体外gRNA快速合成及检测的方法,分子生物学论文

体外gRNA快速合成及检测的方法,分子生物学论文基因定点敲除技术通过对染色体上基因特异位点进行定点突变，使其功能丧失，进而到达研究其功能的目的。一些利用基因敲除技术开创建立的动物疾病模型对医学研究的发展做出了重要奉献。传统基因敲除技术于上世纪80年代末由Smithies等[1]创立，通过同源重组手段将构建的外源DNA片段插入并替换相应染色体上特定的区段，到达基因敲除的目的。这一技术的应用使人类能够有目的地研究基因功能和与之相关的疾病之间的直接关系。然而由于同源重组技术需要载体构建、ES细胞打靶、挑选、显微注射、小鼠鉴定等一系列较为复杂的操作步骤，并且成本较高、周期较长，大大限制了这一技术的应用。针对同源重组的缺点，科学家一直在探寻求索用其他更简便的技术来实现基因敲除。先后发明了ENU随机突变、基因捕获、ES细胞基因敲除细胞库等方式方法和手段，但由于技术手段和操作成本的限制，这些技术都不能完全替代传统的同源重组技术。2018年以后出现了一系列新的基因编辑技术，包括ZFN、TALEN和CRISPR/Cas9,创始了基因敲除〔敲入〕新的时代。这些新基因编辑技术作用原理类似，即通过核酸酶在目的基因的DNA双链上制造切口，然后利用生物体本身的修复机制以同源重组或者非同源末端连接的方式实现修复，进而到达基因失活的目的。作为一种最新的基因编辑技术，CRISPR/Cas9技术通过gRNA辨别特异的靶序列，同时介导Cas9核酸酶在DNA的特异位点上制造切口[2],然后利用生物体本身的修复机制进行DNA修复。这一经过中可能造成碱基改变、增加、缺失等突变现象，进而实现对目的基因的敲除与修饰[3].CRISPR/Cas9系统的高效基因组编辑功能已被成功应用于多种生物。包括人类细胞,斑马鱼[5]、小鼠[6,7]、大鼠[8]、植物[9,10]及细菌[11].众所周知，生物体的一个性状往往由多个基因共同决定，传统的基因敲除费时费力却只能一次敲除一个相关基因，而CRISPR/Cas9系统华而不实一个最重要的特点便是可在多个不同gRNA的引导下由Cas9核酸酶一次靶向敲除多个基因组位点[12,13].与其他基因编辑技术相比，CRISPR/Cas9系统具有其独特的优势：首先，其RNA辨别DNA机制即核酸之间的互相辨别，避免了DNA甲基化造成的影响。其次，与ZFN和TALEN相比，具有一样或更高层次的基因编辑效率，尤其在点突变方面优于ZFN和TALEN[14,15].第三，设计简单快速，无需重复构建核酸内切酶表示出载体，适用于任何分子生物学实验室。当下基因编辑技术迅速发展，CRISPR/Cas9技术以其优势必将迅速推动基因组功能的研究。快速获取目的gRNA并检测验证其活性将会推动这项技术的发展。本文旨在建立一种体外gRNA快速合成及检测的方式方法，这一方式方法的建立将减少利用该系统实现基因编辑的时间，快速实现目的基因的敲除。1材料和方式方法1.1材料8周龄SPF级C57小鼠，由北京华阜康生物科技股份有限公司提供【SCXK〔京〕2020-0004】，PCR仪〔Bio-RadT100TMThermalCycler〕、Tanon全自动数码凝胶成像分析系统〔上海天能公司〕、NanoDrop2000超微量分光光度计〔Thermo〕、T7转录试剂盒〔Ambion_mMESSAGE_mMACHINE_T7〕、RNA纯化试剂盒〔MEGAclearTMKit,Ambion〕、PCR产物纯化试剂盒〔QIAquickPCRPurificationKit〕、无核酸酶水、dNTPmixture、高保真酶Taq酶〔Sigma〕、Cas9核酸酶〔北京唯尚立德生物科技有限公司〕1.2gRNA靶点选择及其寡核苷酸链合成利用设计能够结合NKp46外显子Exon3上的gRNA〔20nt〕.引物及gRNA通用模板由Invitrogen公司合成。1.3gRNA转录模板的PCR扩增利用NKp46gRNA特异的上游引物mNKp46_g1F和gRNA通用下游引物gRNA-R,以人工合成的gRNA通用模板DNA片段为模板，通过PCR扩增得到NKp46基因特异的gRNA转录模板。详细反响条件如下：〔94℃30s,60℃10s,72℃30s〕35,72℃10min,4℃保存。取5L电泳检测PCR产物，确定得到目的DNA片段，大小为123bp.1.4gRNA模板的体外转录在得到gRNA转录模板后利用纯化试剂盒进行gRNA转录模板的纯化。将纯化后的产物用T7RNAkit转录试剂盒〔Ambion_mMESSAGE_mMA-CHINE_T7〕进行NKp46gRNA体外转录并利用RNA纯化试剂盒〔MEGAclearTMkit,Ambion〕将转录产物进行纯化。合成的gRNA通过NanoDrop2000超微量分光光度计检测检测浓度及纯度。分装并-80℃冻存。1.5gRNA体外活性及特异性检测将得到的gRNA与Cas9核酸酶以及目的DNA混合孵育，电泳后观察条带大小并观察片段灰度来确定切割效率。反响体系：dsDNA〔4L〕,gRNA〔体外转录〕〔1L〕,Cas9核酸酶〔1L〕,10buffer〔2L〕,ddH2O〔12L〕,反响总体系〔20L〕根据上述反响体系，混合好反响溶液，37℃30min,65℃5min.2结果2.1小鼠NKP46基因gRNA靶点选择NKp46基因存在于啮齿类动物〔大鼠和小鼠〕和灵长类动物，如黑猩猩和短尾猿中。同时NKp46是唯一能被小鼠细胞上表示出配体所辨别的人类NK细胞激活受体。为了研究NKP46基因在病毒感染经过中的作用，我们希望通过Cas9技术开创建立NKP46敲除小鼠。设计得到gRNA,见表1.本文以小鼠NKP46基由于例设计gRNA.共选择了2条gRNA序列：gRNA1GGTGAACATCTGGTGTCAGG,gRNA2CTCGGTGAACATCTGGTGTC这两个gRNA位于Nkp49基因组上外显子Exon3处。2.2NKp46gRNA体外扩增模板的设计gRNA转录模板的构造：T7启动子、前导序列〔20nt〕、保守序列。体外扩增模板序列是固定的即gRNA转录模板的保守序列GTTTTAGAGCTAGAAATAGCAAGTTAAAATAAGGCTAGTCCGTTATCAACTTGAAAAAGTGGCACCGAGTCGGTGCTTTTTTT,该片段能够构成gRNA的发卡构造，是所有gRNA都包括的一部分。2.3上游引物gRNA-F的设计将得到的20nt的序列前端加上一段T7启动子序列TAATACGACTCACTATAGGG并在末尾加上与gRNA固有序列前端相同的几个碱基GTTT-TAGAGCTAG,最终设计得到一个53nt的片段。根据该方式方法设计并合成了靶向小鼠NKP46基因的mNKp46_g1F.mNKp46_g1F将作为转录模板合成经过中的上游引物，介入PCR反响。由于体外转录试剂盒在转录完成后会在5端多出3个G所以在设计选择靶向gRNA时能够选择起始位置带G的序列，这样能够最大限度的减少体外转录的影响，它的构成〔图1〕mNKp46_g1FTAATACGACTCACTATAGGGTGAACATCTGGTGTCAGGGTTTTAGAGCTAG2.4gRNA合成的通用下游引物。gRNA-R的设计AAAAAAAGCACCGACTCGGT-GCCACTTTTTC,该序列与gRNA模板3端互补。2.5靶向小鼠NKP46基因的gRNA的转录模板在体外完成扩增该经过特别简单只需一步PCR反响就能够迅速得到足够浓度的带有T7promoter的gRNA的转录模板，介入反响的上游引物已经根据上述方式方法设计合成，华而不实下游引物和模板由于是通用的不具有特异性，不需要每次都合成。当研究者更换目的基因，只需设计合成一条新的上游引物即可，下游引物及模板不需要重复合成，特别的简单经济。扩增经过〔见图2〕.然后体外转录得到足够浓度gRNA的靶向NKP46基因的gRNA.2.6体外利用Cas9核酸酶检测验证该方式方法确实能够得到高特异性及活性的gRNA设计体外检测引物mNk46_gSFTCCAAACACGTGCATGTTACACATG,mNk46_gSRCCCAGCTTTGACTCTCTTGTCCATC以小鼠DNA作为模板，利用该引物能够扩增NKP46基因，作为体外酶切检测的片段。该片段中包含gRNA的靶点，利用这种体外检测方式方法，能够迅速对设计合成的gRNA的特异性及活性进行检测，通过电泳能够观察剪切条带的大小，以验证靶点位置能否正确，进一步能够通过T-A克隆检测切开位置。本文设计的靶向NKP46的gRNA在靶点位置切开，使得全长1297bp检测条带，被切成两条带，大小分别为804bp和493bp〔图3A〕.通过对灰度的计算〔图3B〕,计算得到转录后原浓度的gRNA以及稀释一倍的gRNA,剪切效率都为100%,由此能够证明该方式方法设计合成gRNA特异性及活性较高，同时体外检测快速检测的方式方法大大提高了gRNA检测的效率。3讨论常规获取gRNA要构建表示出载体，需要把gRNA的转录模板连接到载体上，经过涂板挑选单克隆再摇菌后提取质粒，最后还要酶切使质粒线性化才能得到gRNA的体外转录模板，得到gRNA最少也需要3d的时间。而本文建立的这种方式方法将极大地节约转录gRNA的时间，一步PCR反响就能够得到足够浓度的转录模板，仅需半天时间就能够得到需要的gRNA.本文建立的这种活性及特异性检测方式方法，能够在体外迅速验证gRNA的其活性及特异性。将Cas9核酸酶、gRNA、PCR扩增的靶基因片段混合孵育，通过琼脂糖凝胶电泳能够特别清楚的观察到剪切位置并通过对电泳照片的灰度比拟能够进一步计算剪切效率。建立的这种快速利用CRISPR/Cas9技术实现基因编辑的方式方法，最具特色的是gRNA的获得及体外酶切检测。与常规方式方法相比我们