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文档简介

主讲人:绿色荧光蛋白(GFP)的基因克隆、表达及粗提取目录

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

绿色荧光蛋白简介

1.一类存在于包括水母、水螅和珊瑚等腔肠动物体内的生物发光蛋白2.

GFP是由238个氨基酸所组成的单体蛋白,相对分子质量为27.0kMr3.1962年,下村修等分离纯化了水母中发光蛋白水母素,并发现这种绿色的荧光蛋白。1974年,他们分离得到了这个蛋白目录

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

绿色荧光蛋白优点

①荧光强度高,稳定性高;②分子量小,易于融合,适用于多种转化方式,对受体无毒害,安全可靠;③不需要反应底物与其他辅助因子,受蓝光激发产生绿色荧光,尤其适用于体内的即时检测;④不具有种属依赖性,在多种原核和真核生物细胞中都表达;⑤通过替换一些特殊氨基酸,可以使之产生不同颜色的光,从而适应不同的研究需要。近年来广泛用于基因的表达与调控、蛋白质的定位、转移以及相互作用、信号传递、转染与转化,以及细胞的分离与纯化等研究领域

1.仪器:恒温培养箱,超净台,恒温摇床,制冰机,台式离心机,核酸电泳仪,小型混合器,冰箱,蓝盾可见光透射仪,移液器、电泳槽、振荡器、制冰机、凝胶成像仪,水浴锅,高压灭菌锅、振荡培养箱,手持式紫外灯2.试剂:BamHI;NotI(10U/μL);T4ligase;LB培养基;溶液Ⅰ;溶液Ⅱ;溶液Ⅲ;TE缓冲液;20×TBE;GeneFinder-溴酚蓝上样缓冲液;1×TBE缓冲液目录

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献仪器与试剂研究背景

研究思路目录

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景目录

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

1.质粒DNA的分离与纯化01质粒DNA的分离与纯化02酶切及连接03大肠杆菌感受态细胞的制备及转化04GFP蛋白的诱导表达.05绿色荧光蛋白的粗提取步骤一步骤二步骤三步骤四步骤五

主要步骤1.1细菌的生长和质粒的扩增1.2碱提取法1.3质粒DNA的提纯目录

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

1.质粒DNA的分离与纯化

2.酶切及连接双酶切1质粒酶切产物的鉴定2回收酶切产物3连接4目录

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

2.1双酶切目录

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景反应物(μL)pEGFP-N3pET-28a质粒1818BamHI22NotI2210×bufferK330.1%BSA缓冲液33

2.4连接目录

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研究现状研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景反应物体积/μL回收纯化的pET-28a质粒5gfp基因片段12T4连接酶1缓冲液(10×)2DNA连接酶能够催化在两条DNA链之间形成磷酸二酯键,这种酶需要在一条DNA链的3’-末端具有一个游离的羟基(-OH),和在另一条DNA链的5’-末端具有一个磷酸基团(-P)3.1感受态细胞的制备(CaCl2法)3.2转化涂板目录

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

3.大肠杆菌感受态细胞的制备及转化

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

4.GFP蛋白的诱导表达1.IPTG(异丙基硫代β-L半乳糖苷)是一种常见的诱导基因表达的诱导剂,结构类似乳糖。2.GFP基因连接到pET-28a的多克隆位点(MCS),GFP基因的表达受其上游T7启动子和操纵基因O位点以及结合到这些顺式作用元件的蛋白因子的控制。紫外灯下的绿色荧光蛋白

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

4.GFP蛋白的诱导表达3.LacI基因编码调节蛋白,可以四聚体的形式结合到操纵基因O位点上,关闭GFP基因的表达4.IPTG可与四聚体调节蛋白结合,从而改变调节蛋白的构象,使调节蛋白不再与O位点结合。接着BL21编码的T7RNA聚合酶结合到T7启动子位点,从而启动GFP基因的表达紫外灯下各组绿色荧光蛋白

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

5.粗提取1.挑取鉴定正确的单菌落接入LB培养基2.扩大培养3.IPTG诱导表达4.将菌液进行离心,收集菌体5.洗涤菌体,超声破碎,离心,取上清。访谈结果与析

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

预期结果

提取质粒加入溶液Ⅰ浑浊;加入溶液Ⅱ变澄清加入溶液Ⅲ出现白色絮状沉淀加入氯仿抽提溶液分层访谈结果与析

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

预期结果酶切产物鉴定——GFP基因访谈结果与析

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

预期结果

重组质粒的鉴定访谈结果与析

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

预期结果

重组质粒转化涂板阴性对照阳性对照访谈结果与析

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仪器与试剂研究思路研究方法预期结果参考文献研究背景

预期结果绿色荧光蛋白菌落参考文献:[1]ShimomuraO,JohnsonFH,SaigaY.Extraction,purificationandpropertiesofaequorin,abioluminescentproteinfromtheluminoushydromedusan,Aequorea[J].JCellComoPhysiok,1962,59:223-239.[2]KainSR,AdamsM,KondepudiA,etal.Greenfluorescentproteinasareporterofgeneexpressionandproteinlocalization.biotechniques,1995,19(4):650[3]PhillipsGJ.Greenfluorescentprotein-abrightideaforthestudyofbacterialproteinlocalization.FEMSmicrobialLett,2001,204(1):9[4]ChalfieM,Tu,EKivchenG,etal.Greenfluorescentproteinasamarkerforgeneexpression.Science,1994,263(5148):802[5]ChalfieM.Greenfluorescentprotein.PhotochemPhotobiol,1995,62(4):651[6]LarrickJW,BalintRF,YouvanDC.Greenfluorescentprotein:untappedpotentialinimmunotechnology.Immunotechnology,1995,1(2):83参考文献:[7]萨姆布鲁克J,弗里奇EF,曼尼阿蒂斯T.分子克隆实验指南[M].金冬雁,黎孟枫,译.2版.北京:科学出版,1995.[8]杜祯,马海利,陈瑞芳.工程菌DH-5α感受态细胞的制备及质粒pGEM的转化研究中国畜牧兽医,2007年第34卷第5期[9]NucP.NucK.RecombinantproteinproductioninEscherichiacoli[J].PostepyBiochem,2006,52(4):448-456.[10]DongX,TangB,LiJ,etal.ExpressionandPurificationofIntactandFunctionalSoybean(Glycinemax)SeedFerr

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