭袋：3L。符合HJ1262标准中的对嗅辨员的要求。模拟异味污染物建议如下：GB/T18801-2022A5投放量：三甲胺溶液1mL。D.1；500μL。2mL。表D.1宠物异味模拟混合原液组成试剂种类体积/mL已醛6.5正庚醛4.6辛醛2.8壬醛11.4异戊酸1.0至少选择规定的一种异味进行测试，如需要，也可选用其他异味作为试验模拟异味污染