第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件

第三部分重组DNA导入受体细胞一、受体细胞二、选择受体细胞的基本原则三、重组DNA导入受体细胞的方法第三部分重组DNA导入受体细胞一、受体细胞1、转化概念转化

：DNA重组分子在体外构建完成后，必须导入特定的受体细胞，使之无性繁殖并高效表达外源基因或直接改变其遗传性状，这个导入过程及操作统称为重组DNA分子的转化（Transformation）。重组DNA人工导入受体细胞有许多方法，包括转化、转染、接合以及其它物理手段，如受体细胞的电穿孔和显微注射等，这些导入方法在DNA重组技术中统称为转化操作。一、重组DNA转化1、转化概念一、重组DNA转化感受态：受体细胞最易接受外源DNA片段而实现转化的一种特殊生理状态。处于感受态的受体细菌，其吸收转化因子的能力为一般细菌生理状态的千倍以上，而且不同细菌间的感受态差异往往受自身的遗传特性、菌龄、生理培养条件等诸多因素的影响。感受态：受体细胞最易接受外源DNA片段而实现转化的一种特2、细菌转化的步骤：感受态的形成。感受态时细胞表面出现各种蛋白质和酶类，负责转化因子的结合、切割及加工。感受态细胞能分泌一种小分子量的激活蛋白或感受因子，其功能是与细胞表面受体结合，诱导某些与感受态有关的特征性蛋白质（如细菌溶素）的合成，使细菌胞壁部分溶解，局部暴露出细胞膜上的DNA结合蛋白和核酸酶等。转化因子的结合。受体菌细胞膜上的DNA结合蛋白可与转化因子的双链DNA结构特异性结合，单链DNA或RNA双链RNA以及DNA/RNA杂合双链都不能结合在膜上。2、细菌转化的步骤：转化因子的吸收。双链DNA分子与结合蛋白作用后，激活邻近的核酸酶，一条链被降解，而另一条链则被吸收到受体菌中。整合复合物前体的形成。进入受体细胞的单链DNA与另一种游离的蛋白因子结合，形成整合复合物前体结构，它能有效地保护单链DNA免受各种胞内核酸酶的降解，并将其引导至受体菌染色体DNA处。转化因子单链DNA的整合。供体单链DNA片段通过同源重组，置换受体染色体DNA的同源区域，形成异源杂合双链DNA结构。转化因子的吸收。双链DNA分子与结合蛋白作用后，激活邻近第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件6二、受体细胞受体细胞(receptorcell)：又称为宿主细胞(hostcell)，是指能摄取外源DNA并使其稳定维持的细胞感受态(competence)：是指细菌吸收外源DNA的生理状态。感受态细胞(competencecell)：是指具有接受外源DNA能力的细胞。二、受体细胞受体细胞(receptorcell)：又称为宿1、原核生物细胞的优点大部分原核生物细胞没有纤维素组成的坚硬细胞壁，便于外源DNA的进入。没有核膜，染色体DNA没有固定结合的蛋白质，这为外源DNA与裸露的染色体DNA重组减少了麻烦基因组简单，不含线粒体和质体基因组，便于对引入的外源基因进行遗传分析。原核生物多数为单细胞生物，容易获得一致性的实验材料，并且培养简单，繁殖迅速，实验周期短，重复实验快。1、原核生物细胞的优点大部分原核生物细胞没有纤维素组成的坚硬原核生物细胞不具备真核生物的蛋白质折叠复性系统，即使许多真核生物基因得以表达，得到的也多是无特异性空间结构的多肽链。原核生物细胞缺乏真核生物的蛋白质加工系统，而许多真核生物蛋白质的生物活性正是依赖于其侧链的糖基化或磷酸化等修饰作用。原核生物细胞内源性蛋白酶易降解空间构象不正确的异源蛋白，造成表达产物不稳定等。2、原核生物细胞表达真核生物基因存在的缺点：原核生物细胞不具备真核生物的蛋白质折叠复性2、原核生物细胞表3、被用作受体菌的原核生物：大肠杆菌、枯草杆菌、蓝细菌等。大肠杆菌受体细胞大肠杆菌属革兰氏阴性菌，它是目前为止研究得最为详尽、应用最为广泛的原核生物种类之一，也是基因工程研究和应用中发展最为完善和成熟的载体受体系统。优点：繁殖迅速、培养简便，代谢易于控制。缺点：大肠杆菌细胞间隙中含有大量的内毒素可导致人体热原反应。3、被用作受体菌的原核生物：大肠杆菌、枯草杆枯草杆菌受体细胞枯草杆菌又称枯草芽孢杆菌，是一类革兰氏阳性菌。优点：枯草杆菌具有胞外酶分泌－调节基因，能将具有表达的产物高效分泌到培养基中，大大简化了蛋白表达产物的提取和加工处理等，而且在大多数情况下，真核生物的异源重组蛋白经枯草杆菌分泌后便具有天然的构象和生物活性。枯草杆菌不产生内毒素，无致病性，是一种安全的基因工程菌。枯草杆菌具有芽孢形成的能力，易于保存和培养。枯草杆菌也具有大肠杆菌生长迅速、代谢易于调控、分子遗传学背景清楚等优点。应用：已成功的用于表达人的β干扰素、白细胞介素乙型肝炎病毒核心抗原和动物口蹄疫病毒VPI抗原等。枯草杆菌受体细胞蓝细菌（蓝藻）蓝藻——又称蓝绿藻或蓝细菌，它含有叶绿素a(缺乏叶绿素b)和藻胆素，具有光合系统Ⅰ(PSⅠ)

和光合系统Ⅱ(PSⅡ)、能进行光合作用，但它又具有细菌的特征，无细胞核及双层膜结构的细胞器，染色体裸露，是一种典型的原核生物。蓝藻作为表达外源基因的受体菌兼具微生物和植物的优点，具体表现在：基因组为原核型，除了裸露的染色体DNA外，不含叶绿体DNA和线粒体DNA，遗传背景简单，便于基因操作和外源DNA的检测。蓝细菌（蓝藻）细胞壁属G-，主要由肽聚糖组成，便于外源DNA的转化。营光合自养生长，培养条件简单，只需光、CO2、无机盐、水和适宜的温度就能满足生长需要。多种蓝藻含内源质粒，为构建蓝藻质粒载体提供了极好的条件。蓝藻富含蛋白质，并且多数蓝藻无毒，早已用作食物或保健品，在此基础上采用转基因技术，把一些重要药物的基因转入无毒蓝藻，就可达到锦上添花的效果。细胞壁属G-，主要由肽聚糖组成，便于外源DNA的转化。4、真核生物细胞真菌受体细胞真菌是低等的真核生物，其基因结构、表达调控机制以及蛋白质的加工与分泌都具有真核生物的特征，因此利用真菌细胞表达高等动植物基因具有原核生物细胞无法比拟的优点。4、真核生物细胞真菌受体细胞酵母菌酵母菌作为外源真核基因表达系统的优点酵母菌是结构最为简单的真核生物之一,其基因表达调控机理比较清楚,遗传操作相对较为简单。具有真核生物蛋白翻译后修饰加工系统。不含有特异性的病毒，不产生毒素，有些酵母菌属(如酿酒酵母)在仪器工业中有着几百年的应用历史，属于安全型基因工程受体系统。培养简单，利于大规模发酵生产，成本低廉。能将外源基因表达产物分泌至培养基中，便于产物的提取和加工等。酵母菌酵母菌作为外源真核基因表达系统的优点动物细胞常用的动物受体细胞有Hela细胞、猴肾细胞和中国仓鼠巢细胞(CHO)等。哺乳动物细胞作为受体细胞的优点是：能识别和除去外源真核基因中的内含子，剪接加工成成熟的RNA。真核基因表达蛋白在翻译后能被正确加工或修饰,产物具有较好的蛋白质免疫原性,约为酵母细胞16-20倍。动物细胞常用的动物受体细胞有Hela细胞、猴肾细胞和易被重组DNA质粒转染,具有遗传稳定性和可重复性。经转化的动物细胞可将表达产物分泌到培养基中，便于提纯和加工，成本低。缺点是:组织培养技术要求高，如培养和筛选一个高度扩增的转化子CHO细胞，通常需要数月之久,难度较大。易被重组DNA质粒转染,具有遗传稳定性和可重目前用作基因转移的受体动物主要有猪，羊、牛、鱼等经济动物和鼠、猴等实验动物，主要用途在于大规模表达生产天然状态的复杂蛋白质或动物疫苗、动物品种的遗传改良及人类疾病的基因治疗等。常用的动物受体细胞有小鼠L细胞、Hele细胞猴肾细胞和中国仓鼠卵巢细胞(CHO)等。以动物细胞，尤其是哺乳动物细胞作为受体细胞的优点目前用作基因转移的受体动物主要有猪，羊、植物受体细胞优点：全能性，即一个分离的活细胞在合适的培养条件下，较容易再分化成植株，这意味着一个获得外源基因的体细胞可以培养出能稳定遗传的植株或品系。缺点：植物细胞有纤维素参与组成的坚硬细胞壁，不利于摄取重组DNA分子。现在用作转基因受体的植物有水稻、棉花、玉米、马铃薯、烟草等经济作物和拟南芥等模式植物。植物受体细胞5、选择受体细胞的基本原则便于重组DNA分子的导入。便于重组体的筛选。根据所用的表达载体所含的选择性标记与受体细胞基因是否相匹配，从而易于对重组体进行筛选。遗传稳定性高，易于进行扩大培养或易于进行高密度发酵而不影响外源基因的表达效率。对动物细胞而言，所选用的受体细胞具有对培养的适应性强，可以进行贴壁或悬浮培养，可以在无血清培养基中进行培养。

5、选择受体细胞的基本原则便于重组DNA分子的导入。受体细胞内内源蛋白水解酶基因缺失或蛋白酶含量低，利于外源蛋白表达产物在细胞内积累，可促进外源基因高效分泌表达。安全性高，无致病性，不会对外界环境造成生物污染。一般选用致病缺陷型的细胞或营养缺陷型细胞作为受体细胞。受体细胞内内源蛋白水解酶基因缺失或蛋白酶含量低，利于外源蛋白能使重组DNA分子稳定存在于细胞中。从受体细胞的角度出发，通常的做法是对其作适当的修饰改造，如选用某些限制性核酸内切酶缺陷型的受体细胞就可以避免其对重组DNA分子的降解破坏作用。受体细胞在遗传密码子的应用上无明显偏倚性。具有较好的转译后加工机制等，便于真核目的基因的高效表达。在理论研究和生产实践上有较高的应用价值。能使重组DNA分子稳定存在于细胞中。从受体细胞的角度出发，通6、受体细胞应具备的条件野生型的大肠杆菌不是理想的受体细胞，因为自身具有的限制和修饰系统，另外还可能存在潜在的致病性因此必须通过适当的诱变手段对野生型大肠杆菌进行遗传性状改造，以获得适宜作为受体细胞的突变菌株通常应从以下几个方面加以考虑：从安全性考虑，应具备以下条件：不适合在人体内生存不适合在非培养条件下生存在非培养条件下，其DNA容易解体它的DNA不易转移它的质粒只在这一宿主由复制便于检测6、受体细胞应具备的条件野生型的大肠杆菌不是理想的受体细胞，从遗传性考虑：重组缺陷型recA－，用于基因扩增或高效表达的受体细胞（recA-）限制系统的缺陷，或是修饰系统的缺陷。避免对外源DNA的除解。外切酶和内切酶活性缺陷（recB-，recC-，hsdR-）

与重组质粒的遗传性状要有显的差异（具有与载体选择标记互补的表型）具有较高的转化效率从遗传性考虑：限制缺陷型这是导致外源重组DNA转化或转导效率低下的主要原因之一。应选用限制系统缺陷型的突变菌株作为受体细胞，以提高外源DNA分子的转化或转导效率。进一步使修饰系统也发生缺陷，则受体菌细胞既不能修饰，也不能限制外源DNA分子，更便于重组DNA分子的多种基因操作。大肠杆菌的限制系统主要由hsdR基因编码，因此具有hsdR-遗传表型的大肠杆菌各株均丧失了降解外源DNA的能力，同时大大增加了外源DNA的可转化性。限制缺陷型重组缺陷型进入野生型细胞的外源DNA分子能自发地与染色体DNA发生的体内同源重组反应由rec基因家族的编码产物所控制。RecA蛋白能促进DNA分子之间的同源联会和DNA单链交换，recA基因的突变使大肠杆菌细胞内的遗传重组频率降低至106。大肠杆菌的recB、recC和recD基因分别编码不同分子量的多肽链，三者构成一个在同源重组中的统一功能单位—RecBCD蛋白（核酸酶V），它具有依赖于ATP的双链DNA外切酶和单链DNA内切酶双重活性。recB、recC和recD基因的突变也可以降低遗传重组的发生频率因此受体细胞必须选择体内同源重组缺陷型的遗传表型基因型为recA-、recB-或recC-等，有些大肠杆菌突变体菌株则将三个基因同时失活。重组缺陷型转化亲和型可以利用遗传诱变技术改变受体菌细胞壁的通透性及细胞膜的特异吸附性，从而提高其转化效率。还可以选择能够诱导形成感受态细胞的菌株作为受体菌细胞。转化亲和型遗传互补型遗传表型差异大，可便于重组子的检测。通常是使受体细胞呈现与载体所携带的选择标记互补的遗传性状。方能使转化细胞的筛选成为可能。如在大肠杆菌系统中，重组质粒载体上多含有AMP抗性标记基因，则所选用的受体细胞应对这种抗生素敏感。当重组DNA分子转入受体细胞后载体上的标记基因赋予受体细胞抗生素的抗性特征，据此可以区分转化子与非转化子。如果受体细胞具有与外源基因表达产物活性互补的遗传特征．可以直接筛选到外源基因表达的转化细胞。遗传互补型感染寄生缺陷型相当多的细菌对其它生物尤其是人和牲畜具有感染和寄生效应，重组DNA分子导入这些细菌受体中后，极有可能随着受体菌的感染寄生作用，进入生物体内，并广泛围传播，如果外源基因对人体和牲畜有害，则会导致一场灾难，因此从安全的角度上考虑，受体细胞不能具有感染寄生性，当然，利用基因工程手段制造生物武器不在此例。感染寄生缺陷型第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件三、重组DNA导入受体细胞的方法转化(transformation):指感受态的大肠杆菌细胞捕获质粒DNA或以它为载体构建的重组质粒DNA分子的过程。转化子(transformant)：经转化获得外源遗传物质的细胞。转染(transfection):指感受态的大肠杆菌细胞捕获噬菌体或以它为载体构建的重组DNA分子的过程转导(transduction):指病毒转移真核细胞DNA的过程或噬菌体介导的细菌细胞之间基因转移的过程。三、重组DNA导入受体细胞的方法转化(transformat基因导入受体细胞方法根据转移基因方法特性可分为：转化(transformation)转导(transduction)转染(transfection)微注射技术(microinjection)电转化法(electroporation)基因枪技术(geneblaster)脂质体介导法(liposomemediatedtransfer)基因导入受体细胞方法根据转移基因载体与受体的特性可分为：质粒载体导入受体细胞的方法：CaCl2、电转化法等。噬菌体转染细胞的方法：体外包装感染法等。DNA导入酵母菌的方法：原生质体转化、电穿孔转化法等。DNA导入植物细胞的方法：Ti质粒叶盘法、电穿孔转化法、基因枪法等。DNA导入昆虫细胞的方法：杆状病毒感染法等。DNA导入哺乳动物细胞的方法：磷酸钙共沉淀法、电穿孔转化法、脂质体介导法、基因枪法等根据转移基因载体与受体的特性可分为：1、氯化钙转化法大肠杆菌是一种革兰氏阴性菌，自然条件下很难进行转化，其主要原因是转化因子的吸收较为困难。在基因工程研究和应用中，转化受体菌细胞的正是根据人们需要构建的外源重组质粒DNA分子而非来自供体菌的游离DNA片段(转化因子)。因此在大肠杆菌的转化实验中，很少采取自然转化的方法，通常的做法是首先采用人工的方法制备感受态细胞，然后进行转化处理，其中代表性的方法之一是Ca2+诱导的大肠杆菌转化法。1、氯化钙转化法1970年M.Mandel和A.Hige发现,大肠杆菌经过氯化钙适当处理及短暂热休克之后,便能吸收λ噬菌体DNA。1972年美国斯坦福大学S.Cohen报道,经氯化钙处理大肠杆菌细胞也能摄取质粒DNA。1970年M.Mandel和A.Hige发现,大肠杆菌经过氯Ca2+诱导转化原理：①在0℃的Cacl2低渗溶液中，细菌细胞发生膨胀，同时Cacl2使细胞膜磷脂层形成液晶结构促使细胞外膜与内膜间隙中的部分核酸酶解离开来，诱导大肠杆菌形成感受态。②Ca2+能与加入的DNA分子结合，形成抗DNA酶(DNase)的羟基-磷酸钙复合物，并黏附在细菌细胞膜的外表面上。当42℃热刺激短暂处理细菌细胞时，细胞膜的液晶结构发生剧烈扰动，并随之出现许多间隙，为DNA分子提供了进入细胞的通道。Ca2+诱导转化原理：Mg2+对DNA分子有很大的稳定性作用，因此利用Mgcl2与Cacl2共同处理大肠杆菌细胞，可以提高DNA的转化效率。如利用二甲基亚砜(DMSO)和二硫苏糖醇(DDT)等进一步处理细胞，能诱导高频感受态细胞的形成，转化效率可提高100～1000倍，且对大小质粒分子均可进行有效的转化。但该法要求条件高，对外界污染物极为敏感，通常很少采用。Mg2+对DNA分子有很大的稳定性作用，因此利用Mgcl2与该法重复性好。操作简便快捷，适用于成批制备感受态细胞。对这种感受态细胞进行转化如果感受态细胞做得好，每微克超螺旋质粒DNA可得5×107～1×109个转化子。该法重复性好。操作简便快捷，适用于成批制备感受态细胞。对这种大肠杆菌感受态细胞的制备：100ml菌体培养至OD600=0.5，离心收集菌体。用10ml冰冷的75mM

CaCl2溶液悬浮菌体，离心收集菌体。用1ml冰冷的75mM

CaCl2溶液悬浮菌体。冰浴放置12-24小时，备用。取100ml感受态细胞，加入相当于50ng载体的重组DNA连接液，混匀。大肠杆菌感受态细胞的制备：冰浴放置半小时。在42℃保温1.5分钟（热脉冲）。快速将转化细胞转移至冰浴中放置1–2分钟。加入1ml新鲜培养基，于37℃培养1小时（扩增）。涂在合适的固体培养基平板上进行筛选。

冰浴放置半小时。第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件41获得合格的感受态细胞，要注意以下几点：用作受体菌的细胞在培养时要掌握好细胞密度，一般在A600为0.4左右为好。制备受体细胞的整个过程要在0～4℃进行，并尽量避免污染。如果用抗生素筛选转化子，作为对照的受体菌应该在此培养基上不生长。为了提高转化率，可选用复合氯化钙溶液，如FSB溶液。获得合格的感受态细胞，要注意以下几点：第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件43CaCl2法制备感受态细胞转化DNA时，低温的主要目的是:（1）抑制细胞的旺盛生理代谢。（2）有助于DNA-Ca2+吸附于细胞表面。（3）防止DNAase降解DNA。热休克温度是42℃。目的是使细胞摄入吸附于其表面的DNA。※CaCl2法制备感受态细胞转化DNA时，低温的主要目的是:※转化处理过程中，可能感染杂菌，导致假阳性转化子的出现，因此须设以下几种对照处理：DNA对照处理。转化处理液中用0.2ml无菌水代替0.2m1感受态细胞，检验DNA溶液是否染菌。感受态细胞对照处理。转化处理液中用0.1mlNTE缓冲液(500mMNaCl，10mMTris-HCl，1mMEDTApH8.0)代替0.1m1DNA溶液，检验感受态细胞是否染菌。感受态细胞有效性对照处理。在0.2ml感受态细胞中加入0.1ml已知容易转化这种感受态细胞的质粒DNA。转化处理过程中，可能感染杂菌，导致假阳性转2、PEG介导的细菌原生质体转化革兰氏阳性细菌（如枯草杆菌、链霉菌等）接纳外源DNA的主要屏障是细胞壁，因而这类细菌通常采用原生质体（细胞去壁后的形态）转化的方法转移质粒或重组DNA分子。酵母菌、霉菌、植物细胞也可用原生质体法进行转化。2、PEG介导的细菌原生质体转化PEG是乙二醇的多聚物,存在不同分子量的多聚体,它可改变各类细胞的膜结构,使两细胞相互接触部位的膜脂双层中脂类分子发生疏散和重组,此时相互接触的两细胞的胞质沟通成为可能,从而造成细胞之间发生融合。PEG是乙二醇的多聚物,存在不同分子量的多聚体,它可改变各细菌原生质体的制备：不同细菌的原生质体制备方法不尽相同，以链霉菌为例：细菌需生长在高渗培养基中（如34%的蔗糖溶液），并加入甘氨酸以增加细菌细胞壁对溶菌酶的敏感性。在制备过程中，菌体应始终悬浮在10.3%的蔗糖等渗溶液中。与原生质体接触的所有器皿应保持无水无去污剂。细菌原生质体的制备：细菌原生质体的转化：取0.2-1ml的原生质体悬浮液（108-109个原生质体），加入10-20mlDNA重组连接液，同时加入含有PEG1000和Ca2+的等渗溶液，混匀。细菌原生质体的再生：原生质体再生的主要目的是使细菌重新长出细胞壁。再生在特殊的固体培养基上进行，内含脯氨酸和微量元素。细菌原生质体的转化：3、电转化电转化又称电穿孔法(electroporation):是指在细胞上施加短暂、高压的电流脉冲，在质膜上形成纳米大小的微孔，DNA直接通过这些微孔或者作为微孔闭合时所伴随发生的膜组分重新分布通过质膜进入细胞质中，这种方法称为电穿孔法。最早用于将DNA导入真核细胞,1988年,Dower等人成功应用于大肠杆菌的转化。基本原理是利用高压电脉冲作用，在大肠杆菌细胞膜上进行电穿孔，形成可逆的瞬间通道,从而促进外源DNA的有效吸收。

3、电转化电转化又称电穿孔法(electroporation将待转化的质粒或DNA重组连接液加在电穿孔转化仪的样品池中，两极施加高压电场。在强大电场的作用下，细菌细胞壁和细胞膜产生缝隙，质粒或DNA重组分子便可进入细胞内。电穿孔转化法操作简单，而且几乎对所有含细胞壁结构的受体细胞均有效，但转化效率差别很大。将待转化的质粒或DNA重组连接液加在电穿孔转化仪的样品池中，电穿孔转化法的效率受电场强度、电脉冲时间和外源DNA浓度等参数的影响，通过优化这些参数，每μgDNA可以得到109～1010转化子。电压增高或电脉冲时间延长时，转化效率将会有所提高，但同时导致受体细胞存活率的降低，转化效率的提高也因此被抵消。电穿孔转化法的效率受电场强度、电脉冲时间和外源DNA浓度等参用于电穿孔转化法的细胞处理要比感受态细胞的制备容易得多．当细菌生长到对数中期后予以冷却、离心，然后用低盐缓冲液充分清洗降低细胞悬浮液的离子强度，并用10％甘油重悬细胞，使其细胞浓度为3×l010个／m1。分装，在干冰上速冻后置于-70℃贮存。这样，每小份细胞融解后即可用于转化，有效期达6个月以上。电穿孔转化须在低温下(0-4℃)进行，转化效率要比在室温下操作提高约100倍。用于电穿孔转化法的细胞处理要比感受态细胞的制备容易得多．当细4、接合转化：接合（Conjugation）：指通过细菌细胞之间的直接接触导致DNA从一个细胞转移至另一个细胞的过程。这个过程是由结合型质粒完成的，它通常具有促进供体细胞与受体细胞有效接触的接合功能以及诱导DNA分子传递的转移功能，两者均由接合型质粒上的有关基因编码4、接合转化：是基于非接合型质粒的迁移作用而建立的一种DNA转化方式．适用于那些难以采用Ca2+诱导转化法或电穿孔法转化的受体菌。非接合型质粒分子较小，缺少编码质粒转移体系所须的全部基因，不能象接合型质粒那样在宿主细胞间自我转移。但如果宿主细胞中存在另外一种溶合性的接合型质粒（即辅助质粒）非接合型质粒通常也会被转移，这种由共存的接合型质粒引发的非接合型质粒的转移过程称为迁移作用是基于非接合型质粒的迁移作用而建立的一种DNA转化方式．适用接合型质粒分子较大，自我转移的随意性强，转移过程中经常伴随着宿主细胞染色体的高频转移，因此难以作为基因工程载体使用。目前常用的质粒载体多是在非接合型质粒或缺失了接合转移基因的接合型质粒的基础上构建的，故重组质粒DNA分子也不能直接接进行接合转化。而只能通过其迁移作用来完成。接合型质粒分子较大，自我转移的随意性强，转移过程中经常伴随着首先将具有接合转化功能的辅助质粒转移至含有重组质粒的供体细胞中，然后将这种供体细胞与受体细胞进行混合，促使两者发生接合转化作用，将重组质粒导入受体细胞。整个接合转化过程涉及到3种有关的细菌菌株即待转化的受体菌、含有要转化的重组质粒DNA的供体菌和含有广泛宿主的辅助质粒的辅助菌，因此称为三亲本杂交接合转化法。首先将具有接合转化功能的辅助质粒转移至含有重组质粒的供体细胞第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件585、重组λ噬菌体DNA分子转导大肠杆菌

转染：将重组λ噬菌体DNA分子直接导入受体细胞中的过程，称为转染。将重组λ噬菌体DNA分子导入大肠杆菌受体细胞的常规方法是转导操作。转导(transduction)：指通过λ噬菌体(病毒)颗粒感染宿主细胞的途径把外源DNA分子转移到受体细胞内的过程。5、重组λ噬菌体DNA分子转导大肠杆菌转染：将重组λ噬菌体具有感染能力的λ噬菌体颗粒除含有λ噬菌体DNA分子外，还包括外被蛋白。以噬菌体颗粒感染受体细胞，首先必须对重组λ噬菌体DNA分子进行体外包装。体外包装，是指在体外模拟λ噬菌体DNA分子在受体细胞内发生的一系列特殊的包装反应过程，将重组λ噬菌体DNA分子包装为成熟的具有感染能力的λ噬菌体颗粒的技术。具有感染能力的λ噬菌体颗粒除含有λ噬菌体DNA分子外，还包括基本原理：根据λ噬菌体DNA体内包装的途径分别获得缺失D包装蛋白的λ噬菌体突变株和缺失E包装蛋白的λ噬菌体突变株。这两种突变株均不能单独地包装λ噬菌体DNA，但将它们分别感染大肠杆菌，从中提取缺失D蛋白的包装物（含E蛋白)和缺失E蛋白的包装物(含D蛋白)，两者混合后就能包装λ噬菌体DNA。基本原理：根据λ噬菌体DNA体内包装的途径分别获得缺失D包装λ噬菌体DNA体外包装的主要过程①制备包装物。须培养两种溶原菌诱导溶菌生长收集和贮存包装物。②体外包装。制备λ噬菌体DNA混合液。第一次包装。包装物刚融化时，细胞发生破裂，释放出包装物可立即用于包装。第二次包装。进行第二次包装，可提高包装效率2－5倍，加入蛋白酶可降低包装反应液的黏度，便于包装反应的进行。去除细胞屑。第二次包装后，在反应液中加入SM溶液（噬菌体稀释缓冲液：100mmol/LNaCl,

10mmol/LMgSO4,

50mmol/LTris-HCLpH7.5)0.2%明胶和氯仿，混匀后离心去除碎屑。上清液中含活的噬菌体颗粒。λ噬菌体DNA体外包装的主要过程①制备包装物。第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件经过体外包装的噬菌体颗粒可以感染适当的受体菌细胞，并将重组λ噬菌体DNA分子高效导入细胞中。在良好的体外包装反应条件下，每μg野生型的λ噬菌体DNA可形成108～109的pfu。对于重组的λ噬菌体DNA，包装后的成斑率要比野生型的有所下降，但仍可达到106～107pfu，完全可以满足构建真核基因组基因文库的要求。经过体外包装的噬菌体颗粒可以感染适当的受体菌细胞，并将重组λ6、转化率的计算及其影响因素转化率：指DNA分子转化受体菌获得转化子的效率。转化率是衡量转化效率的重要指标，有两种表示方式：一是在待转化DNA分子数大于受体细胞数的条件下，转化细胞与细胞总数之比。二是在受体细胞数相对于待转化DNA分子数大大过量时，每微克DNA转化所产生的克隆数。也可表征为每微克DNA进入受体细胞的分子数6、转化率的计算及其影响因素影响转化率的因素载体及重组DNA方面载体本身的性质：不同的载体转化同一株受体细胞，其转化率不同。分子质量较小的重组质粒DNA分子转化率较高，分子质量较大的重组质粒DNA分子转化率较低，对于大于30kb的重组质粒则很难进行转化。载体的空间构象：与受体细胞亲和性较强的质粒载体转化率要高于亲和性较弱的质粒载体。质粒的超螺旋构象转化率最高，经酶切连接操作后的载体由于空间构象难以恢复，一般要比新制备的超螺旋质粒低两个数量级。插入片段大小：对质粒载体而言，插入片段越大，转化效率越低。重组DNA分子的浓度和纯度：在10ng／100u1以下的DNA浓度范围内，转化效率与DNA分子数成正比关系。※影响转化率的因素※受体细胞方面：受体细胞必须与载体相匹配，如：pBR322转化大肠杆菌JM83株，转化率很低；但对大肠杆菌ED8767株的转化率则较高。转化操作方面：受体细胞的预处理或感受态细胞的制备对转化率影响最大对于Ca2+诱导的完整细胞转化而言，菌龄、CaCl2处理时间感受态细胞的保存期以及热脉冲时间均是很重要的因素，其中感受态细胞通常在12-24小时内转化率最高，之后转化率急剧下降。对于原生质体转化而言，再生率的高低直接影响转化率，而原生质体的再生率又受诸多因素的制约在一次转化实验中，DNA分子数与受体细胞数的比例对转化率也有影响。电穿孔转化法中，对受体细胞进行冰冻甘油预处理后的转化率，要比不经此预处理的转化率高10-100倍。受体细胞方面：同一重组质粒DNA分子转化不同的受体菌细胞，转化率不同——受体细胞的选择对于重组DNA分子的转化也是极为重要。受体细胞的预处理：影响最大供受体的比例：Ca2+诱导转化0.1ml感受态细胞50ngDNA

原生质体转化109个原生质体 50ngDNA

同一重组质粒DNA分子转化不同的受体菌细胞，转化率不同——受提高转化效率的几个重要因素：

①细胞生长状态和密度不要用经过多次转接或储于４℃的培养菌，最好从-70℃或-20℃甘油保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌液。细胞生长密度以刚进入对数生长期时为好，可通过监测培养液的OD600来控制。DH5α菌株的OD600

为0.5时，细胞密度在5×107个/ml左右(不同的菌株情况有所不同)，这时比较合适。密度过高或不足均会影响转化效率。提高转化效率的几个重要因素：

①细胞生长状态和密度②质粒的质量和浓度:用于转化的质粒DNA应主要是超螺旋DNA(cccDNA)转化效率与外源DNA浓度在一定范围内成正比，但当加入的外源DNA量过多或体积过大时，转化效率就会降低。1ng的cccDNA即可使50μl的感受态细胞达到饱和。一般情况下，DNA溶液的体积不应超过感受态细胞体积的5％。②质粒的质量和浓度:③试剂的质量所用的试剂，如CaCl2等均需是最高纯度的，并用超纯水配制（过滤除菌，非高压灭菌），最好分装保存于干燥的冷暗处（冰箱4℃）。④防止杂菌和杂DNA的污染整个操作过程均应在无菌条件下进行，所用器皿，如离心管,枪头等最好是新的，并经高压灭菌处理。所有的试剂都要灭菌，且注意防止被其它试剂、DNA酶或杂DNA所污染，否则均会影响转化效率或杂DNA的转入，为以后的筛选和鉴定带来不必要的麻烦。③试剂的质量扩增操作转化细胞的扩增操作：指转化完成之后细胞的短时间培养。在实验时，扩增操作往往与转化操作偶联在一起，如：Ca2+诱导转化后的37℃培养一个小时原生质体转化后的再生过程λ噬菌体转染后的30℃培养等，均属扩增操作扩增操作的目的增殖转化细胞，使得有足够数量的转化细胞用于筛选程序。扩增和表达载体分子上的标记基因，便于筛选。表达外源基因，便于筛选和鉴定。四、转化细胞的扩增扩增操作四、转化细胞的扩增五、外源基因导入真核细胞的方法1．重组DNA分子导入酵母细胞：利用酵母的原生质球进行转化

首先，酶解酵母细胞壁，产生原生质球，再将原生质球置于DNA、CaCl2和多聚醇(如聚乙二醇)中多聚醇可使细胞壁具有穿透性，并允许DNA进入然后使原生质球悬浮于琼脂中，并使其再生新的细胞壁。五、外源基因导入真核细胞的方法1．重组DNA分子导入酵母细胞2、重组DNA分子导入哺乳动物细胞①病毒颗粒转导法病毒种类多样及病毒DNA或RNA构建的载体性质的各异，所以转导的过程各不相同，主要有三种类型：一，带有目的基因的病毒颗粒直接感染受体细胞，目的基因随同病毒DNA分子整合到受体细胞染色体DNA上这样以后不需要再包装成病毒颗粒。二，带有目的基因的毒病是缺陷性的，须同另一辅助病毒一起感染受体细胞．在受体细胞内包装成新的病毒颗粒。三，虽然带目的基因的SV40病毒是早期转录缺陷型的但被感染的COS细胞系的基因组中整合有SV40早期转录区段DNA，所以没有必要用辅助病毒作混合感染。2、重组DNA分子导入哺乳动物细胞①病毒颗粒转导法②磷酸钙-DNA共沉淀法是指外源基因与磷酸钙混合形成磷酸钙-DNA共沉淀物，可使DNA附在细胞表面，通过细胞吞入摄取或通过细胞膜脂相收缩时裂开的空隙进入细胞内，这种转染方法称为磷酸钙-DNA共沉淀法。其依据是哺乳动物细胞能捕获黏附在细胞表面的DNA-磷酸钙沉淀物，使DNA转入细胞。②磷酸钙-DNA共沉淀法进入细胞的DNA仅有1%～5%可以进入细胞核中，其中仅有不到1%的DNA可以与细胞DNA整合，在细胞中进行稳定表达，基因转导频率大约为10-4，这项技术能用于任何DNA导入哺乳类动物进行暂时性表达或长期转化的研究。DNA磷酸钙共沉淀复合物中DNA的数量、共沉淀物与细胞接触的保温时间、以及DMSO和甘油等促进因子作用的持续时间均会影响DNA的转染效率。此方法对于贴壁细胞转染是最常用并首选的方法进入细胞的DNA仅有1%～5%可以进入细胞核中，其中仅有不到第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件③DEAE-葡聚糖转染法二乙胺乙基葡聚糖(DEAE)是一种高分子质量的多聚阳离子试剂，能促进哺乳动物细胞捕获外源DNA，实现短时间的有效表达。目前有关DEAE-葡聚糖的作用机制一般认为DEAE-葡聚糖能与外源DNA形成复合物，保护DNA免受核酸酶的降解；其次是DEAE-葡聚糖可作用于受体细胞膜，增加其通透性，便于DNA进入。此方法简单、重复性高，并且转染效率高于磷酸钙法。③DEAE-葡聚糖转染法DEAE-dextran转染主要有两种不同的方法：

一种是先使DNA直接同DEAE-dextran混合，形成DNA／DEAE-dextran复合物后，再用来处理细胞。另一种是受体细胞先用DEAE—dextran溶液预处理，然后再用来与转染的DNA接触。DEAE-dextran转染主要有两种不同的方法：④聚阳离子-DMSO转染法采用聚阳离子poly-brene处理哺乳动物细胞，增加细胞表面对DNA的吸附能力、然后再用25％-30％DMSO短暂处理细胞，增加膜的通透性，提高对DNA的捕获量。

④聚阳离子-DMSO转染法⑤显微注射转基因技术微注射技术：一般是用微吸管吸取供体DNA溶液，在高倍倒置显微镜下准确地插入受体细胞核中，并将DNA注射进去。常用于转基因动物研究用此方法转基因的效率很高。获得稳定转化子的数量取决于注射的DNA的性质。⑤显微注射转基因技术显微注射法其技术关键：理想外源基因的制备。这种基因可处于质粒上，但注射前质粒已经酶切而线性化。有的载体DNA会干扰外源基因的表达，因此注射前，需要先从载体上将它们切下。收集受精卵。在受孕后的几小时内，父母双方的遗传物质还未结合前，从供体动物中取出单细胞的受精卵。显微注射法其技术关键：显微注射。利用极细的毛细玻璃管(外径为0.5-1um)，将理想的遗传物质注入受精卵的雄原核。这必须在父母双方遗传物质融合前的4h间歇期内完成。当双亲染色体相遇后，注入的理想基因有可能整合到染色体上。在几次细胞分裂后，将带有理想基因的受精卵移入母体，使受精卵孕育。显微注射。利用极细的毛细玻璃管(外径为0.5-1um)，将理第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件⑥脂质体导入法脂质体也称人工细胞膜，是由脂质双分子层组成的，磷脂分子在水中可自动生成闭合的双层膜,从而形成一种囊状物被称为脂质体。脂质体导入法:将DNA或RNA包囊于脂质体内，然后进行脂质体与细胞膜的融合，通过融合导入细胞,这种转染方法称为脂质体导入法。⑥脂质体导入法脂质体介导转染的机制阳离子脂质体表面带正电荷，能与核酸的磷酸根通过静电作用将DNA分子包裹人内，形成DNA一脂复合体，也能被表面带负电荷的细胞膜吸附，再通过膜的融合或细胞的内吞作用，偶尔也通过直接渗透作用,将DNA传递进入细胞，形成包涵体或进入溶酶体,其中一小部分DNA能从包涵体内释放,并进入细胞质中,再进一步进入核内转录、表达。

脂质体介导转染的机制利用脂质体介导法将外源DNA导入哺乳动物细胞具有实用潜力。由于脂质体具有无毒、无免疫原性的特点，不仅可用于体外受体细胞的基因转化，而且可以在动物体内将基因转入肝细胞、血管内皮细胞等靶细胞或靶组织、靶器官位点，实现瞬间表达或稳定表达，成为基因治疗的一种有效工具。利用脂质体介导法将外源DNA导入哺乳动物细胞具有实用潜力。⑦基因枪法基因枪法(又称粒子轰击法)用高压气体加速把粘有DNA的细微金粉(或钨粉颗粒)打向细胞，穿过细胞壁、细胞膜、细胞质等层层构造到达细胞核，完成基因转移的方法基因枪法适用于动植物组织或细胞、胚胎、细菌及小动物等。用这种方法，已将DNA先后送人酵母的线粒体和核、衣藻的叶绿体和核、洋葱的表皮细胞以及玉米悬浮细胞中。基因枪法特点：快速、简便、安全、高效。2022/12/1588⑦基因枪法2022/12/14882022/12/15892022/12/1489第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件本章重点掌握的内容概念:受体细胞、电穿孔法、共转化、基因枪法、感受态细胞、转化、转染、磷酸钙-DNA共沉淀法、微注射技术。选择受体细胞的基本原则氯化钙转化法的基本原理脂质体介导法及其转染的机制常用的基因导入受体细胞的方法。原核生物细胞作为受体细胞的优点与缺点。酵母菌作为受体细胞的优点。哺乳动物细胞作为受体细胞的优点与缺点。本章重点掌握的内容概念:受体细胞、电穿孔法、共转化、基因枪法演讲完毕，谢谢观看！演讲完毕，谢谢观看！第三部分重组DNA导入受体细胞一、受体细胞二、选择受体细胞的基本原则三、重组DNA导入受体细胞的方法第三部分重组DNA导入受体细胞一、受体细胞1、转化概念转化

：DNA重组分子在体外构建完成后，必须导入特定的受体细胞，使之无性繁殖并高效表达外源基因或直接改变其遗传性状，这个导入过程及操作统称为重组DNA分子的转化（Transformation）。重组DNA人工导入受体细胞有许多方法，包括转化、转染、接合以及其它物理手段，如受体细胞的电穿孔和显微注射等，这些导入方法在DNA重组技术中统称为转化操作。一、重组DNA转化1、转化概念一、重组DNA转化感受态：受体细胞最易接受外源DNA片段而实现转化的一种特殊生理状态。处于感受态的受体细菌，其吸收转化因子的能力为一般细菌生理状态的千倍以上，而且不同细菌间的感受态差异往往受自身的遗传特性、菌龄、生理培养条件等诸多因素的影响。感受态：受体细胞最易接受外源DNA片段而实现转化的一种特2、细菌转化的步骤：感受态的形成。感受态时细胞表面出现各种蛋白质和酶类，负责转化因子的结合、切割及加工。感受态细胞能分泌一种小分子量的激活蛋白或感受因子，其功能是与细胞表面受体结合，诱导某些与感受态有关的特征性蛋白质（如细菌溶素）的合成，使细菌胞壁部分溶解，局部暴露出细胞膜上的DNA结合蛋白和核酸酶等。转化因子的结合。受体菌细胞膜上的DNA结合蛋白可与转化因子的双链DNA结构特异性结合，单链DNA或RNA双链RNA以及DNA/RNA杂合双链都不能结合在膜上。2、细菌转化的步骤：转化因子的吸收。双链DNA分子与结合蛋白作用后，激活邻近的核酸酶，一条链被降解，而另一条链则被吸收到受体菌中。整合复合物前体的形成。进入受体细胞的单链DNA与另一种游离的蛋白因子结合，形成整合复合物前体结构，它能有效地保护单链DNA免受各种胞内核酸酶的降解，并将其引导至受体菌染色体DNA处。转化因子单链DNA的整合。供体单链DNA片段通过同源重组，置换受体染色体DNA的同源区域，形成异源杂合双链DNA结构。转化因子的吸收。双链DNA分子与结合蛋白作用后，激活邻近第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件98二、受体细胞受体细胞(receptorcell)：又称为宿主细胞(hostcell)，是指能摄取外源DNA并使其稳定维持的细胞感受态(competence)：是指细菌吸收外源DNA的生理状态。感受态细胞(competencecell)：是指具有接受外源DNA能力的细胞。二、受体细胞受体细胞(receptorcell)：又称为宿1、原核生物细胞的优点大部分原核生物细胞没有纤维素组成的坚硬细胞壁，便于外源DNA的进入。没有核膜，染色体DNA没有固定结合的蛋白质，这为外源DNA与裸露的染色体DNA重组减少了麻烦基因组简单，不含线粒体和质体基因组，便于对引入的外源基因进行遗传分析。原核生物多数为单细胞生物，容易获得一致性的实验材料，并且培养简单，繁殖迅速，实验周期短，重复实验快。1、原核生物细胞的优点大部分原核生物细胞没有纤维素组成的坚硬原核生物细胞不具备真核生物的蛋白质折叠复性系统，即使许多真核生物基因得以表达，得到的也多是无特异性空间结构的多肽链。原核生物细胞缺乏真核生物的蛋白质加工系统，而许多真核生物蛋白质的生物活性正是依赖于其侧链的糖基化或磷酸化等修饰作用。原核生物细胞内源性蛋白酶易降解空间构象不正确的异源蛋白，造成表达产物不稳定等。2、原核生物细胞表达真核生物基因存在的缺点：原核生物细胞不具备真核生物的蛋白质折叠复性2、原核生物细胞表3、被用作受体菌的原核生物：大肠杆菌、枯草杆菌、蓝细菌等。大肠杆菌受体细胞大肠杆菌属革兰氏阴性菌，它是目前为止研究得最为详尽、应用最为广泛的原核生物种类之一，也是基因工程研究和应用中发展最为完善和成熟的载体受体系统。优点：繁殖迅速、培养简便，代谢易于控制。缺点：大肠杆菌细胞间隙中含有大量的内毒素可导致人体热原反应。3、被用作受体菌的原核生物：大肠杆菌、枯草杆枯草杆菌受体细胞枯草杆菌又称枯草芽孢杆菌，是一类革兰氏阳性菌。优点：枯草杆菌具有胞外酶分泌－调节基因，能将具有表达的产物高效分泌到培养基中，大大简化了蛋白表达产物的提取和加工处理等，而且在大多数情况下，真核生物的异源重组蛋白经枯草杆菌分泌后便具有天然的构象和生物活性。枯草杆菌不产生内毒素，无致病性，是一种安全的基因工程菌。枯草杆菌具有芽孢形成的能力，易于保存和培养。枯草杆菌也具有大肠杆菌生长迅速、代谢易于调控、分子遗传学背景清楚等优点。应用：已成功的用于表达人的β干扰素、白细胞介素乙型肝炎病毒核心抗原和动物口蹄疫病毒VPI抗原等。枯草杆菌受体细胞蓝细菌（蓝藻）蓝藻——又称蓝绿藻或蓝细菌，它含有叶绿素a(缺乏叶绿素b)和藻胆素，具有光合系统Ⅰ(PSⅠ)

和光合系统Ⅱ(PSⅡ)、能进行光合作用，但它又具有细菌的特征，无细胞核及双层膜结构的细胞器，染色体裸露，是一种典型的原核生物。蓝藻作为表达外源基因的受体菌兼具微生物和植物的优点，具体表现在：基因组为原核型，除了裸露的染色体DNA外，不含叶绿体DNA和线粒体DNA，遗传背景简单，便于基因操作和外源DNA的检测。蓝细菌（蓝藻）细胞壁属G-，主要由肽聚糖组成，便于外源DNA的转化。营光合自养生长，培养条件简单，只需光、CO2、无机盐、水和适宜的温度就能满足生长需要。多种蓝藻含内源质粒，为构建蓝藻质粒载体提供了极好的条件。蓝藻富含蛋白质，并且多数蓝藻无毒，早已用作食物或保健品，在此基础上采用转基因技术，把一些重要药物的基因转入无毒蓝藻，就可达到锦上添花的效果。细胞壁属G-，主要由肽聚糖组成，便于外源DNA的转化。4、真核生物细胞真菌受体细胞真菌是低等的真核生物，其基因结构、表达调控机制以及蛋白质的加工与分泌都具有真核生物的特征，因此利用真菌细胞表达高等动植物基因具有原核生物细胞无法比拟的优点。4、真核生物细胞真菌受体细胞酵母菌酵母菌作为外源真核基因表达系统的优点酵母菌是结构最为简单的真核生物之一,其基因表达调控机理比较清楚,遗传操作相对较为简单。具有真核生物蛋白翻译后修饰加工系统。不含有特异性的病毒，不产生毒素，有些酵母菌属(如酿酒酵母)在仪器工业中有着几百年的应用历史，属于安全型基因工程受体系统。培养简单，利于大规模发酵生产，成本低廉。能将外源基因表达产物分泌至培养基中，便于产物的提取和加工等。酵母菌酵母菌作为外源真核基因表达系统的优点动物细胞常用的动物受体细胞有Hela细胞、猴肾细胞和中国仓鼠巢细胞(CHO)等。哺乳动物细胞作为受体细胞的优点是：能识别和除去外源真核基因中的内含子，剪接加工成成熟的RNA。真核基因表达蛋白在翻译后能被正确加工或修饰,产物具有较好的蛋白质免疫原性,约为酵母细胞16-20倍。动物细胞常用的动物受体细胞有Hela细胞、猴肾细胞和易被重组DNA质粒转染,具有遗传稳定性和可重复性。经转化的动物细胞可将表达产物分泌到培养基中，便于提纯和加工，成本低。缺点是:组织培养技术要求高，如培养和筛选一个高度扩增的转化子CHO细胞，通常需要数月之久,难度较大。易被重组DNA质粒转染,具有遗传稳定性和可重目前用作基因转移的受体动物主要有猪，羊、牛、鱼等经济动物和鼠、猴等实验动物，主要用途在于大规模表达生产天然状态的复杂蛋白质或动物疫苗、动物品种的遗传改良及人类疾病的基因治疗等。常用的动物受体细胞有小鼠L细胞、Hele细胞猴肾细胞和中国仓鼠卵巢细胞(CHO)等。以动物细胞，尤其是哺乳动物细胞作为受体细胞的优点目前用作基因转移的受体动物主要有猪，羊、植物受体细胞优点：全能性，即一个分离的活细胞在合适的培养条件下，较容易再分化成植株，这意味着一个获得外源基因的体细胞可以培养出能稳定遗传的植株或品系。缺点：植物细胞有纤维素参与组成的坚硬细胞壁，不利于摄取重组DNA分子。现在用作转基因受体的植物有水稻、棉花、玉米、马铃薯、烟草等经济作物和拟南芥等模式植物。植物受体细胞5、选择受体细胞的基本原则便于重组DNA分子的导入。便于重组体的筛选。根据所用的表达载体所含的选择性标记与受体细胞基因是否相匹配，从而易于对重组体进行筛选。遗传稳定性高，易于进行扩大培养或易于进行高密度发酵而不影响外源基因的表达效率。对动物细胞而言，所选用的受体细胞具有对培养的适应性强，可以进行贴壁或悬浮培养，可以在无血清培养基中进行培养。

5、选择受体细胞的基本原则便于重组DNA分子的导入。受体细胞内内源蛋白水解酶基因缺失或蛋白酶含量低，利于外源蛋白表达产物在细胞内积累，可促进外源基因高效分泌表达。安全性高，无致病性，不会对外界环境造成生物污染。一般选用致病缺陷型的细胞或营养缺陷型细胞作为受体细胞。受体细胞内内源蛋白水解酶基因缺失或蛋白酶含量低，利于外源蛋白能使重组DNA分子稳定存在于细胞中。从受体细胞的角度出发，通常的做法是对其作适当的修饰改造，如选用某些限制性核酸内切酶缺陷型的受体细胞就可以避免其对重组DNA分子的降解破坏作用。受体细胞在遗传密码子的应用上无明显偏倚性。具有较好的转译后加工机制等，便于真核目的基因的高效表达。在理论研究和生产实践上有较高的应用价值。能使重组DNA分子稳定存在于细胞中。从受体细胞的角度出发，通6、受体细胞应具备的条件野生型的大肠杆菌不是理想的受体细胞，因为自身具有的限制和修饰系统，另外还可能存在潜在的致病性因此必须通过适当的诱变手段对野生型大肠杆菌进行遗传性状改造，以获得适宜作为受体细胞的突变菌株通常应从以下几个方面加以考虑：从安全性考虑，应具备以下条件：不适合在人体内生存不适合在非培养条件下生存在非培养条件下，其DNA容易解体它的DNA不易转移它的质粒只在这一宿主由复制便于检测6、受体细胞应具备的条件野生型的大肠杆菌不是理想的受体细胞，从遗传性考虑：重组缺陷型recA－，用于基因扩增或高效表达的受体细胞（recA-）限制系统的缺陷，或是修饰系统的缺陷。避免对外源DNA的除解。外切酶和内切酶活性缺陷（recB-，recC-，hsdR-）

与重组质粒的遗传性状要有显的差异（具有与载体选择标记互补的表型）具有较高的转化效率从遗传性考虑：限制缺陷型这是导致外源重组DNA转化或转导效率低下的主要原因之一。应选用限制系统缺陷型的突变菌株作为受体细胞，以提高外源DNA分子的转化或转导效率。进一步使修饰系统也发生缺陷，则受体菌细胞既不能修饰，也不能限制外源DNA分子，更便于重组DNA分子的多种基因操作。大肠杆菌的限制系统主要由hsdR基因编码，因此具有hsdR-遗传表型的大肠杆菌各株均丧失了降解外源DNA的能力，同时大大增加了外源DNA的可转化性。限制缺陷型重组缺陷型进入野生型细胞的外源DNA分子能自发地与染色体DNA发生的体内同源重组反应由rec基因家族的编码产物所控制。RecA蛋白能促进DNA分子之间的同源联会和DNA单链交换，recA基因的突变使大肠杆菌细胞内的遗传重组频率降低至106。大肠杆菌的recB、recC和recD基因分别编码不同分子量的多肽链，三者构成一个在同源重组中的统一功能单位—RecBCD蛋白（核酸酶V），它具有依赖于ATP的双链DNA外切酶和单链DNA内切酶双重活性。recB、recC和recD基因的突变也可以降低遗传重组的发生频率因此受体细胞必须选择体内同源重组缺陷型的遗传表型基因型为recA-、recB-或recC-等，有些大肠杆菌突变体菌株则将三个基因同时失活。重组缺陷型转化亲和型可以利用遗传诱变技术改变受体菌细胞壁的通透性及细胞膜的特异吸附性，从而提高其转化效率。还可以选择能够诱导形成感受态细胞的菌株作为受体菌细胞。转化亲和型遗传互补型遗传表型差异大，可便于重组子的检测。通常是使受体细胞呈现与载体所携带的选择标记互补的遗传性状。方能使转化细胞的筛选成为可能。如在大肠杆菌系统中，重组质粒载体上多含有AMP抗性标记基因，则所选用的受体细胞应对这种抗生素敏感。当重组DNA分子转入受体细胞后载体上的标记基因赋予受体细胞抗生素的抗性特征，据此可以区分转化子与非转化子。如果受体细胞具有与外源基因表达产物活性互补的遗传特征．可以直接筛选到外源基因表达的转化细胞。遗传互补型感染寄生缺陷型相当多的细菌对其它生物尤其是人和牲畜具有感染和寄生效应，重组DNA分子导入这些细菌受体中后，极有可能随着受体菌的感染寄生作用，进入生物体内，并广泛围传播，如果外源基因对人体和牲畜有害，则会导致一场灾难，因此从安全的角度上考虑，受体细胞不能具有感染寄生性，当然，利用基因工程手段制造生物武器不在此例。感染寄生缺陷型第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件三、重组DNA导入受体细胞的方法转化(transformation):指感受态的大肠杆菌细胞捕获质粒DNA或以它为载体构建的重组质粒DNA分子的过程。转化子(transformant)：经转化获得外源遗传物质的细胞。转染(transfection):指感受态的大肠杆菌细胞捕获噬菌体或以它为载体构建的重组DNA分子的过程转导(transduction):指病毒转移真核细胞DNA的过程或噬菌体介导的细菌细胞之间基因转移的过程。三、重组DNA导入受体细胞的方法转化(transformat基因导入受体细胞方法根据转移基因方法特性可分为：转化(transformation)转导(transduction)转染(transfection)微注射技术(microinjection)电转化法(electroporation)基因枪技术(geneblaster)脂质体介导法(liposomemediatedtransfer)基因导入受体细胞方法根据转移基因载体与受体的特性可分为：质粒载体导入受体细胞的方法：CaCl2、电转化法等。噬菌体转染细胞的方法：体外包装感染法等。DNA导入酵母菌的方法：原生质体转化、电穿孔转化法等。DNA导入植物细胞的方法：Ti质粒叶盘法、电穿孔转化法、基因枪法等。DNA导入昆虫细胞的方法：杆状病毒感染法等。DNA导入哺乳动物细胞的方法：磷酸钙共沉淀法、电穿孔转化法、脂质体介导法、基因枪法等根据转移基因载体与受体的特性可分为：1、氯化钙转化法大肠杆菌是一种革兰氏阴性菌，自然条件下很难进行转化，其主要原因是转化因子的吸收较为困难。在基因工程研究和应用中，转化受体菌细胞的正是根据人们需要构建的外源重组质粒DNA分子而非来自供体菌的游离DNA片段(转化因子)。因此在大肠杆菌的转化实验中，很少采取自然转化的方法，通常的做法是首先采用人工的方法制备感受态细胞，然后进行转化处理，其中代表性的方法之一是Ca2+诱导的大肠杆菌转化法。1、氯化钙转化法1970年M.Mandel和A.Hige发现,大肠杆菌经过氯化钙适当处理及短暂热休克之后,便能吸收λ噬菌体DNA。1972年美国斯坦福大学S.Cohen报道,经氯化钙处理大肠杆菌细胞也能摄取质粒DNA。1970年M.Mandel和A.Hige发现,大肠杆菌经过氯Ca2+诱导转化原理：①在0℃的Cacl2低渗溶液中，细菌细胞发生膨胀，同时Cacl2使细胞膜磷脂层形成液晶结构促使细胞外膜与内膜间隙中的部分核酸酶解离开来，诱导大肠杆菌形成感受态。②Ca2+能与加入的DNA分子结合，形成抗DNA酶(DNase)的羟基-磷酸钙复合物，并黏附在细菌细胞膜的外表面上。当42℃热刺激短暂处理细菌细胞时，细胞膜的液晶结构发生剧烈扰动，并随之出现许多间隙，为DNA分子提供了进入细胞的通道。Ca2+诱导转化原理：Mg2+对DNA分子有很大的稳定性作用，因此利用Mgcl2与Cacl2共同处理大肠杆菌细胞，可以提高DNA的转化效率。如利用二甲基亚砜(DMSO)和二硫苏糖醇(DDT)等进一步处理细胞，能诱导高频感受态细胞的形成，转化效率可提高100～1000倍，且对大小质粒分子均可进行有效的转化。但该法要求条件高，对外界污染物极为敏感，通常很少采用。Mg2+对DNA分子有很大的稳定性作用，因此利用Mgcl2与该法重复性好。操作简便快捷，适用于成批制备感受态细胞。对这种感受态细胞进行转化如果感受态细胞做得好，每微克超螺旋质粒DNA可得5×107～1×109个转化子。该法重复性好。操作简便快捷，适用于成批制备感受态细胞。对这种大肠杆菌感受态细胞的制备：100ml菌体培养至OD600=0.5，离心收集菌体。用10ml冰冷的75mM

CaCl2溶液悬浮菌体，离心收集菌体。用1ml冰冷的75mM

CaCl2溶液悬浮菌体。冰浴放置12-24小时，备用。取100ml感受态细胞，加入相当于50ng载体的重组DNA连接液，混匀。大肠杆菌感受态细胞的制备：冰浴放置半小时。在42℃保温1.5分钟（热脉冲）。快速将转化细胞转移至冰浴中放置1–2分钟。加入1ml新鲜培养基，于37℃培养1小时（扩增）。涂在合适的固体培养基平板上进行筛选。

冰浴放置半小时。第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件133获得合格的感受态细胞，要注意以下几点：用作受体菌的细胞在培养时要掌握好细胞密度，一般在A600为0.4左右为好。制备受体细胞的整个过程要在0～4℃进行，并尽量避免污染。如果用抗生素筛选转化子，作为对照的受体菌应该在此培养基上不生长。为了提高转化率，可选用复合氯化钙溶液，如FSB溶液。获得合格的感受态细胞，要注意以下几点：第二章5基因工程-重组DNA导入受体细胞课件135CaCl2法制备感受态细胞转化DNA时，低温的主要目的是:（1）抑制细胞的旺盛生理代谢。（2）有助于DNA-Ca2+吸附于细胞表面。（3）防止DNAase降解DNA。热休克温度是42℃。目的是使细胞摄入吸附于其表面的DNA。※CaCl2法制备感受态细胞转化DNA时，低温的主要目的是:※转化处理过程中，可能感染杂菌，导致假阳性转化子的出现，因此须设以下几种对照处理：DNA对照处理。转化处理液中用0.2ml无菌水代替0.2m1感受态细胞，检验DNA溶液是否染菌。感受态细胞对照处理。转化处理液中用0.1mlNTE缓冲液(500mMNaCl，10mMTris-HCl，1mMEDTApH8.0)代替0.1m1DNA溶液，检验感受态细胞是否染菌。感受态细胞有效性对照处理。在0.2ml感受态细胞中加入0.1ml已知容易转化这种感受态细胞的质粒DNA。转化处理过程中，可能感染杂菌，导致假阳性转2、PEG介导的细菌原生质体转化革兰氏阳性细菌（如枯草杆菌、链霉菌等）接纳外源DNA的主要屏障是细胞壁，因而这类细菌通常采用原生质体（细胞去壁后的形态）转化的方法转移质粒或重组DNA分子。酵母菌、霉菌、植物细胞也可用原生质体法进行转化。2、PEG介导的细菌原生质体转化PEG是乙二醇的多聚物,存在不同分子量的多聚体,它可改变各类细胞的膜结构,使两细胞相互接触部位的膜脂双层中脂类分子发生疏散和重组,此时相互接触的两细胞的胞质沟通成为可能,从而造成细胞之间发生融合。PEG是乙二醇的多聚物,存在不同分子量的多聚体,它可改变各细菌原生质体的制备：不同细菌的原生质体制备方法不尽相同，以链霉菌为例：细菌需生长在高渗培养基中（如34%的蔗糖溶液），并加入甘氨酸以增加细菌细胞壁对溶菌酶的敏感性。在制备过程中，菌体应始终悬浮在10.3%的蔗糖等渗溶液中。与原生质体接触的所有器皿应保持无水无去污剂。细菌原生质体的制备：细菌原生质体的转化：取0.2-1ml的原生质体悬浮液（108-109个原生质体），加入10-20mlDNA重组连接液，同时加入含有PEG1000和Ca2+的等渗溶液，混匀。细菌原生质体的再生：原生质体再生的主要目的是使细菌重新长出细胞壁。再生在特殊的固体培养基上进行，内含脯氨酸和微量元素。细菌原生质体的转化：3、电转化电转化又称电穿孔法(electroporation):是指在细胞上施加短暂、高压的电流脉冲，在质膜上形成纳米大小的微孔，DNA直接通过这些微孔或者作为微孔闭合时所伴随发生的膜组分重新分布通过质膜进入细胞质中，这种方法称为电穿孔法。最早用于将DNA导入真核细胞,1988年,Dower等人成功应用于大肠杆菌的转化。基本原理是利用高压电脉冲作用，在大肠杆菌细胞膜上进行电穿孔，形成可逆的瞬间通道,从而促进外源DNA的有效吸收。

3、电转化电转化又称电穿孔法(electroporation将待转化的质粒或DNA重组连接液加在电穿孔转化仪的样品池中，两极施加高压电场。在强大电场的作用下，细菌细胞壁和细胞膜产生缝隙，质粒或DNA重组分子便可进入细胞内。电穿孔转化法操作简单，而且几乎对所有含细胞壁结构的受体细胞均有效，但转化效率差别很大。将待转化的质粒或DNA重组连接液加在电穿孔转化仪的样品池中，电穿孔转化法的效率受电场强度、电脉冲时间和外源DNA浓度等参数的影响，通过优化这些参数，每μgDNA可以得到109～1010转化子。电压增高或电脉冲时间延长时，转化效率将会有所提高，但同时导致受体细胞存活率的降低，转化效率的提高也因此被抵消。电穿孔转化法的效率受电场强度、电脉冲时间和外源DNA浓度等参用于电穿孔转化法的细胞处理要比感受态细胞的制备容易得多．当细菌生长到对数中期后予以冷却、离心，然后用低盐缓冲液充分清洗降低细胞悬浮液的离子强度，并用10％甘油重悬细胞，使其细胞浓度为3×l010个／m1。分装，在干冰上速冻后置于-70℃贮存。这样，每小份细胞融解后即可用于转化，有效期达6个月以上。电穿孔转化须在低温下(0-4℃)进行，转化效率要比在室温下操作提高约100倍。用于电穿孔转化法的细胞处理要比感受态细胞的制备容易得多．当细4、接合转化：接合（Conjugation）：指通过细菌细胞之间的直接接触导致DNA从一个细胞转移至另一个细胞的过程。这个过程是由结合型质粒完成的，它通常具有促进供体细胞与受体细胞有效接触的接合功能以及诱导DNA分子传递的转移功能，两者均由接合型质粒上的有关基因编码4、接合转化：是基于非接合型质粒的迁移作用而建立的一种DNA转化方式．适用于那些难以采用Ca2+诱导转化法或电穿孔法转化的受体菌。非接合型质粒分子较小，缺少编码质粒转移体系所须的全部基因，不能象接合型质粒那样在宿主细胞间自我转移。